Микробиоценоз кишечника и микробиологические показатели

ВЕТЕРИНАРНЫЕ НАУКИ
составляло 1,3%. После введения иммуностимулятора ЯП-3 в опытной группе этот показатель
понизился до 1,1%, а в контрольной – оставался
на уровне 1,3%. Из этого следует, что кролики
опытной группы меньше реагировали на стрессфакторы, в т.ч. на взятие крови, взвешивание,
уборку навоза, иммунизацию против тех или иных
заболеваний и другие ветеринарные манипуляции.
Количество сегментоядерных нейтрофилов в
опытной группе составляло в начале исследований 4,3%, а в контроле – 4,2%. К окончанию
исследований в опытной группе эти показатели возросли до 7,4%, а в контроле – до 4,5%.
Палочкоядерные нейтрофилы в опытной и
контрольной группах в начале опыта составляли 25,1%; к концу исследований в опытной
группе их количество сократилось до 21,0%, а
в контрольной – до 24,4%, однако показатели
не выходили за пределы физиологической нормы. Увеличение количества сегментоядерных
нейтрофилов свидетельствует об активизации
гемопоэза, а снижение палочкоядерных нейтрофилов – о нормализации обменных процессов
в организме кроликов.
За время эксперимента не наблюдали значительных сдвигов в показателях лимфоцитов
у кроликов опытной группы по сравнению с
контролем. При этом выявлено увеличение
лимфоцитов на 21 и 42 сутки на 7,9 и 2,2% соответственно. Содержание базофилов за время
эксперимента как в опытной группе, так и в
контроле составило 5,3%. Выявлено повышение
среднегрупповых показателей моноцитов. Их соотношение в опытной и контрольной группах
составило 5,5% к 5,1%.
Определение показателей неспецифической
резистентности на 21, 42 и 63 сутки показало,
что содержание пропердина в опытной группе
превышало на 5; 20 и 30% соответственно данные
в контрольной группе.
Бактерицидная активность сыворотки крови у кроликов опытной группы также возросла на 40; 55 и 60% соответственно по сравнению
с аналогичными данными контрольной группы.
Также изучено влияние иммуностимулятора
ЯП-3 на увеличение массы кроликов. После
трёхкратного введения препарата масса тела
кроликов опытной группы увеличилась с 2,5 до
4,2–4,5 кг, или на 74%. У кроликов контрольной
группы этот показатель составил 46%.
Наибольший прирост массы тела зафиксирован после второго и третьего введения иммуностимулятора ЯП-3. Среднесуточные приросты
контрольной и опытной групп составили: после
первого введения 4,3 и 19,1 г; после второго –
11,9 и 23,8 г; после третьего – 15,9 и 28,6 г
соответственно.
Нами так же изучено влияние иммуностимулятора ЯП-3 на плодовитость кроликов. После
скрещивания подопытных самок и самцов при
окроле 13 крольчих выход живых крольчат составил 11–13 голов, а в контрольной группе –
7–9 голов. Исходя из наблюдений последних пяти
лет в хозяйстве получали от одной крольчихи
примерно 6–9 голов. Если принять количество
крольчат в помёте в контрольной группе за 100%,
то количество крольчат в помёте от опытной
группы составило 171,4%. Из этого следует, что
иммуностимулятор ЯП-3 положительно влияет
на повышение приплода.
Выводы. Результаты работы позволяют сделать вывод о том, что применение иммуностимулятора ЯП-3, не обладающего токсичностью
для животных, способствует решению основных вопросов кролиководства, а именно повышения неспецифических факторов защиты
организма: сопротивляемости к заболеваниям,
быстрого увеличения массы, повышения плодовитости, получения здорового приплода,
способности адаптации животных к стрессфакторам при отъёме, перегруппировках,
перевозках и проведении профилактических
мероприятий.
Литература
1. Ерин А.Т. Приусадебное кролиководство и нутриеводство.
2-е изд., перераб. Минск: Ураджай, 1994. 384 с.
2. Петров А.М. и др. Иммунология: учеб. пособие для студентов высш. учеб. заведений / под ред. Е.С. Воронина. М.:
Колос-Пресс, 2002. 408 с.: с ил.
Микробиоценоз кишечника и микробиологические
показатели мяса кроликов при ассоциативной
болезни и после лечения
И.И. Асадуллина, аспирантка,
А.М. Галиуллина, к.в.н., Башкирский ГАУ
Эймериоз является одним из самых распространённых инвазионных заболеваний кроли-
ков в Республике Башкортостан. Заражённость
кроликов эймериями может варьировать от 33
до 100% [1]. Часто эймериоз у кроликов проявляется в виде паразитоценоза, когда, сочетаясь
с инфекционными или инвазионными заболе-
134
ВЕТЕРИНАРНЫЕ НАУКИ
ваниями, протекает в более тяжелой форме и
сопровождается высокой смертельностью [2].
В данной работе представлен материал по
изучению микробиоценоза кишечника и бактериальной обсемененности мяса кроликов при
ассоциативной болезни, в частности, эймериоза
в сочетании с инфекционным стоматитом.
