МОРФОГЕНЕЗ САЛЬМОНЕЛЛЕЗА У РЕПТИЛИЙ Morphogenesis of salmonella in reptiles

УДК 638.7
МОРФОГЕНЕЗ САЛЬМОНЕЛЛЕЗА У РЕПТИЛИЙ
Morphogenesis of salmonella in reptiles
Н. Д. Сычева, Н. С. Мельников, Л. Д. Гатина, студенты
Уральского государственного аграрного университета
(Екатеринбург, ул. Карла Либкнехта, 42)
Рецензент: Н. И. Женихова, кандидат ветеринарных наук, доцент
Аннотация
Сальмонеллез – это острое инфекционное антропозоонозное заболевание, вызываемое сальмонеллами и характеризующееся в общем случае развитием интоксикации и поражением желудочнокишечного тракта. При сальмонеллезе рептилий в организме развивается тяжелый патологический
процесс, охватывающий паренхиматозные органы, желудочно-кишечный тракт и дыхательную систему.
Ключевые слова: сальмонеллез, рептилии, бактерии, печень, сальмонеллы.
Summary
Salmonellosis is a zoonotic infectious disease caused by Salmonella and characterized in general by the
development of intoxication and injuries of gastrointestinal tract. Salmonellosis causes severe pathological
process, taking in parenchymatous organs, gastrointestinal tract and respiratory tract.
Keywords: salmonella, reptiles, bacteria, liver, Salmonella.
Сальмонеллез – это острое инфекционное антропозоонозное заболевание, вызываемое
сальмонеллами и характеризующееся в общем случае развитием интоксикации и поражением желудочно-кишечного тракта.
Сальмонеллы не являются нормофлорой диких ящериц, и их заражение может происходить непосредственно на фермах по их разведению.
Сами рептилии болеют сальмонеллезом достаточно редко, но любые клинически здоровые рептилии потенциально способны выделять сальмонелл из кишечника, поэтому бактерии быстро контаминируют кожу животных и окружающую среду.
Содержание ящериц при повышенных температурах или дефиците жидкости способствует более активному выделению сальмонелл у латентных носителей и иногда провоцирует
манифестное заболевание.
Целью нашего исследования явилось изучение патологоанатомических и морфологических изменений во внутренних органах рептилий, пораженных сальмонеллой, а также определение вида обнаруженных сальмонелл.
Нами были поставлены следующие задачи:
1. Выявить комплекс патологоанатомических изменений, характерных для сальмонеллеза
рептилий.
2. Изучить гистологические изменения в паренхиматозных органах, характерных для
сальмонеллеза рептилий.
3. Установить вид выделенных сальмонелл.
Для изучения морфофункциональных изменений в организме рептилий при сальмонеллезе нами было исследовано 5 рептилий (3 змеи: тигровый питон, удав, водяной питон; 2 ящерицы: игуана зеленая, тегу).
Для получения достоверных данных о наличии бактерий рода Сальмонелла у исследуемых рептилий были проведены следующие исследования: морфологические, макроскопические, микробиологические и серологические.
Для морфологического исследования были взяты кусочки внутренних органов: печень,
почки, кишечник, селезенка, легкие, сердце.
Для приготовления срезов использовали прибор Thermo Shandon Cryotome SME Cryostat
Microtome.
Также для приготовления срезов из ранее фиксированного материала мы использовали автомат для гистологической проводки Shandon Pathcentre и ротационный микротом с ручным
управлением Leica RM2235.
Для окраски гистологических срезов применяли стандартную схему окраски гематоксилином и эозином. Окрашивание срезов проводили в стеклянных баночках. После окраски на
подсушенный срез наносили каплю бальзама и накрывали его покровным стеклом. Далее гистологические срезы исследовали под микроскопом. Для этого использовали микрофотоустановку Micros Austria.
Рептилий вскрывали в спинном положении через 2 часа во избежание структурных изменений органов и тканей.
Вскрытие трупов проводилось в следующем порядке:
1. Внешний осмотр трупа.
2. Вскрытие грудобрюшной полости.
3. Извлечение органов, их исследование и описание.
4. Вскрытие и описание придаточных полостей и ротовой полости.
Для подтверждения гистологического заключения об обнаружении сальмонелл и их типирования нами были проведены микробиологические исследования. Для бактериологического
исследования направлялись органы: печень, почка, кишечник, легкое. Материал забирался
стерильно. Далее из забранного материала мы приготавливали суспензию и действовали согласно представленной схеме.
