Пермякова Н.Е., И. П. Пьянзина, Волков Г.С. МОРФОЛОГИЧЕСКОЕ ОБОСНОВАНИЕ ПРИМЕНЕНИЯ ПРЕПАРАТА УГЛЕКИСЛЫХ СОЛЕЙ КАЛЬЦИЯ И МАГНИЯ «МИЦЕЛЛАТ» ПРИ ТРАВМАТИЧЕСКИХ ДЕФЕКТАХ ЧЕЛЮСТЕЙ В ЭКСПЕРИМЕНТЕ Ижевская государственная медицинская академия В данном докладе рассматривается использование препарата углекислых солей кальция и магния «Мицеллат» в эксперименте. Ключевые слова: травматология челюстно-лицевой области, переломы нижней челюсти, препараты кальция. В настоящее время одной из наиболее актуальных проблем не только медицинской практики, но и социальной жизни является вопрос травматологии челюстно-лицевой области. Многочисленные научные исследования российских и зарубежных ученых свидетельствует об утяжелении травм, неуклонном росте числа осложнений приводящих к смертельным исходам и инвалидизации пострадавших, в частности после дорожно-транспортных происшествий. Наиболее чаще из всех костей лицевого скелета повреждается нижняя челюсть. Кроме того, все травматические повреждения костей сопровождаются дефицитом микроэлементов, которые имеют большое значение в построении новообразованной костной ткани, и недостаток микроэлементов удлиняет процесс реабилитации этих больных. В первую очередь, это касается кальция, который лежит в основе костной ткани. Поэтому вполне объяснимо и обосновано назначение кальциевых препаратов per os, путем внутривенного введения или с использованием электрофоретического введения при лечении травматических повреждений костей. Однако, прием обычных кальциевых препаратов не всегда достигает должного эффекта из-за того, что до 90% принимаемых препаратов не усваивается и выводится из организма естественным путем не входя в обменные процессы и не поступают в костную ткань. В этой связи представляет интерес изучение влияния на процессы репаративной регенерации костной ткани препарата углекислых солей кальция и магния «Мицеллат» при заживлении искусственных травматических дефектов нижней челюсти. Целью нашего исследования является оценка эффективности влияния препарата углекислых солей кальция и магния «Мицеллат» на репаративные процессы в костной ткани челюстей в эксперименте. Материалы и методы исследования. Работа проводилась в Центральной научно-исследовательской лаборатории Ижевской государственной медицинской академии, по принятым правилам – «Правила лабораторной практики в Российской Федерации (GLP) (утв. Приказом Министерства здравоохранения Российской Федерации от 19.06.2003. №267)». В эксперименте наблюдались 84 животных (взрослых половозрелых кроликах-самцах) весом 3 – 5 кг. Все животные находились в условиях вивария. Животные при визуальной оценке выглядели здоровыми. Признаки болезни (вялость, отсутствие аппетита, взъерошенная шерсть) отсутствовали. Все животные были разделены на 4 группы. 1 группа – (21 кролик) контрольная группа животных, которым после проведения операции никаких воздействий не применялось. Заживление проходило в естественных условиях репарации. У 12 животных операция проводилась наружным доступом, у 9 – со стороны полости рта. 2 группа – (21 кролик). Операция проводилась со стороны полости рта. В эту группу введены животные, которым препарат мицеллат вводился путем дачи питьевой воды, в состав которой входил мицеллат О в концентрации 1 капля на 1 стакан воды 3 группа – (21 кролик). С целью исследования процесса заживления открытой раны операция моделирования костного дефекта операция проводилась наружным доступом путем разреза кожи в поднижнечелюстной области, обнажении кости нижней челюсти и формирования костного дефекта этим животным после операции накладывалась повязки, смоченные раствором препарата мицеллат А в концентрации 1 капля на 1 стакан воды. 4 группа – (21 кролик) – этой группе животных накладывалась повязка на рану с препаратом мицеллат А и в послеоперационном периоде давался раствор мицеллат О в качестве питья. Челюсти животных осматривали, проводили макрофотографирование на цифровую фотокамеру и измеряли дефекты кости. Микропрепараты готовились из материала, полученного на 7, 14, 21, 30, день эксперимента. Для гистологического исследования выпиливали фрагменты челюстей на месте операции с дефектами в виде куба с размером граней 5 мм, которые фиксировались в нейтральном 10% формалине. Костные блоки декальцинировались 2-2,5 недели в растворах уксусной и муравьиной кислот. Затем они отмывались от кислот и проводились по восходящим спиртам. После заливки в парафин санным микротомом формировали срезы толщиной в 10 мкм. Микропрепараты окрашивались водными красителями «гематоксилинэозином» и «азаном» по Гейденгайну. Гистологические препараты изучались под микроскопом Биолам Р-11(ЛОМО). Микрофотографирование проводилось на цифровую фотокамеру Olympus E-500 при помощи микрофотонасадки аналогичной (МФН-11). Результаты исследования: Состояние кожной раны и раны со стороны полости рта: При визуальной оценке животных выявлено, что кролики всех исследуемых групп на протяжении 1 – 2 дней были апатичными, вялыми. Отмечался незначительный отек тканей в операционной зоне. У 1 группы животных отек тканей сохранялся на протяжении 3 – 5 дней. У 6 кроликов (из 12, которым проведена операция наружным доступом) отмечалось незначительное нагноение кожной раны. У 3 из 12 отмечалась незначительная экссудация раневого содержимого без нагноения. У