ПАРАЦЕНОГОНИМОЗ РЫБ: ВЕТЕРИНАРНО

УДК 619:614.31:637.56
ПАРАЦЕНОГОНИМОЗ РЫБ: ВЕТЕРИНАРНО-САНИТАРНАЯ
ЭКСПЕРТИЗА
Косяев Н.И. – д.в.н., зав. кафедрой; Ксенофонтова В.А. - аспирант
ФГБОУ ВПО «Чувашская ГСХА», тел.: 8352350684
Ключевые слова: рыба, метацеркарии, инвазия, микробная
обсемененность, качество мяса рыб.
Key words: fish, metacercariae, invasion, microbial dissemination,
quality of fish.
Параценогонимоз – широко распространенная инвазионная болезнь
пресноводных
рыб,
вызываемая
личинками
(метацеркариями)
Paracoenogonimus ovatus, паразитирующими в мышцах, жабрах, мозге,
печени, почках, гонадах, стенке кишечника карповых, окуневых, щуковых,
сиговых, сельдевых, осетровых и некоторых других семейств[1,3].
Излюбленным местом локализации метацеркарий P. ovatus являются
спинные мышцы. Умеренное количество личинок паразита находятся в
брюшных и наименьшее – грудных и хвостовых мышцах.
Метацеркарии вызывают гиперемию и резко выраженную
инфильтрацию мышечных волокон, лейкоцитами, вокруг личинки
разрастается рыхлая соединительная ткань, пронизанная густой сетью
кровеносных
сосудов
и
инфильтрированная
лимфоцитами
и
эозинофилами. Разросшаяся соединительная ткань оттесняет мышечные
волокна, они истончаются, в результате ухудшаются качественные
показатели мяса рыб [1,2].
Целью нашей работы было определение микробной обсемененности
и физико-химических показателей мяса рыб при параценогонимозе и дать
её биологическую оценку.
Материалы и методы. Материалом для исследований служили
рыбы выловленные в акваториях Чебоксарского водохранилища.
Пораженность рыб метацеркариями определяли по методикам И.Е.
Быховской-Павловской (1985) и В.Е. Сударикова и др. (2002). Вид
метацеркариев устанавливали, руководствуясь «Определитель паразитов
пресноводных рыб фауны СССР» (1987). Микробиологические
исследования проводили согласно «Инструкция по санитарномикробиологическому контролю производства пищевой продукции из
рыбы и морских беспозвоночных» (А.С. Сазонова и др., 1991), ГОСТу
26670-91
«Продукты
пищевые.
Методы
культивирования
микроорганизмов» с целью изучения микробной обсемененности мяса
60
здоровой (свежей) и больной рыбы по следующим показателям:
КМАФиМ, наличие сальмонелл, БГКП, протея, стафилококков.
Постановку реакции на пероксидазу, определение сероводорода,
концентрации водородных ионов (рН), реакцию с серной медью,
редуктазную пробу, пробу варкой проводили согласно «Правила
ветеринарно-санитарной экспертизы пресноводной рыбы и раков» (М.,
1998). Биологическую оценку мяса рыб проводили с помощью
реснитчатых
инфузорий
Тетрахимена
пириформис
согласно
«Методические рекомендации для использования экспресс-метода
биологической оценки продуктов и кормов (ВАСХНИЛ. 1990).
Результаты.
Определяли
локализацию
метацеркариев
параценогонимусов у плотвы, чехони, белоглазки. Средняя интенсивность
инвазии составила 469 метацеркариев на рыбу, максимальная – 2295,
минимальная – 104. Большая часть (66-85%) метацеркариев находилась в
поверхностных слоях мышц на глубине 2-4 мм, в более глубоких слоях их
было значительно меньше. Излюбленным местом локализации личинок
паразита являются спинные мышцы.
С целью изучения влияния метацеркариев трематод на
микробиологические, биохимические и другие показатели мяса рыб, нами
проведены исследования проб мяса от 5 экз., пораженных метацеркариями
и 5 экземпляров здоровых рыб этих видов.
При этом получены
следующие результаты. У рыб, пораженных метацеркариями P. ovatus,
общая микробная обсемененность составила 5*104 КОЕ/г, непораженных
рыб (контроль) -3*104 КОЕ/г. Культуры сальмонелл не были выделены.
Количество бактерий группы кишечных палочек в опыте составило 102
микробных тел, в контроле они не были выделены. В опытных образцах
отмечен рост единичных колоний (менее 10) протея, в контрольных пробах
не выделен.
Учитывая, что показатель общей микробной обсемененности для
свежей доброкачественной рыбы не должен превышать величину 1*105
КОЕ/г, а патогенные микроорганизмы (в т.ч. сальмонеллы) отсутствовать,
то исследованные образцы мяса рыб, пораженные метацеркариями
трематоды Р. ovatus, по этим данным не отличаются от контрольных проб.
Вместе с тем, выделение условно-патогенных микроорганизмов из
опытных проб рыб, пораженных параценогонимозом, по-видимому, можно
объяснить их проникновением из воды вместе с мигрирующими
церкариями.
