А.М.Третьяков, П.И. Евдокимов, Ю.А.Кушкина, В.А.Шабаев Улан-Удэ 2007 г

А.М.Третьяков, П.И. Евдокимов, Ю.А.Кушкина, В.А.Шабаев
Паразитозы свиней и меры борьбы с ними на промышленных комплексах и
специализированных фермах
Улан-Удэ
2007 г
1
ДЕПАРТАМЕНТ КАДРОВОЙ ПОЛИТИКИ И ОБРАЗОВАНИЯ ПРИ
МСХ РФ
ФГОУ ВПО Бурятская государственная сельскохозяйственная академия
им. В.Р. Филиппова
кафедра паразитологии и эпизоотологии
А.М.Третьяков, П.И.Евдокимов, Ю.А.Кушкина, В.А.Шабаев
Паразитозы свиней и меры борьбы с ними на промышленных комплексах и
специализированных фермах
Методические указания
УЛАН-УДЭ
Издательство ФГОУ ВПО БГСХА
2007
2
УДК:
Печатается по решению Методического совета
ФГОУ
ВПО Бурятская государственная сельскохозяйственная академии имени
В.Р.Филиппова
РЕЦЕНЗЕНТ
В.Ц.Цыдыпов – заведующий кафедрой микробиологии, вирусологии
и ВСЭ, доктор ветеринарных наук, профессор.
Т.И.Филиппова – начальник отдела РГУ ветеринарии БРСББЖ.
Т 66 А.М. Третьяков, П.И.Евдокимов, Ю.А.Кушкина, В.А.Шабаев
Методическое пособие по диагностике паразитарных заболеваний животных
для самостоятельной работы студентов факультета ветеринарной медицины
очного, ускоренного и заочного обучения, а также для практикующих
ветеринарных врачей и работников ветеринарных лабораторий. – Улан-Удэ:
Издательство ФГОУ ВПО БГСХА имени В.Р.Филиппова, 2007. - с.
В методических рекомендациях приводятся краткие сведения о
наиболее распространенных гельминтозах и протозоозах свиней, особенностях проявления их на крупных комплексах, способах диагностики, а также
методах и средствах дегельминтизации свиней, дезинвазии помещений,
почвы и навоза. Методические рекомендации рассчитаны на студентов
ветеринарных учебных заведений, ветеринарных и зоотехнических
специалистов, руководителей свинокомплексов и личных подсобных
хозяйств.
УДК
© Третьяков А.М., Евдокимов П.И., КушкинаЮ.А., Шабаев В.А. 2008.
© БГСХА им В.Р. Филиппова, 2008.
3
Содержание
ВВЕДЕНИЕ …………………………………………….. 3
1. ОСНОВНЫЕ НЕМАТОДОЗЫ СВИНЕЙ…………………5
Аскаридоз………………………………………………………..5
Эзофагостомоз…………………………………………………7
Трихоцефалез…………………………………………………...7
Оллуланоз свиней ……………………………………………..12
2. Основные протозоозы свиней…………………………24
Эймериоз (кокцидиоз) свиней………………………………….24
Балантидиоз свиней…………………………………………….29
Амебиаз (амебная дизентерия)………………………………..33
Трихомоноз свиней (кишечная форма)………………………..35
ЛИТЕРАТУРА…………………………………………………….36
4
ВВЕДЕНИЕ
Создание крупных специализированных хозяйств и дальнейшая
деконцентрация свиноводства создают предпосылки для внедрения прогрессивной
технологии ведения отрасли и повышения экономической эффективности
производства свинины. Однако наряду с положительными сторонами уплотненное
содержание животных затрудняет профилактику и борьбу с гельминтозами и
создает совершенно новые экологические условия, определяющие во многом
эпизоотологию протозойных болезней. В этих условиях даже небольшое число
животных с субклинической формой паразитозов способствует значительному
рассеиванию яиц, личинок и ооцист в помещениях и почве территории ферм.
Инвазия может быстро распространиться и причинить ущерб хозяйствам.
В желудочно-кишечном тракте свиней паразитируют несколько видов
гельминтов. В Сибири чаще встречаются аскариды, трихоцефалы и эзофагостомы.
Они регистрируются у свиней как в обычных, так и в специализированных
хозяйствах и крупных комплексах. Результаты исследований, анализ данных
ветеринарной отчетности, ветеринарных лабораторий показывают, что заболеваемость и падеж свиней от гельминтозов снижаются. Однако имеется ряд хозяйств,
где аскаридоз, эзофагостомоз, трихоцефалез, эймериоз и балантидиоз еще
распространены, поэтому борьба с гельминтозами свиней остается актуальной
задачей [9, 13, 17, 18].
Протозоозы свиней сравнительно мало изученные болезни, которые
довольно часто встречаются в свиноводческих хозяйствах Республики Бурятия.
Необходимо отметить, что в практике на кишечные болезни свиней, вызываемые
простейшими, не обращают серьезного внимания. Поэтому в ветеринарной
отчетности эти заболевания не указываются. Это еще связано с тем, что нет
эффективных копроскопических методов исследования для выявления таких
кишечных простейших как ооцист кокцидий, балантидий, амеб и трихомонад. В
результате неправильно поставленного диагноза (расстройство деятельности
кишечника на почве погрешностей в кормлении, отравления, инфекционные
заболевания и др.), применяемые лечебно-профилактические мероприятия не дают
ожидаемого эффекта.
I. ОСНОВНЫЕ НЕМАТОДОЗЫ СВИНЕЙ
Аскаридоз
Заболевание вызывается нематодой Ascaris suum. Длина самца 10-22 см,
самки - 20-35 см. Гельминты паразитируют в тонком отделе кишечника. Заболевает
преимущественно молодняк 1-7-месячного возраста. Вначале у них поражаются
легкие, печень и лимфатические узлы, а затем - кишечник. Животные резко
отстают в росте и развитии.
Аскариды развиваются без участия промежуточного хозяина. Самки
откладывают в просвет кишечника до 200 тыс. яиц в сутки, которые с фекалиями
выделяются во внешнюю среду. В благоприятных условиях они в течение 20-40
дней становятся инвазионными, т.е. способными заражать животных.
Инвазирование свиней происходит через корма и почву, содержащие инвазионные
яйца, а также при поедании дождевых червей - резервуарных хозяев аскарид.
5
В тонком отделе кишечника личинки активно проникают в кровеносные
сосуды и током крови заносятся в печень. Здесь, нарушал целостность паренхимы,
попадают в малый круг кровообращения и мигрируют по легочной артерии в
легкие. Из легочных капилляров они внедряются в ткань, попадают в бронхи и
трахею и откашливаются со слизью в ротовую полость. Вместе со слюной личинки
заглатываются. В тонком отделе кишечника за 1,5-3 месяца развиваются
половозрелые аскариды.
Источником инвазии служат больные свиньи, выделяющие яйца гельминтов
с калом. Большую опасность представляют навоз, лежащей длительное время на
территории ферм, и почва выгульных двориков. Инвазирование чаще происходит в
свинарниках, где нерегулярно убирают фекалии, а помещение находится в
антисанитарном состоянии. Поросята-сосуны заражаются через загрязненное вымя
свиноматок, при облизывании окружающих предметов, особенно в стойловый
период в свинарниках с деревянным полом, переполненных животными. На
фермах, где свиньи находятся на одних и тех же выгульных площадках, летних
лагерях, инвазированность животных летом бывает высокой. Массовому
заражению поросят способствует неполноценное кормление, особенно при гипо- и
авитаминозе А и В.
На комплексах промышленного типа источником инвазии служат ремонтные
свиньи, завозимые из хозяйств-поставщиков. При аскаридозе обычно маточное
поголовье и хряки заражены в меньшей степени, чем ремонтные животные.
Экстенсивность инвазии держится на одном уровне и не зависит от времени года.
Хотя свиноматки и инвазированы аскаридами, при соблюдении технологии
поросята на комплексе не заражаются.
Распространению аскаридоза способствует весьма высокая устойчивость яиц
к воздействию различных факторов внешней среды. В сырых свинарниках, навозе
и почве яйца остаются живыми в течение 12 месяцев и более. Значительную роль в
развитии яиц играет структура почвы. Лучше они развиваются в супесчаной и
черноземной почвах. Благодаря защитным приспособлениям, непроницаемости
оболочек, яйца аскарид устойчивы к воздействию и химических веществдезинфектантов.
На промышленных комплексах в помещениях для свиноматок и хряков яйца
аскарид разных стадий развития можно обнаружить на полу, решетках, кормушках,
поилках. Инвазионной стадии в сырых местах достигают через 40-60 дней, в сухих
- гибнут через 10-30 дней.
Мигрирующие личинки аскарид вызывают бронхопневмонию. На 6-8-й день
после заглатывания инвазионных яиц начинается мучительный кашель,
затрудненное и учащенное дыхание. У животных повышается температура,
появляется рвота. Поросята отказываются от корма, зарываются в подстилку.
Могут быть случаи падежа от бронхопневмонии. Кишечная форма протекает
разнообразно, но чаще хронически, без характерных клинических признаков.
Наиболее часто наблюдают отставание в росте, недоразвитость, нарушение деятельности желудочно-кишечного тракта, рвоту, признаки рахита. При интенсивном
заражении регистрируется закупорка кишечника и гибель животного от его
разрыва. Аскариды, попадая в печень и поджелудочную железу, вызывают
воспалительные процессы в этих органах.
6
Эзофагостомоз
Известен под названием узелковая болезнь. Возбудители - Oesophagostomum
dentatum и некоторые другие виды гельминтов рода Oesophagostomum. Тело
самцов и самок от 7,5 до 13,5 мм. Заболевание чаще бывает у поросят группы
откорма и взрослых свиней. Оно характеризуется глубоким поражением слизистой
оболочки толстого отдела кишечника, образованием множества паразитарных
узелков, профузным поносом и истощением.
Свиньи с фекалиями выделяют во внешнюю среду яйца эзофагостом. Через
1-5 суток из яиц выходит личинка, которая через 8 дней становится инвазионной.
Личинки попадают в организм свиньи с кормом, водой и активно проникают в
толщу слизистой оболочки кишечника главным образом толстого отдела, где
образуют узелки. Через 23 дня они возвращаются в просвет кишечника, спустя 15
дней превращаются в половозрелую стадию и начинают продуцировать яйца.
Источником инвазии являются больные животные. Основной путь заражения
- корма, водопои, почва выгульных площадок, летних лагерей и пастбищ. Яйца
эзофагостом можно обнаружить уже у поросят в 2-месячном возрасте. В
дальнейшем экстенсивность инвазии нарастает и максимальна зараженность у
свиноматок и хряков. Поэтому для поросят-сосунов опасны инвазированные матки.
На свиноводческих комплексах экстенсивность инвазии у взрослого
поголовья значительно выше, чем у ремонтного. Это говорит о том, что в
помещениях комплексов имеются условия для развития яиц эзофагостом и
заражения животных, личинки достигают инвазионной стадии за 20-25 суток.
Инвазирование профилактируется при строгом соблюдении ветеринарносанитарных правил и всей заданной технологии в помещении для опороса.
Различают острое и хроническое течение болезни. Острое течение
обусловлено внедрением личинок в слизистую оболочку кишечника. Животные
отказываются от корда, появляется профузный донос, который приводит к
истощению и гибели. Хроническое течение обычно бессимптомное.
Трихоцефалез
Вызывается нематодой Trichocephalus suis, длина тела 33-53 мм. Гельминты
паразитируют в толстом, отделе кишечника, а заболевание характеризуется
нарушением функций желудочно-кишечного тракта и истощением животных.
Трихоцефалезом болеют в основном поросята отъемного возраста и групп откорма.
Яйца трихоцефал выделяются во внешнюю среду с фекалиями, инвазионной
стадии достигают через 30-45 дней. Свиньи заражаются при заглатываний яиц с
кормом и водой. В желудочно-кишечном тракте личинки через 40-45 дней
превращаются во взрослых особей и для фиксации прошивают тонким (головным)
концом слизистую оболочку кишечника.