Одной из важнейших особенностей процесса пищеварения животных является деятельность микрофлоры, обитающей в желудочнокишечном тракте, и представляющей собой
микробную экосистему, находящуюся в динамическом равновесии. Её состав определяется
не только физико-химическими условиями в
местах обитания и микрофлорой окружающей
среды, но и, в первую очередь, физиологическим
состоянием животного [3].
Перед нами была поставлена задача – изучить микробный состав желудочно-кишечного
тракта и микробиологические показатели мяса
кроликов, больных эймериозом в ассоциации с
инфекционным стоматитом и после химио- и
корригирующей терапии.
Материалы и методы исследований. Научноисследовательскую работу проводили в условиях
питомника лабораторных животных на кроликах
3-месячного возраста породы советская шиншилла. Подопытных животных, подобранных по
принципу аналогов, разделили на 5 групп. В 1-й
опытной группе находились больные кролики,
обработанные ампролиумом и тиломагом; во 2-й
группе – ампролиумом и тиломагом на фоне
настойки прополиса; в 3-й группе – ампролиумом и тиломагом на фоне настойки прополиса
и лактоферона. Контролем служили здоровые
кролики, фоном – больные эймериозом в ассоциации с инфекционным стоматитом.
Для лечения инфекционного стоматита вводили тиломаг в дозе 0,4 мл/кг один раз в день внутримышечно в течение пяти дней. При эймериозе
задавали кокцидиостатик ампролиум один раз в
день в дозе 80 мг/кг с кормом в течение пяти дней.
Иммунопробиотический препарат лактоферон
вводили в дозе 0,1 г/кг один раз сутки в течение
семи дней. Настойку прополиса, разведённую
водой в соотношении 1:1, использовали при инфекционном стоматите путём орошения ротовой
полости два раза в день в течение пяти дней.
Пробы фекалий для исследований брали до
лечения, а также через 5, 10, 15 и 30 дней после
дачи препаратов. Убой кроликов проводили на
30-й и 45-й дни после лечения.
Количественный состав микробиоценоза
желудочно-кишечного тракта устанавливали
путем выделения микроорганизмов из фекалий
посевами на питательные среды. Бифидобактерии выделяли посевом на среду Блаурокка,
лактобактерии – посевом на среду МРС-агар,
грамоотрицательных палочек – посевом на
дифференциальные среды Эндо, Плоскирева.
Гемолитические свойства выделенных культур
определяли на 5%-ном кровяном агаре. Для выделения стафилококков использовали желточносолевой агар, энтерококков – ДИФ-3, анаэробных спорообразующих бактерий – плотную среду
Вильсона – Блера, дрожжеподобные грибки
выявляли на среде Сабуро. Бактериальный анализ мяса проводили согласно ГОСТу 21237-75.
Результаты исследований. Количество лактобактерий у больных кроликов колебалось от 4,23
до 4,43 lg КОЕ/г. Титр бифидобактерий варьировал от 6,19 до 6,38 lg КОЕ/г. После лечения
в опытных группах наблюдалась тенденция к
повышению данных показателей. У кроликов
3-й опытной группы они достигли контрольного
значения на 15-й день после лечения. В 1-й и
во 2-й опытных группах к 30 дню их количество
было выше фонового значения в 1,1–1,3 раза,
но не достигало уровня интактных животных.
Содержание кишечной палочки у больных животных к началу опыта варьировало в
пределах от 8,03 до 8,30 lg КОЕ/г, в т.ч. гемолитических форм – от 69 до 88% против 3,33 lg
КОЕ/г в контроле, где гемолитические формы
отсутствовали. На пятый и последующие дни
исследования в опытных группах наблюдалось
уменьшение данного показателя. Так, на 30-й
день количество кишечной палочки в 1-й группе уменьшилось в 1,4 раза, во 2-й – в 1,5 раза,
уровень гемолитических форм снизился до 11
и 15% соответственно. В 3-й группе этот показатель достиг значения здоровых животных уже
на 15-й день, при этом гемолитические формы
возбудителя отсутствовали.
Количество стафилококков у больных кроликов превышало показатель контрольной группы в
1,6, энтерококков – в 1,4, клостридий – в 1,5, а
дрожжеподобных грибков – в 2,3 раза. На пятый
день после лечения их количество в 1-й и 2-й
опытных группах существенно не изменилось,
что объясняется усугублением дисбактериоза
в кишечнике кроликов под влиянием химиопрепаратов. В последующие периоды опыта
количество вышеуказанных микроорганизмов
во всех опытных группах постепенно снижалось. В конце опыта, то есть к 30-му дню после
лечения, стафилококков было ниже фонового
показателя в 1-й группе – в 1,2, во 2-й – в 1,4
и в 3-й – в 1,5 раза, энтерококков – в 1,5; 1,6
и в 1,7 раза, клостридий – в 1,4; 1,4 и 1,8 раза,
дрожжеподобных грибков – в 1,5; 1,4 и 2,5 раза
соответственно. Причем в 3-й опытной группе
титры энтерококков и дрожжеподобных грибков
достигли уровня интактных животных. Содержание стафилококков максимально приблизилось
к контрольному значению.
