Коловратки

ПРОИЗВОДСТВО
ЗООПЛАНКТОНА В
АКВАКУЛЬТУРЕ
Ассоц. Проф. Серпил СЕРДАР
Эгейский Университет, Факультет Рыбного Хозяйства
Планктон: совокупность пассивно плавающих, дрейфующих или
обладающих определённой способностью передвигаться организмов в
пелагической зоне
Фитопланктон
Зоопланктон
Chlorophyceae
Коловратки
Prasinophyceae
Артемия
Bacillariophyceae
Веснологие
Haptophyceae
Дафния
Chrysophyceae
Cyanophyceae
Cryptophyceae
Тип Rotifera (коловратки) является наиболее важной группой
зоопланктона в водных системах. В их состав входит 3 класса,
120 родов и около 2000 видов.
Тип: Rotifera (Коловратки)
Класс: Seisionidea
Класс: Bdelloidea (Пиявки)
Класс: Monogononta (Однояичниковые)
Эти виды встречаются в пресной, солоноватой и морской воде и
почти 90% своей жизни проводят в пресной воде.
Пресноводные виды коловраток
Brachionus rubens
Keratella longispina
Brachionus calyciflorus
Philodina acuticornis
Keratella cochlearis
Asplanchna priodonta
Морфология
Тело
большинства
коловраток разделяется
на три отдела: голова,
туловище и нога. На
головном
отделе
располагается
корона,
состоящая из ресничек.
Rotiferlerde vücut baş,
gövde ve kuyruk olmak
üzere 3 bölgeden
oluşmaktadır.
Коловратка
Brachionus
plicatilis
на
основании
морфологических, физиологических и генетических
признаков
подразделяется
на
два
типа
–
так
называемые L и S типы
L тип - Brachionis plicatilis
200-340 мкм
S тип - Brachionis rotundiformis
150-220 мкм
SS тип - Brachionis rotundiformis
70-160 мкм
- Эти два типа отличаются друг от друга
такими характеристиками как размер, форма
тела и форма их переднего шипа
- Процесс пищеварения у L-типа происходит
в 1,7 раза интенсивней, чем у S-типа
- Оптимальная температура воды
S-тип
28-35º C
L-тип
18-25º C
- Нижний допустимый предел температуры
воды
S-тип
20 ºC
L-тип
10 ºC
-S-тип
диплоидные самки 25 (2n=25) хромосом
гаплоидные самцы 12 (n=12) хромосом
-L-тип
диплоидные самки 22 (2n=22) хромосом
Гаплоидные самцы 11 (n=11) хромосомы
L- биотип
(220-340 мкм)
B. plicatilis
B. manjavacas
B. ʹNevadaʹ
B. ʹAustriaʹ
SM биотип
(150-220 мкм)
B. ibericus
B. ʹcoyrecupiensisʹ
B. ʹalmenara ʹ
B. ʹtiscarʹ
B. ʹcaymanʹ
B. ʹtowerinniensisʹ
S и SS биотипы
(100-150 мкм)
B. rotundiformis
B. ʹlostʹ
L - крупный; SM - средний; S и SS - маленький и очень маленький.
Числа в скобках соответствуют примерному диапазону длины тела
взрослых особей каждой из групп
РАЗМНОЖЕНИЕ
Бесповое и половое размножение
Brachionus plicatilis
*Амиктические самки
откладывают 20 и более яиц в
течении 7-10 дней
*Миктические самки откладывают
1-3 яйца в течении того же
времени
Что является причиной формирования покоящихся яиц?
* Внезапное изменение температуры и солёности культурной среды
* Падение качества культурной среды
*Изменения в виде, качестве и количестве корма
* Высокая плотность популяции
* Генетическая структура коловраток
Mictic and amictic female
•В результате партеногенетического воспроизводства, амиктичные
самки производят диплоидные яйца, имеющие овальную форму и
серый цвет; из которых вылупляются амиктичные или миктичные
самки
•В результате мейоза, миктичные самки производят оплодотворенные
яйца (диплоидные), имеющие овальную форму, цитоплазму
коричневого или оранжевого цвета, на яйцах присутствует прозрачный
участок
Использование коловраток разных видов вносит свой вклад в успешное
искусственное воспроизводство более чем 60 видов морских рыб и 18
видов ракообразных. С этой точки зрения Brachionus plicatilis является
одним из самых популярных и важных видов коловраток
История выращивания B. plicatilis
Начало 1950-х
численность их популяции неожиданно быстро
возросла в прудах с культурой угря (феномен Мизукавари)
1964
был улучшен метод “ежедневной пересадки в ёмкости”
1960
были развиты методы массовой культуры
1965
обнаружено, что они являются отличным кормом
для личинок персидского морского карася
1967
обнаружено, что пекарские дрожжи хороший источник корма
1970-е
пекарские дрожжи стали интенсивно использоваться в
массовой культуре
Условия культивирования
*Хотя Brachionus plicatilis известен своей способностью переносить
соленость в широком диапазоне от 1‰ до 97‰, оптимальная с точки
зрения воспроизводства солёность не превышает 35‰.