Заражение животных, происходит преимущественно в теплых и влажных
свинарниках, а также на выгульных двориках, летних лагерях и на пастбищах.
Поросята-сосуны инвазируются с первых дней жизни через загрязненные соски
матери и окружающие предметы. На комплексах промышленного типа
зараженность маточного поголовья значительно ниже, чем у завозимых животных.
Поросята в этих хозяйствах трихоцефалезом не болеют.
7
При высокой интенсивности инвазии отмечается угнетение, слабость,
прогрессирующее исхудание, судорожные движения. Больные поросята чаще
лежат. Наблюдается учащение пульса, кровавый понос, непроизвольная дефекация.
ДИАГНОСТИКА
Диагностика аскаридоза, эзофагостомоза и трихоцефалеза основана на
обнаружении яиц при исследовании свежих фекалий свиньи в лабораториях или
хозяйствах. Пробы массой 10-20 г берут в бумажные пакеты от 10% поголовья, но
не менее 50 проб. В сопроводительном документе указывают хозяйство, бригаду,
вид, группу, количество животных в группе, фамилию оператора, дату взятия
материала и на какие гельминтозы требуется анализ.
Фекалии свиньи исследуют с применением флотационных способов, при
которых используют насыщенный раствор хлорида натрия или раствор
гранулированной
аммиачной селитры по методу Г. А. Котельникова - В. М.
Хренова: 1,5 кг селитры растворяют в 1 л кипящей воды, фильтруют через вату или
марлю и остужают. Плотность такого раствора при 18-20°С - 1,32. 3 г фекалий
смешивают с 50 мл раствора и процеживают через сито. Поверхностную пленку
для микроскопии можно снимать через 15-20 мин. Использование селитры дает
более точные результаты, чем применение раствора хлорида натрия.
Прижизненный диагноз на аскаридоз ставят и по обнаружению гельминтов в
фекалиях.
Посмертная диагностика основана на обнаружении гельминтов в кишечнике.
Бронхопневмонию, вызванную мигрирующими личинками аскарид, определяют
исследованием кусочков легочной и печеночной ткани по методу Бермана-Орлова.
ПРОФИЛАКТИКА
Эффективность противогельминтозных мероприятий в хозяйстве зависит от
правильно выбранных антгельминтиков и средств обеззараживания объектов
внешней среды, а также своевременного проведения всех хозяйственных и
зоогигиенических мер. При планировании и организации противогельминтозных
мероприятий учитывают и уточняют гельминтозную ситуацию в целом по ферме и
в отдельности по возрастным группам, наличие необходимого антгельминтика и
средств дезинвазии.
Успех в борьбе и профилактике гельминтозов может быть обеспечен при
высокой ветеринарно-санитарной культуре на фермах и полноценном кормлении
свиней. Поэтому ветеринарные специалисты намечают и согласовывают с
руководством хозяйств проведение зоотехнических и санитарных мероприятий,
принимают меры для правильной подготовки свиноматок к опоросу. Кормление
супоросных свиней производят по рационам, сбалансированным по
аминокислотному составу, витаминам, минеральным и другим веществам. Это дает
возможность получать молодняк с повышенной устойчивостью к инвазии. С
учетом возрастных особенностей разрабатывают полноценные рационы и для
молодняка.
Профилактика и меры борьбы с аскаридозом, эзофагостомозом и
трихоцефалезом складываются из дегельминтизации животных, дезинвазии
помещений свинарников, инвентаря, мест кормления свиней, почвы, территории
8
ферм, навоза, а также общих мероприятий, направленных на повышение общей
резистентности организма.
В неблагополучном хозяйстве проводят текущую и заключительную
дезинвазию объектов внешней среды. Профилактическую дезинвазию
приурочивают к общим противоэпизоотическим мероприятиям, а заключительную
- к лечебной дегельминтизации.
Для предупреждения заражения поросят необходимо особо обратить
внимание на дегельминтизацию свиноматок, используя с этой целью
высокоэффективные препараты или схемы. Нельзя накапливать навоз на
территории фермы. Его вывозят ежедневно на навозохранилище. Периодически
убирают посторонние предметы из помещений и с территории ферм.
Систематически уничтожают мух и грызунов.
Дегельминтизация свиней
Как показали наши исследования, по аскаридозу, эзофагостомозу и
трихоцефалезу неблагополучны не только товарные свиноводческие фермы, но и
хозяйства-поставщики Красноярского края ремонтного молодняка для крупных
комплексов
промышленного
типа
"Николаевский",
"Усть-Кяхтинский",
"Мостовский Талан-2". В результате завоза на комплексы и их репродукторные
фермы свиней, инвазированных гельминтами, возникает необходимость в
дополнительных противогельминтозных мероприятиях.
Дегельминтизация - основное и важное звено в системе противогельминтозных мероприятий. Различают дегельминтизации диагностические,
лечебные, лечебно-профилактические и профилактические.
Лечебные дегельминтизации проводят в любое время года как вынужденную
меру при высокой интенсивности инвазии. Они преследуют цель освободить
животных от гельминтов и тем самым предотвратить клиническое проявление
болезни или падеж, а также снизить экономический ущерб, причиняемый
паразитами.
Профилактические
дегельминтизации
предусматривают
применение
препаратов на ранних, не достигших половой зрелости, стадиях развития
гельминтов. Это, в свою очередь, решает ряд вопросов санитарного плана. А
именно, отпадает необходимость обеззараживания помещения, почвы, навоза
после каждой дегельминтизации.
Лечебно-профилактические дегельминтизации занимают промежуточное
положение.
Химиотерапия не только избавляет свиней от гельминтов, но и имеет
большое профилактическое значение и должна сочетаться с мерами
предупреждения распространения инвазии.
Инструкция о мероприятиях по предупреждению и ликвидации заболевания
животных гельминтозами, утвержденная 30 декабря 1981 г.
рекомендует
применять при аскаридозе пиперазин, гигроветин, нилверм, натрий
кремнефтористый; при трихоцефалезе - хлорофос, гигроветин, тиабендазол,
нафтамон, нилверм, а при эзофагостомозе - нилверм, тиабендазол, пиперазин
адипинат и хлорофос.
Нафтамон - зеленовато-желтый кристаллический порошок без запаха,
горького вкуса, мало растворим в воде. Препарат проникает в тело аскарид через
9
кутикулу и пищеварительный тракт, вызывая сокращение мускулатуры,
постепенно сменяющееся расслаблением. Нафтамон тормозит окисление малата и
сукцината, потребление глюкозы, выделение летучих жирных кислот, снижает
активность аланиновой и аспарагиновой трансаминаз, холинэстераз.
Пиперазин выпускается в виде нескольких солей (адипинат, сульфат,
фосфат, дитиокарбамат). В практике чаще применяют пиперазин адипинат бесцветные кристаллы без запаха, со слабым приятным вкусом, медленно
растворяются в воде, не гигроскопичны, на воздухе не изменяются. Препарат
вызывает чередование резких изгибов тела аскариды с периодом покоя. В действии
пиперазина на гельминтов различают две фазы. Вначале он затормаживает
выделение ацетилхолина в центральных ганглиях и наступает период возбуждения
аскарид. Затем, действуя на мышцы гельминтов, подавляет миогенную ритмику.
Нафтамон и пиперазин относятся к малотоксичным препаратам. Это
позволяет применять их путем вольного группового скармливания.
Сотрудником Института экспериментальной ветеринарии Сибири и
Дальнего Востока В. И. Шайкиным у нафтамона и пиперазина не выявлены
эмбриотоксические и тератогенное действия. Отсутствие у этих препаратов
отрицательного влияния на репродуктивную функцию подтвердили также и
многочисленные наблюдения за дегельминтизированными в терапевтической дозе
свиноматками. Дегельминтизации по предлагаемой нами схеме как в различные до
осеменения сроки, так и в разные периоды супоросности отрицательно не влияли
на оплодотворяемость, течение беременности и развитие поросят.
Сущность дегельминтизации свиней при смешанных инвазиях последовательным применением нафтамона и пиперазина заключается в следующем.
Вначале лечат нафтамоном, затем через 10-12 ч пиперазином и через 10-12 ч
нафтамоном. При кормлении свиней два раза в день дегельминтизацию проводят в
следующие сроки:
первую в утреннее кормление - нафтамоном;
вторую вечером - пиперазином;
третью утром следующего дня - нафтамоном.
Воздействие сначала на активность ферментативных процессов гельминтов
(нафтамон), затем через 10-12 ч на нервно-мышечный аппарат сходно с
холинолитическими веществами (пиперазин) и через 10-12 ч снова на активность
ферментативных процессов (нафтамон), вероятно, дестабилизирует обменные
процессы паразитов и вызывает их гибель или вследствие контрактуры
мускулатуры гельминты не могут прикрепиться к стенке кишечника и изгоняются
перистальтическими движениями.
Последовательное применение нафтамона в дозе 0,1 г/кг и пиперазина в дозе
0,15 г/кг, (максимальная доза 15 г на животное) обеспечивает 100%-ную
эффективность при аскаридозе и 95-100%-ную при эзофагостомозе. Новый способ
позволяет
экономить
антгельминтики
и
повышать
эффективность
дегельминтизации по сравнению с использованием одного препарата.
Нафтамон с пиперазином задают с кормом индивидуальным, мелко- и
крупногрупповым методами. При приготовлении лечебного корма в смесителях и
подаче его по трубопроводу нужно дозу препаратов брать с учетом остающегося
количества корма в трубах. Например, для 700 свиноматок на первую дачу
требуется 7 кг нафтамона. В смесителе приготовили 5 т корма и раздали. Однако в
10
трубах осталась 1 т корма, поэтому нужно еще 1,5 кг нафтамона. Таким образом,
для 700 свиноматок необходимо 8,5 кг нафтамона.
Наиболее часто у свиней встречаются смешанные нематодозные инвазии,
чаще аскаридоз, эзофагостомоз и трихоцефалез. Отсутствие до недавнего времени
эффективных препаратов и схем дегельминтизаций, доступных для практики,
приводило к тому что, в хозяйствах вначале проводили курс дегельминтизации
против одного гельминтоза, спустя некоторое время - против второго и т.д. Эта
работа очень громоздкая и малоэффективная.
В настоящее время при ассоциативных нематодозах свиней успешно
применяются такие антгельминтные средства как альбендазол, альбен, тенальбен,
альбамелин, а также препараты авермектинового и ивермектинового ряда, это
аверсект-2 1% и 6% концентрации, авертин, иверсект, рустомектин, авертин. По
нашим данным применении препарата широкого спектра действия аверсект-2
позволяет снизить интес- и экстенс- инвазированность свиней при нематодозных
инвазиях на 98-100%. Однако применение антгельминтиков широкого спектра
действия приводит к нарушению количественного и качественного состава
энтеробиоценоза (микрофлоры кишечника) животных, поэтому мы рекомендуем
одновременно с введением антгельминтиков назначать животным внутрь с кормом
пробиотические средства такие как коредон, био-бифивит, бифидумбактерин, и.др.
Профилактические дегельминтизации необходимо включать в план
противоэпизоотических мероприятий хозяйства. В зависимости от типа и принятой
технологии гельминтокопроскопические обследования и дегельминтизации свиней
проводят в разные сроки:
-на комплексах промышленного типа: свиней, завезенных из хозяйствпоставщиков, - в период нахождения в карантине; свиноматок – в первой половине
супоросности; поросят в 3,5-месячном возрасте - за 10 дней до перевода в группы
откорма; поросят групп откорма - в возрасте 4,5 месяца.
-на фермах-репродукторах комплексов промышленного типа: свиней,
завезенных из племенных хозяйств, - в период нахождения в карантине;
свиноматок – в первой половине супоросности; поросят в 1,5-месячном возрасте за 10 дней до формирования групп отъемышей; поросят в 4-месячном возрасте,
хрячков-кастратов - за 10 дней до перевода в группы откорма, а свинок - при
формировании групп ремонтного молодняка; ремонтных свинок - за 10 дней до
перевода в цех воспроизводства комплекса; ремонтных свинок - за 10 дней до
перевода в летние лагеря и за 10 дней до перевода из летних лагерей в зимние
помещения.
