СТРАТЕГИЯ УСПЕХА ПРИМЕНЕНИЯ ПРОБИОТИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ

СТРАТЕГИЯ УСПЕХА ПРИМЕНЕНИЯ ПРОБИОТИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ
ПРИ АНТИБИОТИКОТЕРАПИИ КОЛИБАКТЕРИОЗА ПОРОСЯТ И ТЕЛЯТ
Д.А.Евглевский, К.В. Татарников, И.В.Ермилов, В.И. Чернов, С.А.Федосова, Е.А.Стебловский
Аннотация. Представлены результаты изучения и
апробации способов применения пробиотиков при антибиотикотерапии колибактериоза поросят.
Ключевые слова: пробиотики, антибиотики, микроорганизмы, Е.coli.
Острые желудочно-кишечные болезни – диарея
(понос), диспепсия (нарушение пищеварения), различные виды бактерий, вирусов, но основными возбудителями являются патогенные Е.coli и сальмонеллы. Кишечную палочку впервые в 1885 г. выделил молодой
немецкий врач Теодор Эшерих, а сальмонеллы в США
Д. Сальмон. Указанные микроорганизмы вызывают
диареи, токсикозы.
Кишечная палочка разделена на пять групп: энтеротоксигенные, энтероинвазионные, энтерогеморрагические, энтероадгезивные и энтеропатогенные. Экзотоксины подразделяются на цитоксины, разрушающие эндотелий капилляров и клетки стенки кишечника и цитотоксины, стимулирующие секрецию клетками кишечника жидкости, содержащие ионы Na, К, СL, биокарбонаты. Это приводит к нарушению водно-солевого
обмена и развитию диареи. Выделяемые деструкции
кишечной палочки эндотоксины в комплексе с эндотоксинами усиливают токсическое действие.
Кишечные палочки передвигаются с помощью жгутиков, а на поверхности имеются реснички, рецепторы,
которые называются еще фимбриями или адегизинами
или пилями, обеспечивающие слипание бактерий в
агломераты и образование микробной пленки на поверхности жидкой питательной среды, а также прилипание к клеткам органов тканей, фимбрии, адгезины,
рецепторы, пили Е.coli вызывают агглютинацию
(склеивание эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов и
обеспечивают бактериями колонизацию кишечника. Их
действие нарушается при обработке Е.coli 0,1-0,25%
трипсина, удалением из среды ионов Са и т.д.
Исходя из вышеизложенного для борьбы с колибактериозом поросят необходимо своевременно выделить Е.coli, определить их чувствительность к антибиотикам, получить инактивированную вакцину, а для восстановления нормальной микрофлоры кишечника применять пробиотики, пребиотики и сбалансированные
водно-солевые растворы.
В работе использованы поросята и поросные свиноматки ряда комплексов Белгородской, Курской и Калужской областей, больных колибактериозом, а также
свежевыделенные Е.coli, модифицированные полимеризацией и детоксикацией антибиотики и пробиотические препраты и пребиотики отдельно и в комплексе
водно-солевыми растворами.
Повышение выделяемости Е.coli из патматериала
достигнуто обработкой суспензий из органов, тканей,
фекалий вначале 0,1-0,2% раствором лимонной кислоты в течение 20-30 минут, а затем 0,1-0,2% раствором
этония или перекиси водорода в том же режиме. После
нейтрализации суспензии 5-7% раствором аммиака
проводили высев на плотную элективную синтетическую среду с индикатором. При сильно загрязненном
патматериале фекалий проводили дополнительную обработку суспензии 0,1-0,2% раствором янтарной кислоты с с последующей нейтрализацией 5-7% раствором
аммиака до рН 6,8 – 7,2. Практически во всех 87 пробах
из разных комплексов выделились Е.coli и отсутствовал
рост других микроорганизмов.
Для подтверждения эффективности предложенного
способа в качестве контроля использовали суспензию
из лимфоузлов, печени, легких, обсемененнную 10-20
тысячами сальмонеллами, стафилококками, стрептококками.
Указанный способ обработки суспензии патматериала практически подавлял рост посторонней микрофлоры и обеспечивал рост кишечной палочки на предложенной элективной синтетической среде с агаром и
индикатором.
Повсеместное использование энрофлоксацина и сочетание одних антибиотиков с другими при выращивании поросят приводят к появлению резистентных микроорганизмов в том числе и Е.coli, сальмонелл, микоплазм.
По принципу полимеризации и детоксикации токсинов при получении анатоксинов с успехом повысили
биоцидные и лечебные свойства ряда антибиотиков.