*Выбор оптимальной температуры культивирования коловраток зависит
от типа коловраток, коловратки L-типа выращиваются при более низких
температурах (18-25 ºC), чем коловратки S-типа (28-35 ºС).
).Температура (°C)
15
20
25
Продолжительность эмбрионального
развития (дней)
1,3
1
0,6
Время, необходимое для первого
созревания молодых самок (дней)
3
1,9
1,3
Интервал между двумя
последовательными созреваниями (час)
7,0
5,3
4,0
Продолжительность жизни (дней)
15
10
7
Количество яиц, откладываемых самкой
на протяжении всей жизни
23
23
20
Коловратки могут выживать в воде, содержащей по меньшей мере 2
мг/л растворенного кислорода. Лучшие темпы роста наблюдаются при
температуре от 20 до 35° С, солёности 10-35‰ и рН 7.0-9.0.
Почему коловратки важны для аквакультуры как корм для личинки?
* Коловратки идеально подходят в качестве первого экзогенного источника
корма из-за их небольшого размера
* Медленная скорость плавания и способность оставаться во взвешенном
состоянии в толще воды
* Возможность выращивания при высоких плотностях
*Высокая плодовитость
*Их скорость плавания делает их лёгкой добычей для личинок без затрат
лишней энергии
* Легко изолируются от природных зон
*Возможно выращивание в небольших ёмкостях при высокой плотности
*Калорийность составляет порядка 4x104 кал, они легко могут быть
обогащены жирными кислотами или витаминами
*Благодаря циклу партеногенеза, происходит непрерывное производство
новых поколений и быстрый рост популяции
*Формирование яиц в течение непродолжительного времени
Условия выращивания пресноводных коловраток
*Brachionus calyciflorus и Brachionus rubens относятся к наиболее часто
выращиваемым в пресноводной массовой культуре коловраткам .
*Способны выдерживать температуру в диапазоне от 15 до 31°C.
*Оптимальное значение pH 6-8 при 25 °C.
*Минимальный уровень содержания кислорода 1,2 мг.л-1.
КОРМЛЕНИЕ
Коловратки относятся к питающимися пелагической пищей планктонным
организмам. Они фильтруют мелкие частицы (2-20 мкм) из толщи воды с
помощью
венчиков
ресничек,
расположенных
на
головном
отделе.
Микроводоросли обычно используются в качестве корма, часто наряду с
пекарскими дрожжами и искусственными кормами (Culture Selco ® и RotiRich). Скорости фильтрации и переваривания пищи зависят от типа корма,
главным
образом
от присутствия
или
отсутствия
клеточной
стенки,
критической плотности клеток, размера клетки, типа коловраток и условий
культивирования, таких как температура воды, солёность и содержание O2.
Наиболее распространенные виды фитопланктона в кормах для коловраток
Морские виды
Nannochloropsis oculata
Пресноводные виды
Scenedesmus costato-granulatus
Chlorella sp.
Kirchneriella contorta,
Dunaliella tertiolecta
Tetraselmis suecica
Isochrysis galbana
Phacus pyrum,
Ankistrodesmus convoluus
Monochrysis lutheri
Коловратки могут потребить 200 клеток в минуту при оптимальных условиях
Коловратки (инд/мл)
0-100
100-200
200-300
300<
Пекарские дрожжи
1/3 г/106
1,0 г/106
0,75 г/106
0,5 г/106
Плотность коловраток. мл-1
Смесь Culture Selco®
100-150
0,53 г/106
150-200
0,47 г/106
200-250
0,40 г/106
250-300
0,37 г/106
300-350
0,33 г/106
350-400
0,30 г/106
Системы культивирования
* Партиями
* Полу-непрерывные
* Непрерывного действия
Коловратки биохимический состав имеет первостепенное значение
для личинок питания.Липидов и незаменимых жирных кислот
профиль относительно изменяемый с помощью манипуляции с
питанием.