-в репродукторных и плененных хозяйствах: свиноматок - за месяц до
массовых опоросов, перед переводом в летние лагеря и осенью перед постановкой
на зимнее содержание; молодняк в возрасте 35-40, 50-55 и 90 дней.
-в откормочных хозяйствах: животных, поступивших на откорм из других
хозяйств, - в период профилактического карантина.
Оллуланоз свиней в последние годы стал диагностироваться повсеместно на
Дальнем Востоке, в Сибири, Удмуртии и Ростовской области. Широкому
распространению и формированию крупных очагов этого малоизученного
заболевания
способствует
высокая
концентрация
поголовья
на
специализированных фермах и комплексах промышленного типа. Несмотря на
большое количество неблагополучных ферм по оллуланозу, в настоящее время
11
многие вопросы, касающиеся как самого гельминта, так и вызываемого им
заболевания, почти не изучены.
Основной причиной такого положения является отсутствие методик
исследования. Так как оллуланам присуща своеобразная биология, очень редко
встречающаяся у стронгилят, многие известные в гельминтологии методы
исследования оказались непригодными, а другие для повышения их точности
требовали той или иной модификации. Учитывая это, в ИЭВСиДВ в течение 7 лет
велась разработка новых, модифицировались известные методики применительно к
оллуланам. В частности, разработаны методы взятия проб, диагностики, определения жизнеспособности, интенсивности инвазии, эффективности антгельминтиков
при оллуланозе.
ОЛЛУЛАНОЗ СВИНЕЙ
ОБЩИЕ СВЕДЕНИЯ
Оллуланоз свиней - заболевание, вызываемое моноксенными нематодами
Ollulanus tricuspis, сем. Ollulanidae. Гельминты паразитируют в просвете и в толще
слизистой оболочки желудка, в выводных протоках желез желудка, а также в
двенадцатиперстной кишке. Наиболее часто гельминты регистрируются у взрослых
свиней, вызывая гипертрофический гастрит, эрозии и повреждения слизистой
оболочки. Первые случаи спонтанного оллуланоза наблюдаются у поросят в
двухмесячном возрасте, однако экспериментально легко вызывается заболевание и
в более раннем возрасте (28-30 дней). Экономический ущерб от оллуланоза
складывается из снижения среднесуточных приростов поросят, молочности маток,
рождения от больных маток поросят с низкой живой массой. Поросята от этих
маток хуже развиваются, а падеж среди них в два раза выше, чем у поросят,
полученных от здоровых свиноматок [3-8]. Оллуланы обнаружены у домашних и
диких кошек, лисиц, тигров, львов, домашних свиней в Европе, Азии, Америке,
Австралии, Новой Зеландии, а у свиней они зарегистрированы только в Европе и
Азии.
Морфология нематод рода Ollulanus Leuckart, 1865
Оллуланы - мелкие (0,7-1,3 мм) нежные раздельнополые нематоды [19]. Тело
свернуто в спираль или в кольцо. Кутикула тонко продольно и поперечно
отчетливо исчерчена. Ротовая капсула небольшая, образованная нависающей
кутикулой. Ротовая полость без зубов и других хитиновидных образований.
Имеются крупные шейные сосочки на уровне пищевода (рис. 1-4).
Самец. Бурса не разделена на лопасти. Антеро-вентральные и постеровентральные ребра самостоятельны, тонкие и длинные; антеро-латеральное ребро
удлиненное, объединяется общим стволом с другими латеральными; дорзальное
ребро утолщенное, подразделяется на дистальном конце на два нерасщепленных
ствола; энтеродорзальное отходит от дорзального ствола примерно на уровне
12
середины его длины. Спикулы короткие, равного размера, раздвоены на конце на
острую и притуплённую ветви. Рулек отсутствует.
Самка. Хвост притуплённый, оканчивается 3-4 короткими отростками, к
которым могут присоединяться дополнительно 1-2 выроста. Вульва лежит на
уровне задней части тела паразита. Вагина короткая. Матка и яичник одинарные,
живородящие, яйца крупные, личинок 3-5 шт.
Рис. 1. Самка оллулан
Рис. 2. Хвостовой конец самки:
А – анус, В – вульва
Типичный вид: Ollulanus tricuspis Leuckart, 1865. В настоящее время описано
четыре вида оллулан (таблица).
Гельминты развиваются по эндоциклу [11, 21], т.е. все стадии развития
протекают в одном хозяине. Яйца развиваются в матке самки. Здесь же
вылупляются личинки, которые трижды линяют, после чего покидают тело самки,
еще несколько раз линяют и превращаются в половозрелых особей. Заражение
свиней происходит при поедании рвотных масс или желудков убитых (павших)
животных.
Полный цикл развития нематод Ollulanus suis от яйца до половозрелой
стадии составляет 12-13 дней. Из яиц личинки формируются за сутки. В
13
следующие сутки они дважды линяют. От яйца до формирования личинки третьей
стадии проходит около трех суток. До появления половозрелых самок от личинки
четвертой стадии требуется около 10 дней, а на 11-й день у самок формируются
личинки.
Эпизоотологические данные
Заболевание распространяется при межхозяйственных перевозках свиней.
Инвазированию способствует скученное содержание. Экстенсивность и
интенсивность инвазии у животных возрастает до 2-2,5-леьнего возраста, а затем
идет постепенно снижение. Стойкие очаги оллуланоза формируются в хозяйствах,
где в одной группе содержатся свиньи разного возраста, особенно когда среди
откормочного поголовья находятся выбракованные свиноматки и хряки.
Интенсивность инвазии колеблется в очень больших пределах – от
единичных до 100 тыс. и более экземпляров. Средняя интенсивность инвазии у
взрослых свиней 1050-2900 экземпляров.
Резкой разницы в инвазированности животных оллуланами в зависимости от
сезона года не наблюдается.
Среди оллулан во все сезоны года доминируют самки (53,5-63,3%),
несколько меньше в процентном отношении самцов (18,9-26,8%) и еще меньше
ювенильных форм (6,5-19,9%). Резких сезонных колебаний в соотношении полов и
стадий развития не отмечается, хотя с конца зимы – начала весны несколько
увеличивается процент личинок за счет снижения числа самцов.
Рис. 3. Половая бурса оллулан
Рис. 4. Хвостовой конец личинки самца
14
Определения вида нематод рода Ollulanus:
Ollulanidae, Strongylata
Показатель
Длина тела, мм:
самец
самка
Ширина тела, мм:
самец
самка
Длина пищевода, мм
Количество хвостовых
отростков у самок
Отношение длины тела
к хвостовой части
Длина вентральных
ребер половой бурсы
Длина спикул, мм
Место расщепления
спикул на ветви
Чехлик на дистальном
конце спикулы
Крылья спикул
O. Suis
O. Tricuspis
O. Skrjabini
0,7-0,8
0,8-1,0
1,07-1,15
1,12-1,25
0,8-1,0
0,9-1,2
0,968-1,023
0,78-1,1
0,04
0,04
0,2
0,038-0,045
0,035-0,059
0,245-0,315
0,035-0,050
0,038-0,050
0,193-0,248
0,031-0,046
0,036-0,046
0,145-0,334
3
4
4
4
5:1
8:1-9:1
7:1 (6,5:1-7,5:1)
7:1
Не описано
Длиннее остальных
0,050
0,056-0,063
Середина
Дистальная треть
Нет
Нет
Нет
Есть
15
Одинаковой длины с
остальными
0,05-0,058
Дистальная треть
O. Angarica
0,052
Трезубец
Есть
Мембрана
Есть
Не описано
Патогенез
Оллуланы механически повреждают ткани желудка. Местами их
паразитирования являются слизистая оболочка, протоки желез, содержимое
желудка и двенадцатиперстной кишки. Нематоды расселены в слизистой оболочке
желудка неравномерно, имеются участки, сплошь пронизаны оллуланами.
Особенно много таких колоний встречается в зоне желез дна желудка. На этих
местах появляются эрозии и возникают воспалительные процессы. В начале
заболевание характеризуется острым течением, затем переходит в хроническую
форму и протекает в виде гипертрофического гастрита.
Патологические изменения
При спонтанном оллуланозе в желудке у свиней находится вязкая слизь с
серовато-белыми сгустками. Слизистая оболочка мозговидно складчатая. Иногда
складчатость приобретает сосочковидность с красными пятнышками на вершинах.
Стенка желудка утолщена в 1,5-3 раза.
Гистологически обнаруживают гипертрофический гастрит с формированием
на месте локализации гельминтов гранулезного воспаления [8, 11].
Методики диагностики оллуланоза свиней
Взятие проб
Местами паразитирования оллулан у свиней являются все зоны желудка и
двенадцатиперстной кишки. Однако нематоды локализуются в этих органах
неравномерно. Поэтому при работе, когда требуется учитывать все экземпляры
паразитов, пробы берут из всей поверхности слизистой оболочки, желудка и
двенадцатиперстной кишки, а также их содержимое. Для определения
благополучия хозяйства по оллуланозу достаточен материал из слизистой оболочки
зоны желез дна желудка [3].
Оборудование и материал: нож, кишечные ножницы, кювета, пинцет,
баночки с крышечкой объемом 10-500 мл, жидкость Барбагалло, ведро,
приспособление для снятия слизистой оболочки желудка.
Ход работы: у убитых или павших свиней желудок разрезают по малой
кривизне от входа пищевода до пилоруса. Содержимое выливают в ведро,
слизистую оболочку слегка промывают водой. Эту жидкость сливают в емкость с
содержимым органа. Желудок выворачивают и кладут на приспособление для
сбора слизистой оболочки. Соскобы с поверхности слизистой оболочки делают
ножом, а материал собирают в кювету. Во время взятия проб учитывают
следующие зоны – желез дна, кардиальных, пилорических желез, безжелезистой
зоны, дивертикула и пилоруса. Пробы помещают в баночки и консервируют
жидкостью Барбагалло.
Двенадцатиперстную кишку разрезают ножницами продольно, содержимое
помещают в отдельную посуду, затем кишку разворачивают, вытянув по длине, и
ножом берут глубокие соскобы с поверхности слизистой оболочки. Пробы
помещают в посуду и консервируют.
16
Компрессорный метод обнаружения оллулан
Применяется
при
исследовании
на
трихинеллез
и
полном
гельминтологическом вскрытии мелких органов или животных [13]. Исследуемые
объекты под микроскопом по-разному поглощают и отражают свет. Кроме того,
происходит его преломление отдельными участками препарата. Эти свойства
обуславливают разницу в амплитуде и фазе световых волн, а от этого зависит
контрастность и четкость изображения.
Вследствие особых свойств слизистой оболочки желудка (наличие кормовых
масс, текучести) и оллулан (мелкие размеры, цвет близкий к тканям отдельных зон
и участков слизистой оболочки) требуется несколько иная методика исследования.
Исследование материала в проходящем свете приводит к ошибкам, так как
обнаружить оллулан на фоне ткани бывает сложно. Часто бывают пропуски
нематод, особенно при низкой интенсивности. Кроме этого, из-за наличия в тканях
остатков корма, земли сдавливать материал до необходимой толщины невозможно.
На этих участках свет не проходит, это затрудняет исследование и приводит к
ошибкам.
При сжатии слизистой оболочки желудка обычным компрессорием часть
ткани и жидкость вытесняются за края стекол и попадают на предметный столик
микроскопа. Это мешает и удлиняет проведение исследований. Поэтому следует
использовать компрессорий, основание которого шире верхней пластины на 5-10
мм. В этом случае весь выдавливаемый субстрат концентрируется на площадке
основания, свободной от верхней пластины [6].
Сущность метода. Метод основан на исследовании материала отраженным
светом от темной поверхности предметного столика микроскопа. Причем
отражающая поверхность находится за пределами фокуса микроскопа на
расстоянии толщины основания компрессория. Используется компрессорий с
пластинами разных размеров.
Оборудование и материалы. Компрессорий, основание которого шире
верхней пластины на 5-10 мм, ножницы, пинцет, препаровальные иглы, микроскоп
МБС.