остальных животных нагноения не отмечалось. Во 2 группе у 3 кроликов из 21 отмечалась экссудация раневого содержимого, которое протекало на протяжении 3 дней, но нагноения не отмечалось, У животных 3 и 4 группах экссудации и нагноения кожной раны не определялось. Как видно, из полученных данных, повязки с раствором мицеллата А способствуют заживлению кожной раны без признаков нагноения. Гистологические исследования показали следующую картину: 1 гр.: на 7 сутки в дефекте отмечается обильное количество лейкоцитов, костная стенка представлена пластинчатой костной тканью с неровными краями. Наблюдается гнойно-воспалительная реакция. Развитие остеонекрозов с образованием мелких секвестров и соответствующая реакция окружающих тканевых структур. На 14 сутки процессы демаркации и секвестрации завершены. Секвестры представлены фрагментами безостеоцитной костной ткани неправильной формы с изъеденными краями. Ткань, окружающая костный секвестр неоднородна. Состоит из нескольких слоев, постепенно переходящих друг в друга. Непосредственно к секвестрам прилежит пиогенная зона, представленная большим числом лейкоцитов, лимфоцитов, макрофагов, частью подвергшихся распаду. Далее следует широкая зона грануляционной ткани, содержащей большое количество малодифференцированных элементов соединительной ткани. На 21 сутки в массе грануляций имеются беспорядочно ориентированные волокна. Помимо выраженных деструктивных изменений, типичных для гнойно-некротического процесса, обнаруживаются интенсивные продуктивные реакции во всех структурных компонентах костной ткани, в том числе процессы новообразования костных балок, дефект заполнен участками гиалинового хряща. На 30 сутки в дефекте отмечается обильное количество лейкоцитов, костная стенка представлена пластинчатой костной тканью с неровными краями. Наблюдается гнойно-воспалительная реакция. Развитие остеонекрозов с образованием мелких секвестров и соответствующая реакция окружающих тканевых структур. 2 гр.: на 7 сутки отмечается отсутствие скопления лейкоцитов. Начало организации гематомы. Клеточная инфильтрация лимфоцитов и плазматических клеток. Явления резорбции отсутствуют. На 14 сутки более значительное образование эндотелия, костной ткани. Наблюдается хондроидная ткань с остатками гематомы. Резорбция костных микросеквестров, некротизированные волокна скелетных мышц. На 21 сутки более зрелая хрящевая ткань, отмечается интенсивное образование пролиферативных клеток базального слоя надкостницы, образование гиалинововго хряща. На 30 сутки отмечается отсутствие скопления лейкоцитов. Начало организации гематомы. Клеточная инфильтрация лимфоцитов и плазматических клеток. Явления резорбции отсутствуют. 3 гр.: на 7 сутки в препарате полностью отсутствуют признаки воспалительных реакций. Отмечается формирование хряща и эндотелия. Имеются элементы костной ткани. Остатки гематомы. На 14 сутки более зрелая хрящевая ткань, отмечается интенсивное образование пролиферативных клеток базального слоя надкостницы, образование гиалинововго хряща. Молодая соединительная ткань с выраженным явлением ангиоматоза. Вдоль костного отверстия находятся остеоциты и элементы построения костных балок. На 21 сутки в препаратах много эндотелия и формирующихся костных балок, молодая сформированная кость. На 30 сутки в препарате полностью отсутствуют признаки воспалительных реакций. Отмечается формирование хряща и эндотелия. Имеются элементы костной ткани. Остатки гематомы. И 4 гр.: на 7 сутки отмечается отсутствие скопления лейкоцитов. Начало организации гематомы. Клеточная инфильтрация лимфоцитов и плазматических клеток. Явления резорбции отсутствуют. На 14 сутки более значительное образование эндотелия, костной ткани. Наблюдается хондроидная ткань с остатками гематомы. Резорбция костных микросеквестров, некротизированные волокна скелетных мышц. На 21 сутки более зрелая хрящевая ткань, отмечается интенсивное образование пролиферативных клеток базального слоя надкостницы, образование гиалинововго хряща. На 30 сутки явления резорбции отсутствуют. Отмечается клеточные элементы костной ткани. Анализируя результаты работы можно сделать заключение, что восстановление костных дефектов наиболее быстро отмечается у кроликов 4 группы. Таким образом, применение препарата углекислых солей кальция и магния «Мицеллат» при заживлении искусственных травматических дефектов нижней челюсти позволяет оптимизировать процессы репаративной регенерации костной ткани. Литература: 1. Айвазян, В.П. Стимуляция остеогенеза при хронических остеомиелитах костным матриксом. Журнал экспериментальной и клинической медицины. 2000. № 4. 398-401. 2. Добровольский Г.А. Планирование медико-морфологического эксперимента. Саратов. Из-во Саратовского университета. 1995. 128. 3. Кислых Ф.И., Дудин А.Б., Устин В.В. Оптимизация региональной гемодинамики у больных с переломами нижней челюсти под влиянием физических методов лечения. Функциональная диагностика в стоматологии. Труды ЦНИИС. Том 14. М. 1984. 100-101. 4. Коныгин Г.Н., Гильмутидинов Ф.З., Дорофеев Г.А. и др. Экспериментальное обоснование получения кальция глюконата. Материалы конференции «Актуальные вопросы детской хирургии» Ижевск. 2003. 56-59 5. Kaban L.B., Glowacki J., Murrey J.E. Repair of experimental mandibular bony defects in rats. Surg. Forum. 1998. V. 30. 519-521.