Следовательно, применение лечебных препаратов на фоне лактоферона и прополиса приводит
135
ВЕТЕРИНАРНЫЕ НАУКИ
к более быстрому восстановлению микрофлоры
желудочно-кишечного тракта. Кроме того, в 3-й
группе содержание кишечной палочки, энтерококков и дрожжеподобных грибков достигло
уровня контрольных животных уже на 15-й день
после лечения. Таким образом, химиотерапия на
фоне корригирующих средств является эффективной при лечении эймериоза в ассоциации с
инфекционным стоматитом кроликов.
Бактериологические исследования показали,
что в мясе здоровых животных патогенная и
условно-патогенная микрофлора отсутствует.
Общее количество мезофильных аэробных и
факультативно анаэробных микроорганизмов в
мясе контрольных животных составило 0,27±
0,13·103 КОЕ/г. У больных кроликов их количество составило 32,9±0,25·103 КОЕ/г, что было в
121,8 раза выше, чем у интактных. Кроме того,
у них была обнаружена кишечная палочка в
количестве 488,1±14,77 КОЕ/г и St. аureus –
0,67±0,26 КОЕ/г. Микроорганизмы родов Proteus
и Salmonella, а также Listeria monocytogenes в мясе
больных кроликов не обнаружены.
На 30-й день после обработки в мясе кроликов опытных групп общее количество микроорганизмов было ниже фонового показателя: в
1-й группе – в 10,4, во 2-й – в 11,4 и в 3-й –
в 14,1 раза; кишечной палочки – в 8,2; 11,7 и
в 20,7 раза соответственно. В дальнейшем на-
блюдали снижение этих показателей. Так, на
45-й день после обработки КМАФАнМ в 1-й
группе было меньше в 11,3, во 2-й – в 15,0 и в
3-й группе – в 17,3 раза, относительно значения
больных кроликов. Количество БГКП в опытных
группах было ниже фонового показателя в 8,6;
16,1 и 20,7 раза соответственно и не достигло
уровня интактных животных. В мясе кроликов,
подвергнутых лечению, St. aureus не обнаружены.
Микроорганизмы родов Proteus и Salmonella, а
также Listeria monocytogenes в мясе интактных,
больных кроликов и получавших препараты не
выявлены.
Выводы. Таким образом, патогенетическая
терапия кроликов с применением ампролиума
и тиломага, а также при их сочетании с настойкой прополиса и лактофероном при эймериозе
в ассоциации с инфекционным стоматитом
кроликов способствовала восстановлению нормобиоза кишечника и снижению бактериальной
обсеменённости мяса.
Литература
1. Халиуллина О.Х. Ветеринарно-санитарная характеристика
мяса кроликов при иммунодефиците на фоне моно- и
полиинвазии: автореф. дис. … канд. вет. наук. Уфа, 2009.
19 с.
2. Колабский Н.А. Кокцидиоз кроликов. Л.: Колос, 1982.
С. 24–28.
3. Тимошко М.А. Микрофлора пищеварительного тракта
молодняка сельскохозяйственных животных. Кишинёв:
Штииница, 1990. С. 27–69.
Морфологические показатели крови собак
при демодекозе
Л.Н. Скосырских, к.в.н., О. А. Столбова, к.в.н.,
Тюменская ГСХА
Кровь является одной из жидких важнейших
сред организма, посредством которой производится пополнение питательными веществами
органов, тканей и клеток, необходимыми для
жизнедеятельности (витаминами, макро- и
микроэлементами и т.д.), и выводит продукты
метаболизма. Изменение морфологического и
биохимического состава крови – показатель
развивающихся латентных стадий болезни организма, обусловленных нарушением обмена
веществ [1, 2].
В клинической практике большое диагностическое значение имеет исследование морфологического состава крови, включающее подсчёт форменных элементов – эритроцитов, лейкоцитов,
тромбоцитов и выведение лейкограммы [3, 4].
Цель исследования – выяснить морфологический статус животных при демодекозной
инвазии.
Материалы и методы. Материалом морфологических исследований служила цельная кровь.
Всего в опыте участвовало 30 собак различных
пород (немецкие и среднеазиатские овчарки,
ротвейлеры, доберманы) в возрасте от одного
до трёх лет, сформированных в 3 группы по
10 животных в каждой. В 1-ю группу входили
больные собаки, у которых демодекоз протекал
в чешуйчатой форме и носил, в основном, локальный характер, во 2-ю – с генерализованной
формой, в 3-ю – клинически здоровые собаки,
подобранные по методу аналогов. Кровь брали
из латеральных подкожных вен предплечья или
голени. В цельной крови подсчитывали общее
количество эритроцитов и лейкоцитов, выводили
лейкоцитарную формулу в мазках, окрашенных
по Романовскому–Гимзе под иммерсионной системой микроскопа путём дифференциального
подсчёта 100 лейкоцитов по методу Шиллинга
(Меандра) [1, 2]. Полученный цифровой материал статистически обработали в соответствии
с методами по биометрии [5, 6], с вычислением
136