179-183. 5. Экология и селекция животных... 2002. – 110 с. 6....

179-183. 5. Экология и селекция животных / Г.В. Родионов. – М.: Колос,
2002. – 110 с. 6. Прудов, А.И. Морфофункциональные особенности
вымени симментал х красно-пестро-голштинских помесей / А.И. Прудов /
VIII (I Всероссийский) симп. по машинному доению с.-х. животных
(тезисы докладов): Оренбург, 1995. – С. 131-132. 7. Сафиуллин, Н.А.
Повышение эффективности машинного доения коров. Казань: изд-во
«АБАК-Центр оперативной печати»,1997. - 235 с. 8. Spakauskas, V. A
comparison of inderect methods of subclinical mastitis in lactating dairy cows.
Vet.arhiv. – 2006. - № 2. – P. 101-105.
ОЦЕНКА РАВНОМЕРНОСТИ РАЗВИТИЯ ЧЕТВЕРТЕЙ ВЫМЕНИ У КОРОВ
Каналина Н.М.
Резюме
Исследована равномерность развития четвертей вымени у коров.
ASSESSMENT OF THE UNIFORMITY OF UDDER QUARTERS IN COWS
Kanalina N.M.
Summary
The assessment of the uniformity of udder quarters in cows was tested.
УДК 619:616.995.182:636.085.13
ВЛИЯНИЕ АМИНОКИСЛОТ НА РОСТ 5 РАЗНЫХ ШТАММОВ
СТРЕПТОКОККОВ
Моряшова Л.А., Алимов А.М.
ФГОУ ВПО «Казанская государственная академия ветеринарной
медицины имени Н.Э. Баумана»»
Ключевые слова: аминокислоты, питательные потребности,
стрептококки, стимулирование роста.
Keywords: amino acids, nutritious requirements, streptococci, growth
stimulation.
Введение.
Определение
потребности
микроорганизмов
в
аминокислотах и других факторах роста имеет важное значение для
составления питательных сред [1, 2, 3, 4, 5]. Эффективность выделения
первичных культур стрептококков во многом обусловлена качеством
питательных сред, которые не всегда обеспечивают достаточно
394
интенсивный рост. Поэтому актуальной остается проблема их
совершенствования. Аминокислотную потребность стрептококков важно
знать при составлении питательных сред для выделения первичных
культур из организма хозяина или других объектов, поддержания штаммов
в лабораторных условиях, а также оптимизации питательных сред
культивирования штаммов с целью получения биопрепаратов. Однако в
доступной литературе нет данных о потребности стрептококков в
аминокислотах.
Цель. Определение потребности стрептококков в аминокислотах и
других факторах роста.
Материалы и методы. Исследуемые штаммы стрептококков были
изолированы от телят и свиней неблагополучных по стрептококкозу
хозяйствах из разных регионов РФ.
В работе использовали 18 аминокислот. Для определения чистоты и
однородности исследуемых культур готовили мазки на предметных
стеклах и окрашивали по Грамму.
Бактериальную массу для исследований получали на мясопептонном агаре с добавлением 0,2% глюкозы. Односуточную культуру,
выращенную в стационарных условиях при 37°С, смывали с поверхности
агара стерильным физиологическим раствором хлористого натрия. Клетки
микроорганизмов отмывали два раза от остатков питательной среды
физиологическим раствором путем центрифугирования при 850 g в
течение 15 минут.
Концентрацию клеток в взвесях определяли фотометрией на КФК-2
на основе калибровочного графика, составленного согласно стандарту
мутности ГКИ им. Л.А. Тарасевича. Измерение оптической плотности
микробной взвеси проводили относительно контрольной прозрачной
среды при 440 нм в кюветах с расстоянием 5 мм.
Изучали рост пяти штаммов стрептококков в синтетических средах с
добавлением глюкозы в конечной концентрации 0,2% и отдельных
аминокислот: L- цистин, DL-аспарагиновая кислота, DL- фенилаланин, Lтриптофан, DL- аланин, L-глицин(аминоуксусная кислота), Lглутаминовая кислота, L- глутамин, DL- серин, DL- треонин, L-гистидин,
L-изолейцин, L- пролин, DL-лизин, DL- валин, DL-метионин, DL-лейцин,
DL-тирозин. Конечная концентрация L- форм аминокислот в среде
составляла 5 мкг/см ³, DL-форм – 10 мкг/ см ³. В качестве минимальной
солевой среды использовали: однозамещенный фосфорнокислый калий –
1,5, двузамещенный фосфорнокислый калий – 7,5, трехзамещенный цитрат
натрия – 0,4, сернокислый аммоний – 1,0 и сернокислый магний – 0,1 ( в г
на 1 литр дист. воды ), рибофлавин 1 мкг/мл, тиамин 5 мкг/мл.
Питательные среды стерилизовали автоклавированием при 120°С в
течение 30 минут, затем в стерильные растворы вносили глюкозу и
витамины. Исходные растворы глюкозы и витаминов стерилизовали путем
395
фильтрации через мембранные фильтры. Посев производили отмытой
суспензией стрептококков по 10 млн. микробных клеток на 1 мл. Культуры
инкубировали при 37°С в течение 24 и 48 часов. Концентрацию бактерий
определяли фотометрически.