Ход работы. Кусочки слизистой оболочки желудка помещают на основание
компрессория, иголками расправляют по длине, удаляют крупные частички корма,
накрывают верхней пластиной и зажимают. Компрессорий помещают на темный
предметный столик микроскопа МБС и исследуют в искусственном свете, падающем сверху. Увеличение микроскопа 2x8.
Методика переваривания в искусственном желудочном соке
Освобождение гельминтов из тканей с помощью переваривания в
искусственном желудочном соке нашло широкое применение при исследовании на
трихинеллез [13]. Оллуланы паразитируют в тканях, отличающихся по своим
свойствам от мышц. Поэтому требуется несколько иной подход к перевариванию
этого материала, чем мышечной ткани. Методика разработана совместно с М.Ю.
Паскальской, Л. А. Тимукиной, Е. В. Михеевой [4, 6].
Сущность метода. Метод основан на переваривании слизистой оболочки
желудка или двенадцатиперстной кишки в искусственном желудочном соке.
17
Оборудование и материалы. Магнитная мешалка или лабораторный
встряхиватель типа 358 S, термостат, соляная кислота, пепсин, конические колбы
емкостью 200 и 300 мл, измерительные пипетки объемом 5-10 мл, термометр со
шкалой от О до 100°С,ситечко с ячейками 2x2 или 3x3 мм, стаканы по 1-2 л, чашки
Петри, микроскоп МБС.
Ход работы. Готовят искусственный желудочный сок, содержащий 1%
соляной кислоты и 3% пепсина. В колбу помещают пробу слизистой оболочки
массой 15-20 г и заливают желудочным соком, имеющим температуру 35-39°С.
Соотношение навески пробы к объему раствора не менее 1:15 - 1:20.
Колбу помещают на магнитную мешалку или лабораторный встряхиватель,
или в термостат. Степень переваривания определяют визуально. Время
переваривания 25 и более минут. Оно зависит от многих факторов: температуры,
скорости встряхивания или вращения, наличия кормовых остатков, наполняемости
желудка в момент убоя. Работают на магнитной мешалке при малых или средних
оборотах, так как при больших оборотах оллуланы разрушаются.
Осаждение и сбор оллулан проводят в стаканах емкостью 1-2 л. В сосуд
наливают теплую воду (35-39°С) и дают отстоять не менее 15 минут.
Переваренный материал процеживают через сито и перемешивают с водой в
стакане. После 15-20-минутного отстаивания верхний слой воды сливают, а осадок
наливают в чашки Петри и просматривают под микроскопом МБС.
Комбинированный метод диагностики
На исследование осадка одной пробы после переваривания слизистой
оболочки желудка в искусственном желудочном соке требуется до 5-20 минут.
Исследованию мешает наличие земли, песка и кормовых осадков. Предлагаемый
комбинированный метод ускоряет диагностику в 10-20 раз. Он может быть
применен при определении экстенсивности инвазии.
Сущность метода. Вначале пробу слизистой оболочки переваривают с
помощью искусственного желудочного сока. Осадок после отстаивания исследуют
методом флотации. При этом оллуланы всплывают, а посторонние частички,
имеющие удельную массу выше плотности раствора, оседают. Стаканчик
помещают под микроскоп и просматривают поверхностную пленку.
Оборудование и материалы те же, что и для переваривания в искусственном
желудочном соке. Дополнительно необходимы конические или цилиндрические
стаканчики на 30-50 мл.
Реактивы - раствор гранулированной аммиачной селитры (на 1 л воды 1,5 кг
препарата).
Ход работы. Материал переваривают в искусственном желудочном соке,
процеживают, отстаивают, воду сливают, а осадок помещают в конические
(цилиндрические) стаканчики и разводят в 8-10 раз раствором для флотации.
Спустя 15-30 минут стаканчик помещают на предметный столик микроскопа МБС
и просматривают поверхностную пленку. Интенсивность инвазии этим способом
определить нельзя, так как частицы земли часть оллулан увлекают на дно.
18
Методика определения жизнеспособности оллулан
Жизнеспособность оллулан нужно определять при изучении выживаемости и
изучении антгельминтной эффективности препаратов. В этих случаях эта методика
является пока единственной, так как вследствие особенностей биологии оллулан
другие методы, используемые в гельминтологии, неприемлемы.
Оллуланы во внешней среде малоподвижны, а при комнатной температуре неподвижны. Поэтому для искусственной стимуляции подвижности требуется
создать для оллулан необычные условия - применять раздражающе средства.
Методика разработана совместно с М. Ю. Паскальской и В. И. Офицеровым [ 22 ] .
Сущность метода. Метод основан на том, что оллулан помещают в
растворы химических веществ, которые вызывают раздражение нервных
рецепторов кутикулы или же проникают в тело нематод.
Оборудование: микроскоп МБС или МБИ, предметные стекла, чашки Петри,
глазные пипетки, препаровальные иглы, измерительные пипетки от 1 до 10 мл,
колбы емкостью 10-50 мл.
Реактивы: диметилсульфоксид, диметилформамид, сернистый натрий.
Ход определения. Готовят 0,5-1%-ный раствор сернистого натрия на
физиологическом растворе; 50%-ный раствор диметилсульфоксида или
диметилформамида. Жизнеспособность определяют индивидуально у каждого
гельминта или же одновременно у оллулан нескольких экземпляров.
В первом случае матрикс помещают в чашки Петри. С помощью микроскопа
МБС и препаровальной иглы вылавливают одну оллулану, помещают в каплю
одного из
растворов (сернистого
натрия, диметилсульфоксида
или
диметилформамида) и наблюдают под микроскопом в течение 3-5 минут.
Во втором случае исследуемый материал помещают в чашку Петри и
заливают тонким слоем раствора диметилформамида или диметилсульфоксида.
Дифференцированно регистрируют живых и погибших самок, самцов, личинок.
Работа с реактивами. Оллуланы, помещенные в раствор сернистого натрия,
начинают двигаться не одновременно. Некоторые экземпляры приобретают
подвижность сразу же после погружения в раствор, другие - через 3-5 минут.
Отдельные экземпляры после помещения в раствор быстро погибают. Поэтому при
подсчете живых и мертвых нематод надо быть достаточно внимательным, так как
вследствие гибели ошибочно можно насчитать больше мертвых оллулан.
Сернистый натрий вступает в реакцию с металлами. При этом образуются
сульфиды металлов, и. происходит почернение исследуемого материала,
инструментов. Сернистый натрий в растворе диссоциирует с выделением сероводорода, который относится к токсическим веществам. В работе с ним надо быть
осторожным, рекомендуется работать с небольшим количеством раствора (на
предметных стеклах). Препарат чаще применяется для эксцистирования
адолескарий трематод [23].
Диметилсульфоксид и диметилформамид более удобны в работе и
безопасны.
Методика определения интенсивности инвазии
Определение интенсивности инвазии при оллуланозе - очень трудоемкая
работа, так как в большом матриксе приходится выбирать мелких гельминтов,
19
которых может быть свыше 50 тыс. экземпляров. Порциальный метод в данном
случае может дать большие ошибки, т.к. оллуланы в слизистой оболочке
расположены очень неравномерно.
Нет сомнения в том, что при проведении опытов, в которых учитывается
каждый экземпляр оллулан, незаменимым является анализ всех тканей и
содержимого желудка. В этом случае точность исследования превалирует над
трудоемкостью.
В практических условиях приходится проверять большое количество проб с
достаточно высокой точностью. Это необходимо, например, при изучении
сезонной и возрастной динамики, при сравнении инвазированности свиней двух
ферм, хозяйств, при анализе патологических изменений и т.д. В этом случае может
быть использовано исследование определенных зон с математической поправкой
[7].
Обоснование метода. Экспериментально на 330 пробах установлено, что
оллуланы в разных зонах желудка и двенадцатиперстной кишки расположены
крайне неравномерно. Количество оллулан в содержимом желудка составило
33,3±5,4%, в слизистой оболочке зоны желез дна 61,9±4,9%, в зоне кардиальных
желез 2,1±0,2%, в зоне пилорических желез 2,1±0,6%, в безжелезистой зоне
0,2±0,06%, в зоне дивертикула 0,2±0,08%, в зоне пилоруса 0,1±0,04%, в
двенадцатиперстной кишке 0,1±0,01%.
Расчеты статистически достоверно показали, что в содержимом и зоне желез
дна желудка локализуется 95,29±0,85% оллулан, а в остальных зонах - 4,71±0,83%.
Ход определения. Для исследования берут по две пробы из желудка содержимое и слизистую оболочку желез дна. Подсчитывают всех оллулан.
Полученное число увеличивают на 4,7%.
Методика инвазирования оллуланами поросят
Поросят инвазируют при изучении биологии оллулан, патогенеза, испытании
антгельминтиков, определении ущерба и т.д. Для опытов берут поросят из
благополучных по оллуланозу хозяйств или выращенных в условиях,
исключающих инвазирование оллуланами, т.е. изолированно от свиней старших
возрастов.
Оборудование: нож, кишечные ножницы, кювета, пинцет, банки или колбы
емкостью 500 мл, приспособление для взятия слизистой оболочки желудка, весы,
колбочки на 50 мл, разновесы, микроскоп МБС, чашки Петри, магнитная мешалка,
встряхиватель, пипетки 1-10 мл, холодильник, препаровальные иглы, глазная
пипетка, шприц, резиновая груша, ситечко, стаканы 1-2 л.
Реактивы: соляная кислота, пепсин.
Ход работы. Экспериментально установлено, что одинаково успешно можно
инвазировать поросят оллуланами, взятыми как из слизистой оболочки, так и
содержимого желудка свиней.
В качестве доноров лучше использовать свиноматок 2-2,5-летнего возраста.
Группу свиноматок, предназначенных для убоя и взятия от них материала для
искусственного воспроизведения оллуланоза, выдерживают 5-10 часов на голодной
диете. Водопой не ограничивают.
Желудок вскрывают ранее описанным способом сразу же после нутровки
туши. Содержимое желудка и соскобы слизистой оболочки собирают в одну
20
посуду. От каждого животного пробу помещают в отдельную емкость. Пробу
взвешивают. Затем определяют количество оллулан в материале. Для этого от
каждой свиньи берут в отдельные три колбы одинаковые навески пробы (от 3 до
10 г). Методом переваривания определяют среднее количество оллулан в одной
пробе, а затем делают пересчет и узнают число оллулан во всем материале.
Инвазируют свиней оллуланами в день убоя донора, только в крайнем случае
- на следующий день. Материал хранят в холодильнике при 4-5°С.
Поросят до инвазирования выдерживают 5-6 часов на голодной диете.
Материал перемешивают с молоком и задают индивидуально при небольшой (3-5
голов) группе поросят.
Инвазирование поросят повторяют не менее 2-3 раз с интервалами 2-3 дня. В
зависимости от целей работы одному животному в возрасте 30-35 дней задают до
10 тыс. экземпляров оллулан, однако лучше они приживаются при даче от 1 до 2
тыс. экземпляров.
Инвазирование животных. С помощью микроскопа МБС и препаровальных
игл выбирают из свежего материала оллулан и помещают в пробирки с водой.
После накопления нужного количества гельминтов их задают лабораторным
животным с помощью глазной пипетки, шприца или резиновой груши.
Методика определения эффективности антгельминтиков
Оборудование то же, что и для предыдущей методики [5].
Реактивы: антгельминтики, диметилсульфоксид, диметил-формамид.
Сущность метода. Метод основан на том, что большинство оллулан
паразитирует в толще слизистой оболочки желудка. Поэтому даже в случае гибели
от воздействия препарата гельминты длительное время остаются в местах
обитания. Спустя определенное время животных убивают, а обнаруженных
оллулан исследуют на жизнеспособность.
Ход работы. Опыты проводят в неблагополучных по оллуланозу хозяйствах
на свиноматках. Животных делят на две группы - подопытную и контрольную.
Подопытным маткам задают препарат с кормом индивидуально или групповым
способом. Контрольные животные антгельминтик не получают. Содержание и
кормление обеих групп свиней одинаковое.