Дрожжи
хлебопекарные
и
некоторые
виды
микроводорослей поддерживать высокий рост населения, но
коловратки, произведенные питательно дефицит или плохо
сбалансированным в липидной фракции, как личиночной пищи. Для
достижения соответствующего содержания незаменимых жирных
кислот, коловратки может быть обогащен микроводорослей, ручной
работы, морских эмульсий нефти, подготовленный microparticulated
кормов и коммерческих продуктов.
The first method (long term)
The second system is a short
produces an enrichment of the
term enrichment. It implies the
tissues, as it is continuous along
harvesting and rinsing of the
the entire culture period
rotifers and the preparation of
a separate enrichment tank
Литература
Conceiçao, L. E., Yufera, M., Makridis, P., Morais, S., Dinis, M.T. 2010. Live Feeds For Early Stages of Fish Rearing.
Aquaculrure Research, 41, 613-640.
Fulks, W., Main, K.L., 1991. Rotifer and Microalgae Culture Systems. Proceedings of a U.S.-Asia Workshop. Hawaii, pp.3-52
Fu, Y., Hirayama,K., Natsukari, Y. 1991a. Genetik divergence between S and L type strains of the rotifer Brachionus plicatilis
O.F.Müller. J. Exp. Mar. Biol. Ecol., 151, 43-56
Fu, Y., Hirayama, K., Natsukari, Y.1991b. Morphological differences between two types of the rotifer Brachionus plicatilis
O.F.Müller. J. Exp. Mar. Biol. Ecol., 151, 29-41.
Gomez A., Serra M., Carvalho G.R. & Lunt D.H. (2002) Speciantion in anvcient cryptic species complexes: evidence from
themolecular phylogeny of Brachionus plicatilis (Rotifera). Evolution 56,1431-1444.
Hindioğlu, A., Serdar, S., (2001). The Effect of Different Dilution Rates on Rotifer (Brachionus plicatilis Müller, 1786) Culture
TÜBİTAK, Tr. J. of Veterinary and Animal Sciences, 25: 483-487 (English abstract).
Lavens, P., Sorgeloos, P. 1996. Manual on the production and use of live food for aquaculture. FAO Fisheries Technical Paper,
361.
Lubzens, E., Tandler, A., Minkoff, G. 1989. Rotifers as food in aquaculture. Hydrobiologia. 186/187: 387-400.
Lubzens, E 1987. Raising rotifers for use in aquaculture. Hydrobiologia 147: 245-255.
Moretti, A., Fernandez-Criado, M. P., Cittolin, G., Guidastri, R. 1999. Manual on Hatchery Production of Seabass and Gilthead
Seabream, Volume 1. FAO Fisheries Technical Paper
Serdar, S., Hindioğlu(Lök), A. (1999) Advantages and disadvantages of resting egg formation in rotifer (Brachionus plicatilis
(O.F.Müller 1786)) culture. Journal of Fisheries and Aquatic Science, Vol 16, No:1-2: 175-182 (English abstract).
Serdar, S., Hindioğlu(Lök), A., (1999) Resting egg formation of rotifer (Brachionus plicatilis Müller, 1786) at different salinities.
Journal of Fisheries and Aquatic Science, Vol 16, No:3-4: 279-287 (English abstract).
Serdar, S., Lök, A., (2002) Effects of temperature on resting egg formation in the rotifer (Brachionus plicatlis, Müller, 1786)
culture. Journal of Fisheries and Aquatic Science, Vol:19, No:1-2:13-17 (English abstract).
http://www.glerl.noaa.gov/seagrant/GLWL/Zooplankton/Rotifers/Pages/Brachionidae.html
http://www.microscopies.com/DOSSIERS/Magazine/Articles/M%20Verolet-CLE/14-1famille%20Asplanchnidae1/famille%20Asplanchnidae1.htm
http://rotifera.lifedesks.org/node/213
http://biology.mcgill.ca/faculty/fussmann/rotifers.html
http://www.oysterhatchery.com/algal-production.shtml
http://pubs.ext.vt.edu/600/600-105/600-105.html