Результаты исследований. Проведенные опыты показали, что рост
стрептококков варьирует в зависимости от состава аминокислот
питательной среды.
Накопление биомассы стрептококков штамма СЛТ увеличивался в
присутствии глутамина в 7 раз; аспарагиновой кислоты, изолейцина,
фенилаланина, аланина – в 8 раз; глутаминовой кислоты, гистидина – в 9
раз; цистина– в 10 раз; лизина - в 11 раз по сравнению с исходными
условиями.
Наиболее интенсивный рост стрептококков штамма СЛК
наблюдался в присутствии аспарагиновой кислоты, серина, треонина,
тирозина (увеличение оптической плотности суспензии в 23-24 раза), в
присутствии глутамина и глутаминовой кислоты накопление биомассы
стрептококков наростало в 20-22 раза, аланин, глицин, гистидин, лизин,
триптофан, фенилаланин обеспечивали 18-19 кратное нарастание
биомассы стрептококков.
Рост стрептококков штамма СУТ увеличивался в присутствии
тирозина в 31 раз; лизина- в 28 раз; аспарагиновой кислоты, серина,
треонина, тирозина в 23-24 раза; глутамина - в 22 раза; аланина,
аспарагиновой кислоты – в 23-25 раз; глутамина – в 14 раз.
Накопление биомассы стрептококков штамма САТ увеличивался в
присутствии аланина, глутамина, тирозина, аспарагиновой кислоты,
триптофана в 14-15 раз по сравнению с исходными условиями.
Наиболее интенсивный рост стрептококков штамма СЛС
наблюдался в присутствии аланина, глицина(аминоук.кислоты),
глутаминовой кислоты, треонина (увеличение оптической плотности
суспензии в 13-14 раза), в присутствии аспарагиновой кислоты, пролина,
триптофана, изолейцина, лейцина, тирозина обеспечивали 11-12 кратное
нарастание биомассы стрептококков.
Как показали результаты проведенных исследований, отдельные
штаммы отличаются друг от друга по потребности в аминокислотах.
По результатам полученных данных можно выделить 9 аминокислот
существенно усиливающих рост штаммов стрептококков: аспарагиновая
кислота, фенилаланин, триптофан, аланин, глутаминовая кислота,
гистидин, глутамин, лизин, тирозин.
На основании этих данных можно составить оптимальную
питательную среду для культивирования стрептококков, а способность
роста стрептококков в полученной синтетической среде может
применяться для характеристики штаммов.
396
ЛИТЕРАТУРА: 1. Алимов А.М. Обмен аминокислот у бактерий рода
Brucella и Listerie / А.М. Алимов, В.П. Корунов
// Материалы
конференции молодых ученых. - Рига.- 1977.- С. 30-31. 2. Герхард Ф.
Методы общей бактериологии / Ф. Герхард и др.//- Москва «Мир», 1983.- 1
том, С. 536. 3. Калмыкова Ю.В. Теплоэнергетические процессы у
возбудителей сальмонеллеза / Ю.В. Калмыкова //- Казань.- 2003.Кандидатская диссер. (ВНИВИ).-С. 135. 4. Лабинская А.С. Микробиология
с техникой микробных исследований / А.С. Лабинская //- М.: Медицина,
1978.- С. 392. 5. Равилов А.З. Микробиологические среды / А.З. Равилов.,
Р.Я. Гильмутдинов., М.Ш. Хусаинов //- Казань. – Фэн. - 1999.- С. 398.
ВЛИЯНИЕ АМИНОКИСЛОТ НА РОСТ 5 РАЗНЫХ ШТАММОВ СТРЕПТОКОККОВ
Моряшова Л.А., Алимов А.М.
Резюме
Изучение питательной потребности 5 штаммов стрептококков в
аминокислотах и других факторов роста. Рост стрептококков
стимулировали аспарагиновая кислота, фенилаланин, триптофан, аланин,
глутаминовая кислота, гистидин, глутамин, лизин, тирозин.
INFLUENCE OF AMINO ACIDS ON GROWTH 5 DIFFERENT ШТАММОВ
STREPTOCOCCI
Morjashova L.A., Alimov A.M.
Summary
Studying of nutritious requirement 5 штаммов streptococci in amino
acids and other factors of growth. Growth of streptococci was stimulated
aspartic acid, fenilalanin, triptofan, alanin, glutamin with acid, a histidine, a
glutamine, a lysine, tirozin.
УДК – 636.085/.087 + 612.392.43 : 636.034
ВЛИЯНИЕ КОРМОВОЙ СЕРЫ НА МОЛОЧНУЮ
ПРОДУКТИВНОСТЬ КОРОВ И СЫРОПРИГОДНОСТЬ МОЛОКА
Ахметзянова Ф.К., Якупова Л.Ф., Фасахов А.А.
ФГОУ ВПО «Казанская государственная академия ветеринарной
медицины имени Н.Э. Баумана»
Ключевые слова: кормовая сера, молочная продуктивность,
физико-химическая оценка молока, сыропригодность.
397