Через 5-7 дней животных убивают и берут по две пробы из одного желудка содержимое и соскобы слизистой оболочки. В этот же день проводят исследования
на наличие оллулан и определяют их жизнеспособность. Содержимое исследуют
методом последовательного промывания, а слизистую оболочку - методом
переваривания в искусственном желудочном соке. Жизнеспособность определяют
с помощью диметилсульфоксида или диметилформамида.
Учет результатов. Для учета берут только тех свиней, у которых
обнаружены оллуланы. Свободных животных от этих нематод из опыта
исключают.
Жизнеспособность оллулан определяют дифференцированно в содержимом
и в слизистой оболочке желудка, а также ведут учет в отдельности погибших и
живых самок, самцов и личинок. При определении жизнеспособности учитывают
не менее 100 самцов, самок и их личинок в содержимом и отдельно в слизистой
оболочке желудка.
21
Вычисляют
экстенс-,
лярвоцидную эффективность.
интенсэффективность,
нематодоцидную
и
Мероприятия по профилактике нематодозов свиней
Дезинвазия помещений и предметов ухода
Для обеззараживания свинарников, подсобных помещений и выгульных
площадок с твердым покрытием при смешанных гельминтозах инструкцией
рекомендуется обработка поверхностей 10%-ной горячей эмульсией ксилонафта
при экспозиции 3 ч, 5%-ным горячим раствором едкого натрия или едкого калия
при экспозиции 6 ч. Растворы применяют двукратно с интервалом 1 ч из расчета
0,5 л на 1 м2.
Используют также 3%-ную эмульсию технического ортохлорфенола (1 л на 1
2
м ) однократно при экспозиции 3 ч.
Дезинвазию помещений проводят перед каждым туром опоросов, в
санитарные разрывы - перед очередной постановкой животных, а также после
каждой лечебной или лечебно-профилактической дегельминтизации.
В борьбе с гельминтозами очень важно предупредить инвазирование
поросят-сосунов. Свиноматок в день перевода в родильное помещение моют.
Помещение и инвентарь родильных отделений готовят заранее: тщательно чистят,
дезинвазируют, просушивают, ремонтируют, белят или красят стены, перегородки,
оборудуют емкости с растворами дезинфектантов для хранения метел, скребков и
других предметов ухода.
Дезинвазия почвы
Для уничтожения в почве яиц аскарид, эзофагостом, трихоцефалов, личинок
эзофагостом, а также дождевых червей, которые являются промежуточными
хозяевами метастронгилов и резервуарными хозяевами аскарид, применяют
карбатион, N-метилдитиокарбамат натрия. Это однородная жидкость зеленоватожелтого или темно-оранжевого цвета, с резким запахом, хорошо растворяется в
воде. Относится к среднетоксичным веществам: ЛД50 для крыс - 820 мг/кг, для
белых мышей - 294 мг/кг. Карбатион выпускают в форме водного раствора с
содержанием 33-40% N-метилдитиокарбамата натрия. Препарат при внесении в
почву разлагается с образованием газообразного метилизотиоцианата, который
обладает высокой биологической активностью, в том числе и овоцидным
действием, разлагается в почве в течение пяти суток.
Почву территорий ферм обрабатывают в комплексе с другими противогельминтозными мероприятиями - через 3-5 суток после дегельминтизации
животных или в период санитарных разрывов при смене партий свиней, а также
весной за 10 дней до выпуска свиней на выгульные площадки, летние лагеря или
же осенью после прекращения пользования ими.
Рабочие растворы готовят перед использованием. Карбатион 3%-ной
концентрации наносят на обрабатываемую почву с помощью любой дезустановки
при температуре почвы 10-20°С. Норма, расхода рабочего раствора 4 л на 1 м2. На
обработанную территорию свиней разрешается выпускать через 10 дней.
В жаркое солнечное время дня, когда температура воздуха достигает 25° и
выше и сразу после дождя, применять карбатион не рекомендуется.
22
При работе с карбатионом нужно соблюдать меры предосторожности:
обязательны фартуки, резиновые сапоги, перчатки, защитные очки и респираторы
Ф-46-К с противогазовым патроном А, либо противогазы с патроном А. Нельзя
допускать попадания раствора на людей, животных, дезустановку.
Дезинвазия навоза
Скопление навоза, содержащего инвазионные яйца и личинки, на территории
ферм представляет постоянную угрозу инвазирования свиней. Он растаскивается
около свинарников, яйца и личинки гельминтов могут быть занесены в помещение
с обувью, предметами ухода или заглочены свиньями на прогулке.
Существует несколько способов обеззараживания навоза от яиц и личинок
гельминтов. На крупных комплексах промышленного типа жидкий
бесподстилочный навоз подвергается двухступенчатой биологической очистке.
При равномерной подаче отходов и отсутствии перегрузки очистных сооружений в
стоках яиц и личинок гельминтов не содержится. Поэтому достаточно, наряду с
химическими анализами, раз в месяц проконтролировать качество дезинвазии стоков, особенно в периоды ухудшения показателей химического анализа. При
обнаружении зародышей гельминтов в осветленных стоках принимают меры по
экономному расходованию воды при уборке навоза, а также устраняют
неисправности водопровода.
Пробы стоков (1-2 л) берут в контактном резервуаре и помещают на 24-48 ч
в холодильник. Надосадочную жидкость сливают, к 25-30 мл осадка в коническом
стакане емкостью 250 мл доливают раствор гранулированной аммиачной селитры
до образования выпуклого мениска и покрывают обезжиренным стеклом. Через 3045 мин с помощью микроскопа на стеклах определяют наличие яиц и личинок
гельминтов. Кроме этого, стоки можно исследовать по методике Н. А. Романенко
[7].
Твердую фракцию навоза, которую получают в процессе переработки
жидких стоков, можно обеззараживать двумя методами.
В одном случае навоз подвергают термической обработке в специальных
агрегатах. При температуре в горелке 500-700° и высушивании навоза до 3-20%
погибают все яйца и личинки гельминтов. Высушенный продукт с
гельминтологической точки зрения не опасен. Он напоминает отруби и
используется в качестве кормовой добавки крупному, рогатому скоту.
В другом случае твердую фракцию обеззараживают биотермическим
способом. Навоз укладывают в кучи высотой 1,5-1,7 м. В буртах весной, летом и
осенью протекают активные биологические процессы. Резкий подъем температуры
в бурте с 19° до 50° наблюдается через 72-86 ч после закладки бурта.
Максимальная температура (65-67°) достигается на 11-17-e сутки. За это время
большинство яиц и личинок гельминтов, находящихся в буртах глубже 15 см, погибает.
Зимой биотермические процессы проходят вяло, и температура в них не
превышает 42-45°. Поверхность бурта покрывается коркой из замерзшего навоза
толщиной до 15 см. В этих условиях гибели яиц гельминтов не происходит,
поэтому зимой твердую фракцию следует обеззараживать термически или
складировать в бурты.
23
II. Основные протозоозы свиней
Эймериоз (кокцидиоз) свиней
Одним из наиболее распространенных протозойных болезней свиней в
Республики Бурятия является кокцидиоз. Процент инвазирования животных в
свиноводческих хозяйствах республики составляет от 9 и более при интенсивности
от единичных экземпляров ооцист кокцидий до 1280 в 20 полях зрения
микроскопа.
Кокцидиоз свиней протекает подостро или хронически. Болеют поросята,
начиная с 10-14-дневного возраста и старше. Болезнь проявляется общим
угнетением, отставанием в росте молодняка, анемией, расстройствами желудочнокишечного тракта и истощением.
У свиней установлено 6 видов кокцидий из рода Eimeria и 2 вида из рода
Isospora, которые локализуются в эпителиальных клетках кишечника. На
территории Советского Союза встречаются 6 видов, морфологические особенности
которых представлены в табл. 1 и рис. 1 [14].
Биологический цикл кокцидий рода Eimeria характеризуется тремя
стадиями: шизогонией, гаметогонией и спорогонией.
Шизогония и гаметогония совершаются в эпителиальных клетках кишечника
и относятся к эндогенным стадиям развития. Спорогония происходит во внешней
стадии и относится к экзогенной стадии развития кокцидий.
Вместе с фекалиями больных животных ооцисты кокцидий выделяются во
внешнюю среду. Свежевыделенные ооцисты не инвазионны. Во внешней среде при
наличии благоприятных условий (тепла, влаги и воздуха) ооцисты проходят
стадию спорогонии и через 4-12 дней превращаются в инвазионную стадию –
ооцисту с 8-ю спорозоитами. Заражение свиней происходит при попадании зрелых
ооцист вместе с кормом или водой в кишечник животного, подсосные поросята
заражаются через загрязненное кокцидиями вымя свиноматок. В кишечнике
животных спорозоиты выходят из ооцист и внедряются в эпителиальные клетки
слизистой оболочки кишечника, где растут увеличиваясь в объеме и образуют
многоядерные клетки-шизонты. Внутри шизонта формируются мелкие паразитымерозоиты, которые освобождаются от оболочки и вновь проникают в
эпителиальные клетки кишечника, образуя шизонты второй, третьей генерации.
Такой процесс называется шизогонией или бесполым множественным
размножением. Шизогония сменяется половым процессом – гаметогонией. При
этом мерозоиты внедряются в эпителиальные клетки и образуют макрогаметоциты
и микрогаметоциты. Затем макрогаметоциты превращаются в крупные
макрогаметы, а микрогаметоциты – в микрогаметы.
В дальнейшем микрогаметы проникают в макрогаметы, сливаются, образуя
новые клетки – зиготы. Зиготы окружаются оболочками и превращаются в
ооцисты, которые вместе с фекалиями выделяются во внешнюю среду [20].
Эпизоотология. Кокцидиоз свиней встречается почти во всех странах.
Источником инвазии являются больные или переболевшие животные. Резервуаром
возбудителей кокцидиоза могут быть скотные дворы, где ранее содержались
больные свиньи, выгульные площадки, корма, завозимые в свинарники, подстилка
и т.д. Возбудители кокцидиоза могут быть занесены при завозе ремонтного
молодняка из других хозяйств, неблагополучных по данному заболеванию.
Подсосные поросята заражаются через загрязненное вымя свиноматок.
24
Инвазированность свиней в различных хозяйствах неодинакова. Это в
первую очередь объясняется разными условиями содержания, кормления, а также
природно-климатическими особенностями. В условиях специализированных
хозяйств высокая зараженность животных определяется еще тем, что
комплектование поголовья свинокомплексов производят за счет нескольких
хозяйств. При этом животные иногда копрологически не исследуются.
Наибольшая зараженность кокцидиозом в Республики Бурятия наблюдается
у холостых и супоросных свиноматок – 60%, у поросят 20-месячного возраста –
50%. Кроме того, кокцидиоз довольно часто встречается в виде смешанной инвазии
с эзофагостомозом, аскаридозом, трихоцефалезом и др [15].
Патогенез. Кокцидии, проникнув в эпителиальные клетки кишечника,
размножаются путем бесполого множественного деления и вызывают массовую
гибель клеток. Но разрушаются не только клетки, в которых размножаются
паразиты, а и соседние с ними клетки, капилляры, сосуды. При таком массовом
распаде клеточных элементов хозяина нарушается целостность кишечника. В
пораженные его участки проникает микрофлора, которая обостряет течение
болезни, вызывая обширные некрозы слизистой оболочки, поэтому многие участки
кишечника не участвуют в пищеварении. Все это приводит к хроническому
голоданию организма животного, застойным явлениям, отекам в различных
органах и тканях, что выражается гидремией, лейкопенией и т.д.
Массовое размножение кокцидий в слизистой кишечника, распад ее
клеточных элементов приводит к тому, что на мертвом белковом субстрате
размножается гнилостная микрофлора, что еще больше осложняет воспалительные
процессы в кишечнике, вызывая расстройство его всасывающей и двигательной
функции.
Интоксикация организма происходит вследствие выделения кокцидиями
токсинов или ядовитых веществ, образующихся под влиянием микрофлоры и
протеолитических процессов.