Однако применение «старых» и новых «сильных» модифицированных антибиотиков при желудочнокишечных болезнях поросят в большей степени вызвало in vivo и in vitro подавление и гибель не только патогенных, но и бактерий – санитаров, продуцентов микроэлементов, витаминов. Это пробиотики, эубиотики,
которые еще и нормализуют микрофлору желудочнокишечного тракта поросят, телят и т.д.
Возникает вопрос – что делать и кто виноват в увеличении моно- и полирезистентных микроорганизмов?
Отсутствие запрета в США и Канаде на применение
антибиотиков в качестве кормовых добавок еще более
углубляет положение. В тоже время в США установлено, что половина антибиотиков пациентам абсолютно
не нужна.
В настоящее время после антибиотико-терапии
применяют эубиотики (пробиотики), которые разделены на следующие группы. Это классические и монокомпонентные эубиотики – бифидум, лакта, колибактерин и поликомпоненнтные – бифилонг, аципол, линекс,
бифацид, а также бактерии, содержащие сенную палочку – B. subtilis – биоспорин, энтерол и т.д. и генноинженерные эубиотики. Повсеместное применение пробиотических микроорганизмов не гарантирует эволюционное развитие нормомикрофлоры в условносапрофитные, условно-патогенные микроорганизмы
или их ассоциации.
Отсутствие исследований на дистиоз у животных,
централизованного производства, износ оборудования,
дороговизна процесса внедрения новых препаратов и
питательных сред, условий хранения, нормативного
контроля и многоуровневый маркетинг усугубляет положение. В тоже время упрощенная сертификация импортируемых препаратов и материальный интерес провайдеров увеличивает импорт.
При изучении качества и ассортимента пробиотических препаратов и их применение выявили нарушение температурного режима хранения, уменьшение
числа жизнеспособных эубиотических микроорганизмов, а в отдельных случаях их полное отсутствие. Высев пробиотических микроорганизмов на существующие и предложенную жидкую и с агаром синтетическую среду выявил слабый рост или отсутствие роста, а
в отдельных препаратах отечественных и импортируемых обнаружена посторонняя микрофлора - Е.coli,
сальмонелл, протей, стафилококков.
Повышение эффективности биоцидного и лечебного действия антибиотиков достигнуто полимеризацией
и детоксикацией по принципу получения анатоксинов и
пробиотических препаратов путем выращивания микроорганизмов на предложенной синтетической среде с
лимонной и янтарной кислотами и К и Nа, формирующие в организме потенциал резервной щелочности.
У модифицированных линко-спектина, энрофлоксацина, амоксициллина, тетрациклина, стрептомицина
и др. выявлена вдвое повышенное биоцидное действие
на стафилококки, Е.coli, сальмонеллы и проявлена фунгицидная и вирусоцидная активность.
Восстановление водно-солевого обмена у поросят и
телят во время диареи и после антибиотикотерапии в
течение 2-3 суток с успехом использовали солевой раствор, содержащий в 1 л воды сукцината-калия-4-5 г,
хлористого натрия – 2-3-5 г, хлористого калия – 2-3 г,
NaHCO3 -3-4 г и глюкозы -30-40 г. Это обеспечило восстановление водно-солевого обмена и удаление антибиотиков и патогенных микроорганизмов и их токсинов
из просвета и стенок кишечника.
В последующем для нормализации нормфлоры и
пищеварения и обеспечения противодействия патогенной микрофлоры использовали отечественные и импортируемые пробиотики. Для повышения жизнедеятельности пробиотических микроорганизмов проводили их
выращивание на жидкой синтетической средств течение 2-3 суток в биоколбах с объемом в 1 л жидкости.
Суспензию пробиотических микроорганизмов выпаивали поросятам и телятам два раза в день до кормления
или с кормом в течение 3-5 суток.
Полученные результаты вызывают необходимость
изучения спектра патогенных микроорганизмов, биоцидное действие коммерческих и модифицированных
антибиотиков и их использование при колибактериозе
поросят, а затем оральное применение солевого раствора и учитывать жизнедеятельность пробиотических
микроорганизмов перед применением.
Сведения об авторах
Евглевский Дмитрий Анатольевич, кандидат ветеринарных наук, научный сотрудик Курского НИИ АПП.
Татарников Кирилл Викторович, аспирант ФГБОУ ВПО
«Курская ГСХА».
Ермилов Иван Валерьевич, кандидат ветеринарных наук,
директор Курской областной ветеринарной лаборатории.
Федосова Светлана Александровна, аспирант ФГБОУ
ВПО «Курская ГСХА».
Чернов Вадим Евгеньевич, аспирант ФГБОУ ВПО «Курская ГСХА».
Стебловский Евгений Александрович, студент факультета ветеринарной медицины ФГБОУ ВПО «Курская ГСХА».