При микроскопии мазков-отпечатков из поверхностных и глубоких
слоев мышц пораженных и здоровых рыб микроорганизмов не
обнаружено. Реакции на пероксидазу, сероводород отрицательны в опыте
и контроле. Концентрация водородных ионов (рН) вытяжки в опыте
6,5±0,03, контроле 6,6±0,02. Реакция с 5%-ным раствором CuSO4 в
бульоне и редуктазная проба в обоих случаях отрицательные. При пробе
61
варки в опыте бульон прозрачный, запах приятный на поверхности блески
жира, в контроле жир в виде капелек.
Результаты химического анализа мяса рыб, инвазированного
метацеркариями Paracoenogonimus ovatus, %
Рыба
Влага
Жиры
Белки
Триптофан Оксипролин
Инвазированная
80,2± 2,4 1,7 ±0,06 18,3 ±0,6 235,6 ±1,21 32,1 ±1,21
метацеркариями P. ovatus (с
интенсивностью заражения от
31 до 65 экз. в компрессории)
Контроль (мясо здоровых рыб) 77,8± 1,3 1,9 ±0,05 18,9 ±0,8 243,6 ±5,83 35, 2 ± 1,11
Было установлено, что выживаемость Тетрахимен в среде,
содержащей максимальную величину навески рыбы, была практически
одинаковой как в опыте, так и в контроле, т.е. биологическая ценность их
не отличается.
Заключение. Мясо пораженных рыб по биохимическим,
микробиологическим показателям и биологической ценности не
отличается от мяса здоровых рыб. Результаты химических исследований
свидетельствуют об ухудшении химического состава мяса рыб,
пораженных метацеркариями P. ovatus.
Учитывая то, что Paracoenogonimus ovatus паразитирует у диких и
домашних плотоядных и всеядных, а также им может заразиться и человек,
необходимо обратить внимание на важность проведения ветеринарносанитарной экспертизы рыб, соблюдения профилактики и технологии
приготовления рыбных блюд.
ЛИТЕРАТУРА: 1. Ларцева Л.В. Паразиты рыб Волго-каспийского
региона – возбудители заболеваний человека и животных / Л.В. Ларцева,
В.В. Проскурина, М.И. Евдокимова, В.Ф. Постнова // «Проблемы
патологии, иммунологии и охраны здоровья рыб и других гидробионтов»:
сб. тез. докл. Всеросс. науч.-практ. конф. – Москва, 2003. – С. 74-76.
2. Линник В.Я. Паразиты рыб, опасные для человека и животных / В.Я.
Линник. – Минск. «Ураджай». 1977. – 96 с. 3. Сапожников Г.И.
Параценогонимоз рыб / Г.И. Сапожников // «Теория и практика борьбы с
паразитарными болезнями (зоонозы)»: мат. докл. науч-практ. конф. –
Москва, 2002. – С. 281-284.
ПАРАЦЕНОГОНИМОЗ РЫБ: ВЕТЕРИНАРНО-САНИТАРНАЯ ЭКСПЕРТИЗА
Косяев Н.И., Ксенофонтова В.А.
Резюме
Определена инвазированность метацеркариями Paracoenogonimus
ovatus
рыб
Чебоксарского
водохранилища.
Изучено
влияние
62
метацеркариев трематод на микробиологические, биохимические и другие
показатели мяса рыб, дана её биологическая оценка.
PARACOENOGONIMOSIS FISH: VETERINARNO-SANITARY EXAMINATION
Kosyaev N.I., Ksenofontova V.A.
Summary
Spreading of Paracoenogonimus ovatus metacercariae in Cheboksarskoe
reservoir has been tested. Influence of metacercariae on microbiological,
biochemical and other fish quality indicators has been studied.
УДК УДК:619:616.98+636.2
ДЕСТРУКТИВНЫЕ ИЗМЕНЕНИЯ В ТКАНЯХ ГОЛОВНОГО
МОЗГА ПРИ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОМ ХЛАМИДИОЗЕ КРЫС
Кочетова О.В., Татарникова Н.А. – д.в.н., профессор; Кочетов В.В.
ФГБОУ ВПО «Пермская ГСХА», e-mail: [email protected]
Ключевые слова: астроглия, клетка, крыса, мозг, нейроцит,
хламидия.
Key words: astroglia, brain, cell, chlamydia, neurocyte, rat.
В последние годы особое внимание в отечественной и зарубежной
литературе уделяется воспалительным заболеваниям головного мозга и
сосудов (Борисов А.В., 2000). Отечественными учеными установлено, что
одной из причин развития необратимых изменений в клетках головного
мозга могут стать инфекционные агенты. К числу таких заболеваний
принадлежит
хламидийная
инфекция
(Н.А.Татарникова,
2010;
О.В.Кочетова, Н.А.Татарникова, 2011).
Целью нашего исследования явилось изучение морфологических
особенностей структур мозга при экспериментальном хламидиозе
животных. Для выполнения поставленной цели было взято 40
беспородных крыс половозрелых крыс средней массой 250-300 г. За 2
недели до эксперимента животные прошли карантин. Инфекционный
материал животным вводили внутрибрюшинно в виде 10% взвеси
очищенной дифференциальным центрифугированием овокультуры Chl.
psittaci штамм «Лори». Инфекционный титр инокулянта составил 10-7
LD50/0,5 мл для куриных эмбрионов.
Животные были разделены на 2 группы, первая опытная, вторая
контрольная, в каждой группе было 20 особей. Все животные первой
63