25
Таблица 1
Кокцидии свиней
Вид ооцист
Форма
Цвет
Величина, мкм
Спорогония, дней
Eimeria debliecki
овальная
светло-коричневая или
бесцветная
11,6-32,2×8,7-20,3
5-9
Eimeria scabra
эллипсовидная или
овальная
коричневая
23,2-34,8×17,4-23,7
9-12
Eimeria perminuta
овальная или круглая
желтоватая или
коричневая
11,2-16×9,6-12,8
10-11
Eimeria spinosa
овальная или вытянутая
коричневая
16-22,4×12,8-16
12
Isospora suis
овальная или круглая
светло-желтая
17,4-22,3×14,5-20,3
4
Isospora almaataensis
то же
Темно- или светлосерая
24,6-31,9×23,2-29
5
26
Рис. 1. Ооцисты кокцидий свиней
1-2 – Eimeria perminuta
3-4 – Eimeria spinosa
5-6 – Eimeria scabra
Клиника. Инкубационный период при спонтанном заражении составляет 1012 дней. Наиболее остро протекает болезнь при заражении Eimeria debliecki и
Eimeria scabra.
Подострое течение заболевания характеризуется общим угнетением,
поросята зарываются в подстилку, больше лежат. Аппетит вялый или отсутствует.
Перистальтика кишечника усилена. Акт дефекации учащенный, фекальные массы
вначале разжижены, с незначительным количеством слизи, затеи они становятся
водянистыми, количество слизи увеличивается, могут появляться прожилки крови.
Сильные поносы вызывают истощение, развивается анемия. Больные отстают в
росте и развитии. Массовое размножение кокцидий в кишечнике приводит к
геморрагическому воспалению слизистых оболочек тонкого и толстого отделов
пищеварительного тракта, в связи с этим повышается температура тела. При этом
больные лежат, отказываются от корма, понос усиливается и может быть
кровавым.
27
Хроническая форма встречается у молодняка старшего возраста и взрослых
свиней. Она сопровождается истощением, снижением привесов, при ухудшении
кормления могут появляться поносы.
Падеж от кокцидиоза бывает в основном только среди поросят.
Патологоанатомические изменения. Туши павших поросят истощены.
Слизистая оболочка тонкого отдела кишечника катарально воспалена; при
длительном и тяжелом течении болезни имеет место геморрагическое воспаление
не только тонких, но и толстых кишок. Там же обнаруживаются беловатые узелки
величиной с просяное зерно.
Диагноз. При постановке диагноза следует учитывать эпизоотические
особенности хозяйства, клинические признаки болезни и патологоанатомические
данные. Необходимо исследовать под микроскопом содержимое узелков с тонкого
и толстого отделов кишечника на обнаружение ооцист, а если из соскобов
приготовить мазки, то можно обнаружить шизонты и мерозоиты.
Для прижизненной диагностики применяются копроскопические методы
Дарлинга и Фюллеборна. Необходимо отличать носительство от заболевания. При
носительстве в поле зрения микроскопа обнаруживаются (в препарате) единичные
ооцисты кокцидий, при заболевании все поле зрения в микроскопе усеяно
ооцистами.
Лечение. Терапия кокцидиоза свиней пока еще недостаточно разработана. В
настоящее время при данном заболевании рекомендованы следующие препараты:
Биомицин солянокислый в дозе 10 мг/кг живой массы два раза в сутки в
течение 3-5 дней индивидуально или групповым методом;
Осарсол – 20-30 мг/кг живой массы два раза в сутки в течение 4-6 дней,
перорально;
Фуразолидон – 10 мг/кг живой массы, двукратно в течение 4-7 дней;
Сульфадимезин в сочетании с зоаленом по 0,03 г/кг в течение 4 дней и
сульфадимезин в сочетании с биомицином по 0,06-0,08 г/кг два раза в сутки в
течение 4-5 дней.
При смешанной инвазии (кокцидиоз, балантидиоз) применяют фуразолидон
в дозе 20 мг/кг и фенотиазин 0,1 г/кг живой массы или фуразолидон, фенотиазин в
тех же дозах и ятрен 30 мг/кг живой массы. Препараты применяют один раз в день
в течение 5 дней групповым методом. Наряду с данными препаратами мы
рекомендуем применять ампролиум, сульфодимезин, сульфодиметоксин,
сульфомонотоксин, кокцисан, кокцивит, химкокцид в рекомендуемых дозах.
Меры борьбы и профилактики. В профилактике кокцидиоза свиней имеет
большое значение правильное их содержание и полноценное кормление. Чаще
всего это заболевание появляется в тех хозяйствах, где имеют место
перегруженность помещений животными, отсутствие регулярной уборки навоза и
биотермического его обезвреживания.
При переводе животных в лагеря, свинарники очищают от навоза,
промывают и тщательно дезинфицируют горячим 3%-ным раствором едкого натра.
Осенью перед постановкой свиней (после лагерного содержания) помещения
вторично моют и дезинфицируют горячим 3%-ным раствором едкого натра, а
стены и потолки белят известью. После побелки помещений полы необходимо
протереть свежегашеной известью, кормушки и полы промыть водой.
С целью химиопрофилактики в хозяйствах, где имеется кокцидиоз или
смешанная инвазия (кокцидиоз и балантидиоз) необходимо применять
28
фуразолидон уже в первые месяцы жизни поросят. Для этого фуразолидон
скармливают в течение месяца с мелом в соотношении 1:1000 и водой в виде
сметанообразной массы. Кроме того для профилактики кокцидиоза свиней в
неблагополучных хозяйствах можно применять и биоветин в дозе 25 тыс. ЕД на 1
кг живой массы в течение 20 дней [16].
Балантидиоз свиней
Возбудитель балантидиоза свиней инфузория Balantidium coli, паразитирует
на слизистой или в слизистой оболочке толстого отдела кишечника. Кроме того его
можно обнаружить и в других отделах пищеварительного тракта.
Балантидии имеют овальную или яйцевидную форму, величиной 47-120 мк в
длину и 27-85 мк в ширину. Тело балантидий покрыто ресничками, при помощи
которых паразиты передвигаются и могут проникать в слизистую кишечника и
даже в подслизистый слой. В цитоплазме паразита два ядра (макронуклеус и
микронуклеус) и различные вакуоли (рис. 2).
Биология возбудителя. Балантидии в кишечнике свиней размножаются
прямым делением, которое сменяется половым процессом – конъюгацией.
Подвижные балантидии в кишечнике или во внешней среде инцистируются и
принимают овальную или круглую форму, покрываются плотной, толстой
оболочкой и превращаются в цисты величиной 58-88 мк. Они очень устойчивы во
внешней среде и могут сохраняться вне организма животных до года. Питаются
балантидии в кишечнике свиней бактериями, грибками, крахмалом и другими
компонентами пищи.
При возникновении вирулентных штаммов паразитов они становятся более
агрессивными и начинают питаться эритроцитами, лейкоцитами, а также
продуктами воспаления.
Эпизоотология. Балантидиоз встречается повсеместно. В Западных регионах
России зараженность свиней данным заболеванием колеблется от 52% и более,
которое протекает в виде смешанной инвазии с кокцидиозом (48,7%).
Источником заражения служат взрослые свиньи – паразитоносители. Кроме
того, в природе основными хозяевами балантидий являются дикие кабаны, серые
крысы, обезьяны и человек. Заражение происходит алиментарно при заглатывании
цист паразитов с загрязненной водой или кормом.
29
Б
A
Рис. 2. – Balantidium coli: А – вегетативная форма; Б - циста
Появлению и распространению балантидиоза свиней в хозяйствах
способствуют нарушение оптимального микроклимата, переуплотненное
содержание животных в грязных и сырых помещениях, неполноценное их
кормление, несвоевременная подкормка поросят, особенно молочными
продуктами, нарушение правил отъема молодняка.
Балантидиозом заболевают преимущественно поросята-отъемыши в возрасте
2-2,5 месяца. В стационарных очагах балантидиозом могут заболеть поросята под
матками, подсвинки в возрасте 4-6 месяцев и даже свиньи в 9 месяцев. Особенно
восприимчив к балантидиозу молодняк в возрасте от 1-1,5 до 6 месяцев.
Патогенез. У больных поросят возбудитель паразитирует не только в
просвете кишечника, но и проникает глубоко в слизистую и в подслизистый слой,
механически травмирует стенку толстого отдела кишечника. Балантидии, проникая
глубоко в кишечную стенку, открывают ворота инфекции, осложняют течение
болезни, в результате чего воспаляется и изъязвляется слизистая кишечника.
Возникшее воспаление и некрозы нарушают функциональную работу желудочнокишечного тракта и приводят к тяжелому заболеванию.
Клиника. Течение этой болезни может быть острым, хроническим и
латентным. Инкубационный период длится от 5 до 27 дней.
Острая форма заболевания у свиней протекает тяжело и характеризуется
следующими признаками: повышение температуры тела на 1-2°С, общее состояние
угнетенное, животные больше лежат, зарывшись в подстилку, отказываются от
корма, иногда может быть извращенный аппетит, больные пьют навозную жижу
при наличии воды и корма. Перистальтика кишечника усиливается. Акт дефекации
частый, испражнения становятся жидкими, содержат слизь и прожилки крови.
Больные животные сильно худеют, волосяной покров взъерошенный, теряет блеск.
Продолжительность болезни при острой форме 2-3 недели.
Особенно тяжело балантидиозные энтероколиты протекают у подсвинков
при одновременном поражении их другими простейшими (ооцистами кокцидий) и
гельминтами (аскаридами, эзофагостомами, трихоцефалами и др.).
При хроническом течении болезнь затягивается до двух месяцев.
Температура чаще нормальная или субнормальная. Аппетит вялый и извращенный.
30
Понос менее выражен, чем при остром течении, в жидких фекалиях обнаруживают
только следы крови. Поросята худеют, отстают в росте, развивается анемия,
слабость и полное истощение.
Латентная форма балантидиоза – паразитарная реакция значительная, в
фекалиях обнаруживаются преимущественно вегетативные формы балантидий,
которые очень подвижны. У больных такой формой животных наблюдается легкое
катаральное воспаление слизистой оболочки ободочной и слепой кишок. Это
течение болезни может переходить в острую хроническую форму. В таких случаях
в хозяйстве за несколько дней происходит массовое заболевание животных.
Патологоанатомические изменения наблюдаются в основном в местах
локализации балантидий, а именно в слепой и ободочной кишках. При остром
течении болезни в выходной части слепой кишки и у основания ее, а у ободочной
кишки – на начальных участках и боковых изгибах образуются язвы величиной от
горошины до лесного ореха. На отдельных участках или на большом протяжении
слепой и ободочной кишок отмечается геморрагическое воспаление.
При острой балантидиозной дизентерии на отдельных участках или на
большом протяжении слепой и ободочной кишок слизистая оболочка отечна, резко
гиперемирована, окрашена в вишнево- или темно-красный цвет. Иногда на
слизистой имеются кровоизлияния различной величины и формы, местами она
покрыта слизью, и на ней выделяются узелки сероватого цвета, величиной с
просяное зерно и больше. Каловые массы жидкие, темно-красноватого цвета с
примесью крови. Печень, селезенка и почки незначительно увеличены. Почки
дряблые, на разрезе – сочные. Селезенка уплотненная, на разрезе сочная, пульпа
темно-коричневого цвета, рисунок нечеткий. Сердце увеличено за счет расширения
правых полостей [12].
Диагноз. При постановке диагноза учитывают эпизоотическую ситуацию в
хозяйстве,
клиническую
картину,
копрологические
исследования,
патологоанатомические изменения.
Для микроскопии берут свежие фекалии от больных животных, делают
нативный мазок и просматривают под микроскопом на наличие подвижных форм
балантидий или цист.
Для обнаружения ооцист можно брать и несвежие фекалии, так как цисты
животного вне организма сутками не меняют своей формы и сохраняют
жизнеспособность. Наличие в десяти полях зрения микроскопа до двух балантидий
свидетельствует о слабой степени инвазированности, 5-8 балантидий говорит уже о
начале заболевания животного. При остром течении болезни обнаруживают от 7-15
до 25-40 балантидий в одном поле зрения микроскопа.
Нативный мазок приготовляют так: если фекалии слизистые, кровавослизистые или водянистые, то тонкой деревянной палочкой или спичкой берут
небольшой комочек слизи, помещают на предметное стекло, накрывают
покровным стеклом, слегка его придавливают и микроскопируют.
Если фекалии кашицеобразные или полуоформленные, то сначала на
предметное стекло наносят каплю физиологического раствора, затем концом
палочки прикасаются к фекалиям. После этого палочку обмывают в капельке
раствора до появления равномерной мути и накрывают каплю покровным стеклом.
Мазок должен быть равномерно тонким, прозрачным.
31
Для исследования кишечных простейших (кроме кокцидий) в нативных
мазках используют витальные окраски – раствор Люголя, нейтральрот и метилблау
в разведении 1:1000, 1:5000.
Препараты, окрашенные раствором Люголя, рассматривают под
микроскопом через 3-5 минут. Вегетативные формы простейших и их цисты,
окрашиваются в желтый, коричневый или зеленовато-желтый цвет. Отличаются
они характерной формой, размерами, содержанием цитоплазмы, а также наличием
ядер.
Балантидиоз необходимо дифференцировать от паратифа поросят, который
протекает остро у молодняка до 20-дневного возраста, температура тела при этом
повышается до 41-42°С. Нередко отмечают коликоподобные явления, поросята
взвизгивают, ложатся на живот, затем вскакивают и беспокоятся. Появляется
конъюнктивит, слизистый экссудат засыхает в виде желто-грязных корочек на
краях век или склеивает веки. При балантидиозе таких явлений не бывает.
При подостром и хроническом течении паратифа наблюдают слабо
выраженные септические явления, температура непостоянная, учащается
сердечный толчок, появляется понос, который нередко сменяется запором, а затем
фекалии приобретают жидкую консистенцию, иногда регистрируют признаки
пневмонии. При бактериологическом исследовании обнаруживают сальмонеллы,
которых при балантидиозе не бывает.
Лечение. Для лечения балантидной дизентерии применяются следующие
препараты:
Осарсол дается с кормом в дозе 0,03-0,05 г/кг живой массы, два раза в день –
утром и вечером – в течение 3 дней.
С целью полного излечения и исключения рецидивов болезни рекомендуется
курс лечения повторить через 5-6 дней.
Ятрен в дозе 0,05 г/кг живой массы, два раза в день, три дня подряд, внутрь.
При комбинированном лечении осарсол дают вместе с ятреном. Препараты
назначают в течение шести дней, причем в первые три дня больные животные
получают осарсол два раза в день (утром и вечером) в вышеуказанной дозе, а в три
последующие дня – ятрен внутрь и в виде клизмы. Доза ятрена внутрь 0,05 г/кг
живой массы с одновременными водными клизмами (1:500) два раза в день.
Фуразолидон – задают с малым количеством корма в дозе 0,5 мг поросятам
сосунам, 2 мг – отъемышам и 6 мг – взрослым 2 раза в день в течение 5 дней.
Дополнительно назначают витамины А, Д и Е.
Трихопол (метронидазол) – 0,25 г поросятам весом 12-20 кг, свыше – 0,5 г
два раза в день (утром и вечером), три дня подряд, индивидуально.
Биомицин солянокислый – задают внутрь из расчета 20 мг/кг живой массы,
два раза в сутки с интервалом в 12 часов, разводят в кипяченой воде.
Кальциевую соль биомицина дают с учетом ее активности, обозначенной на
этикетке. Курс лечения животных продолжается 3-7 дней, при этом молочная диета
ускоряет положительное действие биомицина.
Мицерин (неомицин сульфат) – в дозе 5 тыс. ед. на 1 кг живой массы в виде
водного раствора внутрь два раза в день – утром и вечером. Курс лечения 3-5 дней.
Суточная доза мицерина поросятам до 10 дней – 5-10 тыс.ед., от 11-20 дней –
15-20 тыс. ед., от 21-30 дней – 40 тыс. ед [10].
.
32
Профилактика и меры борьбы. Ежедневная уборка навоза в помещениях и
его биотермическое обеззараживание. Кормушки, водопойные корыта и предметы
ухода за свиньями ежедневно моют горячей водой и дезинфицируют.
Станки, кормовые проходы и столовые тщательно очищают и
дезинфицируют. Для этого применяют 2-3%-ный раствор каустической соды или
4%-ный раствор формалина. Можно применять и негашеную известь – пушонку,
которую наносят тонким слоем на поверхность пола и через 1-2 дня ее нужно
вымести.
Для получения здоровых, хорошо развитых и крепких поросят важное
значение имеет организация правильного кормления не только молодняка, но и
свиноматок, а также хряков в течение всего года с включением в кормовой рацион
всех видов кормов, необходимых для животных.
В период отъема поросят проводят химиопрофилактику, скармливая
фуразолидон с мелом, из расчета 1 г препарата на 1 кг мела. Также можно давать
ятрен в лечебной дозе, а затем три дня – осарсол.
Все люди, имеющие контакт со свиньями, должны периодически
проверяться на кишечные простейшие, в частности на балантидии. В случае
установления балантидионосительства или расстройства пищеварения необходимо
немедленно обратиться к врачу.
В хозяйствах необходимо проводить ветеринарно-просветительную работу
как среди животноводов, выделенных для ухода за свиньями, так и среди
населения, так как люди также восприимчивы к балантидиозу и могут заражаться
от свиней.
Амебиаз (амебная дизентерия)
Амебиаз – это кишечно-протозойное заболевание свиней, вызываемое
Entamoeba polecki.
Различают две формы энтамеб: вегетативную (подвижную, или активную) и
инцистированную (неподвижную, или неактивную). В свою очередь вегетативная
форма подразделяется на просветную форму, обитающую в просвете толстого
отдела кишечника, и тканевую форму, которая паразитирует в слизистом и
подслизистом слоях стенки толстой кишки животных, вызывая глубокие язвенные
поражения.
Энтамеба полески имеет величину 10-18 мк, малоподвижна, обычно
округлой формы. Ядро имеет сферическую форму, величиной от 3 до 6 мк.
Периферический хроматин лежит под оболочкой ядра в виде мелких зерен в один
ряд. В ядре имеется ахроматиновая кариосома.
Цисты энтамеб величиной 10-16 мк имеют сферическую форму, окружены
двухконтурной оболочкой, одноядерные, размер ядра 3-5 мк, хроматидные
включения палочкообразной формы с закругленными концами.
Амебная дизентерия чаще всего бывает в жаркое время года и наиболее
подвержены заболеванию поросята в возрасте от 7-15 дней и более.
Появлению амебной дизентерии способствует неблагоустроенность
свинарников, скученность животных, однообразное кормление, плохой уход и
отсутствие профилактических и санитарных мероприятий.
Клиника. Инкубационный период длится от 11 до 18 дней. Течение амебной
дизентерии – острое, подострое и хроническое.
Для острой амебной дизентерии характерны следующие клинические
признаки: температура 41-42°С, пульс 99-100, дыхание 26-28 в минуту,
33
изнурительный понос. Фекалии жидкие, желтовато-сероватого цвета, затем
водянистые желто-зеленого цвета с примесью слизи и крови, после 2-3 суток
фекалии становятся зеленовато-бурого или кроваво-бурого цвета. Состояние
угнетенное, аппетит извращенный, некоторые из них совершенно отказываются от
корма, видимые слизистые оболочки анемичны, щетина взъерошена, тяжело
больные больше лежат, зарываются в подстилку. Наблюдаются тенеземы, колики и
болезненность толстых кишок при пальпировании.
Клинические признаки при подострой и хронической дизентерии в основном
те же, что и при острой, но менее выражены.
Патологоанатомические изменения. При вскрытии трупов павших животных
характерные и наиболее выраженные патологоанатомические изменения
наблюдаются в желудочно-кишечном тракте, особенно в толстом отделе
кишечника.
При острой и подострой формах слизистая оболочка слепой, ободочной
кишок геморрагически воспалена, местами имеются некротические изменения. В
начальной части ободочной кишки обнаруживаются язвочки размером от
булавочной головки до 10-копеечной монеты. Они отличаются глубиной и
подрытостью краев, полости их наполнены желтоватым некротическим распадом.
Наблюдается также гиперемия и увеличение печени, почек, селезенки.
При хронической форме болезни слизистые оболочки желудка и слепой
кишки катарально воспалены. В слизистой оболочке ободочной кишки, в
дистальной части ее встречаются очаги геморрагического воспаления.
Диагноз. С целью установления диагноза необходимо учитывать
клинические и эпизоотологические данные, копроскопические исследования,
патологоанатомические изменения.
Для прижизненной диагностики применяют метод нативного мазка.
Если нет возможности исследование провести в хозяйстве, то можно
фекалии от животных поместить в пробирку или банку с притертой пробкой,
залить раствором Барбагалло и отправить в лабораторию. В этом растворе как
вегетативные формы, так и их цисты сохраняются месяцами и даже годами.
Лечение. При амебной дизентерии свиней применяют следующие
препараты:
Биомицин в дозе 25000 ед. на 1 кг живой массы 2-5 раз в день в течение 3-7
дней, внутрь
Аминарсон – 0,05 г/кг два раза в день в течение 4 дней.
Осарсол – 0,03 – 0,05 г/кг два раза в день – утром и вечером в течение 3 дней.
Курс лечения повторить через 5-6 дней.
Профилактика в основном такая же, как и при балантидиозе свиней. С
профилактической целью в неблагополучных по амебной дизентерии хозяйствах
надо давать биомицин так же и здоровым поросятам один раз в сутки в течение 2-3
дней. Доза препарата:
поросятам в возрасте до 15 дней – 7 мг
поросятам в возрасте 15-20 дней – 15 мг
поросятам в возрасте 20-30 дней – 20 мг
поросятам в возрасте 30-45 дней – 25 мг
поросятам в возрасте 46-60 дней – 50 мг
подсвинкам – 10 мг/кг живой массы [1].
34
Трихомоноз свиней (кишечная форма)
Трихомоноз – это протозойное заболевание, возбудителем которого является
простейшее – Trichomonas suis.
Местом локализации этого вида являются все отделы кишечника и желудка.
Кишечная трихомонада свиней имеет овальную форму, размер 5-8 мк, снабжена
четырьмя жгутиками, в ядре имеется одно или несколько базальных зерен (рис. 3).
Размножаются путем простого деления материнской клетки на две дочерние особи,
а так же путем бесполого множественного деления.
Эпизоотология. Основным источником инвазии являются больные животные
и свиньи-носители трихомонад. Они постоянно выделяют в большом количестве
вегетативные формы возбудителя во внешнюю среду, заражая других свиней
(особенно молодняк), окружающую местность, пастбища, водоемы и т. д.
Рис. 3. Trichomonas suis
Заражение новорожденных поросят может происходить через вымя и соски
больных свиноматок, загрязненные экскрементами, содержащими возбудителей.
35
Наиболее восприимчивы поросята-сосуны 7-50-дневного возраста, затем
поросята-отъемыши. Подсвинки и взрослые животные менее восприимчивы и
редко заболевают.
Заболевание чаще наблюдается среди слабых поросят, отстающих в росте и
развитии. При неблагоприятных условиях содержания и неудовлетворительного
кормления резко снижается резистентность организма поросят и находящиеся в их
кишечнике трихомонады начинают усиленно размножаться и вызывают
заболевание.
Вегетативные формы трихомонад при температуре воздуха +13-20°С могут
сохраняться до 3 часов, а при температуре -20-30°С до 2 часов и более.
Клиника. Инкубационный период от 8 до 15 дней. Одним из первых
признаков болезни является понос и кратковременное повышение температуры
тела до 40-41°С, общее состояние угнетенное, отмечается понижение аппетита и
повышается жажда. На 3-5 день появляется непрекращающийся изнурительный
понос, тенеземы. Фекалии вначале сероватые, затем темно-коричневые от примеси
крови. Испражнения часто содержат слизь, хлопья фибрина и даже чистую кровь.
При продолжительном течении болезни фекалии водянистые, зловонные, акт
дефекации непроизвольный. Быстрое исхудание поросят приводит к истощению и
общему упадку сил. Больные животные больше лежат. Продолжительность
болезни 2-3 недели и более. Выздоровление наблюдается в основном у взрослых
свиней и реже у поросят. Смерть наступает от интоксикации и истощения после
нескольких недель болезни. Оставшиеся в живых поросята имеют вид заморышей,
не поддаются откорму и не пригодны к дальнейшему выращиванию.
Патогенез. У животных – трихомонадоносителей не всегда и не у всех
возникают болезни. Заболевание начинается в том случае, когда трихомонады
размножаются в большом количестве и выделяют токсические вещества
(эндотоксины), которые всасываются в стенку кишечника и в кровь хозяина.
Заражение трихомонозом в естественных условиях происходит в результате
проникновения трихомонад в желудочно-кишечный тракт свиней вместе с кормом
или водой. Паразиты длительное время находятся в полости пищеварительного
тракта, как безвредные обитатели (коменсалы), не вызывая клинически
выраженного заболевания.
Патологоанатомические изменения. Слизистая оболочка желудка набухшая,
темно-красного цвета, с кровоизлияниями. Кишечник, в основном толстый отдел,
наполнен жидким содержимым со слизью и хлопьями фибрина. Стенки кишечника
инфильтрированы, слизистая его складчатая, местами гиперемирована и пронизана
множественными кровоизлияниями, подвергается некрозу и при хроническом
течении болезни характеризуется некротизированной тканью (в виде гнезд
творожистой массы).
Печень незначительно увеличена, паренхима неравномерно окрашена и
дрябловатой консистенции. Желчный пузырь расширен, заполнен желтокоричневой густоватой желчью.
Селезенка незначительно увеличена, плотной консистенции, на разрезе
сочная, пульпа темно-коричневого цвета, рисунок нечеткий.
Почки несколько увеличены, дрябловаты, на разрезе сочные, корковый слой
бледно-коричневого, а мозговой – темно-красного цвета.
Сердце увеличено за счет расширения правых полостей, коронарные сосуды
кровенаполнены, миокард дряблый, бледно-серого или серо-красного цвета.
36
Легкие, как правило, увеличены, тестоватой консистенции, на разрезе
сочные от светло-красного до темно-красного цвета, при надавливании на
паренхиму стекает прозрачная красноватая пенистая жидкость. В полости бронхов
и трахеи имеется также значительное количество пенистой жидкости.
Диагноз на трихомоноз свиней ставится на основании эпизоотологических,
клинических, копроскопических и патологоанатомических данных.
Основным копроскопическим методом диагностики является исследование
фекалий методом нативного мазка. Лучше всего микроскопировать нативный
препарат из свежих фекалий непосредственно в хозяйстве.
Трихомонады в свежих фекалиях очень подвижные и встречаются в
значительном количестве.
Можно исследовать и окрашенный мазок, который делают из
свежевыделенных фекалий или взятых из прямой кишки. Исследуемый материал
тонким слоем размазывают на стекле и дают подсохнуть, затем фиксируют
метиловым спиртом или спиртом-ректификатом. После того, как мазок подсохнет,
его окрашивают по Романовскому-Гимза (на 1 мл дистиллированной воды 3-4
капли основного раствора краски) в течение 40-50 мин., затем промывают водой,
дают подсохнуть и микроскопируют под иммерсией.
В сомнительных случаях при отрицательной микроскопии можно применять
метод культивирования на среде Петровского.
Необходимо проводить и дифференциальную диагностику трихомоноза от
паратифа поросят, диспепсии, балантидиоза, амебной дизентерии, кокцидиоза.
Паратифом поросята заражаются с первых дней жизни до 4-месячного
возраста, чаще болезнь возникает после отъема, особенно в зимне-весенний
период.
Балантидиозом молодняк заражается с 15-20-дневного возраста,
заболевание возникает больше всего после отъема в весенний период.
Амебная дизентерия чаще наблюдается в жаркое время года и зараженность
отмечается у молодняка в возрасте 7-15 дней и более.
Кокцидиозом заражаются поросята в возрасте от 10 до 20 дней и более,
заболевание отмечается в различное время года.
При трихомонозе поросят определенной сезонности не отмечается,
заболевание чаще возникает среди слабых поросят в возрасте 7 дней и до отъема
поросят от матерей [2].
Лечение. Для лечения применяются добавки и корма, содержащие
микроэлементы.
Сухой тканевый препарат, содержащий микроэлементы: медь сернокислую,
калий йодистый, кобальт хлористый. Препарат задается с комом в дозе 1 г на 10 кг
живой массы в течение 7 дней.
Комбикорма, обогащенные микроэлементами – медью сернокислой,
йодистым калием, цинком сернокислым, кобальтом сернокислым, железом
сернокислым, витаминами В2, В12 и антибиотиком биомицином. Комбикорма,
обогащенные микроэлементами, применяются как обычный корм: взрослым
больным свиньям – до 3 кг на голову, молодняку – от 200 до 600 г в день в течение
7-12 дней.
Микроэлементы можно задавать и с другими кормами (молоком – для
молодняка или кашей для взрослых свиней) в следующем количестве:
Суточные дозы микроэлементов (мг) следующие:
37
Взрослые животные
Молодняк
Йодистый калий
0,3
0,1
Хлористый марганец
1,5
0,3
Хлористый кобальт
5
2
Цинк сернокислый
0,5
0,2
Медь сернокислая
10
3
Такие обогащенные микроэлементами корма также применяются в течение
7-12 дней.
Трихопол обладает сильным действием на простейших. Подавляет развитие
трихомонад, балантидий, амеб и других простейших. Препарат применяют
перорально 2 раза в день (утром и вечером) три дня подряд в дозах; поросятам
живым весом 5-40 кг – 0,25 г, подсвинкам 40 кг и выше – 0,5 г.
Через 7-10 дней курс лечения поросятам от 5 до 40 кг повторяют.
Профилактика. Профилактику трихомонозных энтероколитов поросят
необходимо строить в комплексе мероприятий: полноценное кормление, хорошее
содержание свиней, периодические дезинфекции помещений для молодняка, а
также организация выгулов и пастбищного содержания свиней. В хозяйствах
неблагополучных по трихомонозу необходимо поросятам-сосунам вводить
феррадекс и задавать биоветрин.
Феррадекс вводят поросятам в возрасте 2-5 дней внутримышечно
однократно, а с 10-дневного возраста задают биоветрин с кормом (на животное по
15-20 тыс.ед. однократно) в течение 50-60 дней.
Можно рекомендовать применение фуразолидона с мелом из расчета 1 г
фуразолидона на 1 кг мела. Для лучшей поедаемости мела с фуразолидоном его
нужно разводить в воде до получения сметанообразной массы.
Помещения, где выявили животных больных трихомонозом, нужно
тщательно очистить и продезинфицировать 5%-ным горячим раствором
каустической соды или 10%-ным раствором формалина. Навоз подвергать
биотермическому обеззараживанию. Использовать лагерное содержание свиней.
38
ЛИТЕРАТУРА
1.
Аппасов Р. Н. – Амебная дизентерия свиней в Казахстане. Паразиты
сельскохозяйственных животных Казахстана. Изд-во Академии Наук
Казахской ССР, Алма-Ата, 1962, с. 53-55
2.
Аппасов Р. Н. – Патогенные простейшие – трихомонады животных
юга и запада Казахстана. Каз. НИИНТИ, Алма-Ата, 1974, с. 51.
3.Волков Ф. А. - К обнаружению оллулан у свиней в Сибири. - Науч.-техн.
бюл./ВАСХНМ, Сиб. отд-ние, ИЭВСиДВ. - Новосибирск, 1979, вып. 13, с.
17-22.
4. Волков Ф. А. - Диагностика оллуланоза свиней с помощью искусственного
желудочного сока. - В кн.: Профилактика болезней сельскохозяйственных
животных. Новосибирск, 1980,с. 85-89.
5. Волков Ф. А. - Изыскание средств дегельминтизации свиней при
оллуланозе. - В кн.: Незаразные и паразитарные болезни
сельскохозяйственных животных. - Новосибирск, 1981, с. 166-168.
6. Волков Ф. А. - Диагностика оллуланоза свиней - Ветеринария, 1983, №2, с.
42-43.
7. Волков Ф. А. - Оллуланоз свиней. - Ветеринария, 1983, № 11, с. 40-42.
8. Воронкова 3. Г., Алтапова Г. П., Попов М. А. - Оллуланоз свиней
(гистологические изменения в желудке). - Ветеринария, 1985, №1, с. 4647.
9. Демидов Н. В., Потемкина В. А. - Справочник по терапии и профилактике
гельминтозов животных. – М.: Колос, 1980. - 240 с.
10. Ершов В. С. - Справочник по ветеринарной гельминтологии. - М.: Колос,
1964. - 367 с.
11. Казелло А. В., Симаков В. Е. - Патоморфологические изменения в
желудке свиней при спонтанном оллюлянозе. - В кн.: Профилактика
болезней сельскохозяйственных животных. - Новосибирск, 1976, с. 189193.
12. Карпенко И. Г. – Балантидиоз свиней. Москва, Россельхозиздат, 1974, с.
63.
13. Котельникова Г. А.- Диагностика гельминтозов животных. - М.: Колос,
1974. - 240 с.
14. Колабский Н. А., Пашкин П. И. – Кокцидиозы сельскохозяйственных
животных. Ленинград, «Колос», 1974, с. 48-54
15.Корнишина М. Д. - Распространение кокцидиоза свиней в Татарской
АССР. Научные труды Казанского ордена Ленина ветеринарного
института имени Н. Э. Баумана, том 132, Казань, 1979, с. 105-107.
16. Корнишина М. Д. – Возрастная динамика кокцидиоза свиней в условиях
специализированного хозяйства. Там же, с. 107-109.
17. Мозговой А. А. - Гельминты домашних и диких свиней и вызываемые
ими заболевания. - М.: Наука, 1967. - 540 с.
18. Романенко Н. А. – Санитарная гельминтология. - М.: Медицина, 1982. 175с.
39
19. Скрябин К. И., Шихобалова Н. П., Шульц Р. С. - Основы нематодологии,
т.4, Диктиокаулиды, гелигмозоматиды и оллуланиды животных. - М.:
Изд-во АН СССР, 1954. - 323 с.
20. Хейсин Е. М. – Жизненные циклы кокцидий домашних животных. Изд-во
«Наука», Ленинград, 1967, с. 194.
21. Cameron Т. W, Observations on the life history of Ollulanus tricuspis Leuck.,
the stomach worm of the cat. - J. Helminthol., 1927, 5, p. 67-80.
22. А.С. 967471 (СССР). - Способ определения жизнеспособности
гельминтов и их личинок / Ин-т эксперим. ветеринарии Сибири и
Дальнего Востока; Авт. изобрет. М. Ю. Паскальская, Ф. А. Волков, В. И.
Офицеров. - Заявл. 07.08.80. № 2972561/30-15; Опубл. в Б.И., 1982, №39;
МКИ А 61 В 10/00. - УДК 612.072.
23. А.С. 550156 (СССР). - Способ определения жизнеспособности зародышей
гельминтов / Белорус, науч.-исслед. ин-т эксперим. ветеринарии; Авт.
изобрет. И. В. Сафронов, В. И. Орловский. - Заявл. 28.03.75; Опубл. в Б.И.
1977, №19; МКИ А 61 В 10/00. - УДК 616.995.1-093.
40
Методические указания
Алексей Михайлович Третьяков
Петр Иванович Евдокимов
Юлия Алексеевна Кушкина
Василий Александрович Шабаев
Паразитозы свиней и меры борьбы с ними на промышленных комплексах и
специализированных фермах
Редактор
Компьютерная верстка
Лицензия ЛР № 021274 от 26.03.98 г.
Сдано в печать
Бум. тип. №1. Формат 60х84 1/16.
Усл. печ.л. . Уч.-изд. л. 5,09. Заказ №
Тираж 100. Цена договорная
Издательство Бурятской государственной сельскохозяйственной
академии им. В.Р. Филиппова,
670024, г. Улан-Удэ, ул. Пушкина, 8
41
42