После проведенных исследований и учета биохимической активности мы приступили
к серологическим исследованиям. Была изучена антигенная структура выделенных бактерий
(с помощью реакции агглютинации с адсорбированными сыворотками). Установлен подрод
выделенных сальмонелл.
Согласно данным литературы, патогенными для рептилий являются следующие серотипы:
S. Agioboo, S. Anatum, S. Carrau, S. Chameleon, S. Muenchen, S. Oslo, S. Pomona, S. Thompson,
S. Durham, S. Infantis, S. Typhimurium, S. Saint-paul, S. Krefeld, S. Montevideo, S. Subgenus II,
S. Subgenus IV. Поэтому идентификацию выделенных культур сальмонелл мы проводили
с сыворотками, соответствующими данным серотипам. Дальнейшую идентификацию выделенных сальмонелл мы проводили согласно антигенно-диагностической схеме КауфманаУайта с применением коммерческих агглютинирующих сывороток.
При патологоанатомическом вскрытии животных установлено: смерть змей наступила
вследствие паралича сосудодвигательного центра, а смерть ящериц – вследствие паралича
дыхательного центра.
В печени исследуемых животных наблюдались формирование гранулем, зернистожировая дистрофия гепатоцитов, очаговое отложение липофусцина, очаги некроза ткани,
хастойная гиперемия, очаги жировой дистрофии гепатоцитов, очаги некроза ткани, очаги
крупнокапельной жировой дистрофии гепатоцитов.
Рис. 1. Змея. Печень (окраска гематоксилином-эозином, ув. X200)
В легких мы наблюдали полиморфноклеточную инфильтрацию и формирование гранулемы, десквамацию эпителия бронхов, катаральное воспаление бронхов, формирование гранулемы в фавианах легких, вакуолизацию эпителия, десквамацию эпителия, застойную гиперемию сосудов, утолщение стенок фавиолы.
Рис. 2. Змея. Легкое (окраска гематоксилином-эозином, ув. X400)
При исследовании селезенки обнаруживается застойная гиперемия сосудов, очаговое
утолщение капсулы, оголение пульпы и уменьшение количества лимфоидных фолликулов,
что свидетельствует о снижении иммунитета.
Рис. 3. Змея. Селезенка
Рис. 4. Змея. Кишечник
(окраска гематоксилином-эозином, ув. Х400)
В кишечнике гипертрофия бокаловидных клеток, обильная слизь.
В почках мы обнаружили вакуольную дистрофию эпителия извитых канальцев, образование кистозных полостей, утолщение капсулы клубочка и его отек, полиморфноклеточную
инфильтрацию, геморрагический гломерулит, скопление гетерофилов.
Рис. 5. Змея. Почка
Рис. 6. Ящерица. Почка
(окраска гематоксилином-эозином, ув. Х400)
В тканях сердца наблюдались образование тромбов в сосудах разного калибра, периваскулярный отек, а также образование гранулемы, вакуольная дистрофия миокардиоцитов.
Рис. 7. Змея. Сердце
Рис. 8. Ящерица. Сердце
(окраска гематоксилином-эозином, ув. Х200)
На основании приведенных исследований установлено, что на среде эндоколонии светлорозового цвета, крупные, прозрачные, на среде ВСА колонии коричневые с почернением зоны под колонией; в мазке, окрашенном по Грамму, микроскопией установлены Грамм отрицательные палочки. Также мы установили, что исследуемые микроорганизмы растут на цитратных средах, мочевину не разлагают, молонат натрия не изменяют, реакция на индол отрицательная, не разлагают также фенилаланин, лизин ферментируют до кислоты, не разлагают 5%-ую лактазу, разлагают дульцит и «сахарный ряд». Можно сделать вывод, что в исследуемом патологическом материале нами были выделены сальмонеллы.
По результатам бактериологических и серологических исследований из печени и кишечника змей были выделены бактерии Salmonella Typhimurium, а из почек ящериц – Salmonella
Anatum.
Таким образом, комплекс патологоанатомических и гистологических исследований свидетельствует о том, что при сальмонеллезе рептилий в организме развивается тяжелый патологический процесс, охватывающий паренхиматозные органы, желудочно-кишечный тракт
и дыхательную систему.
При сальмонеллезе рептилий в печени и респираторной системе так же, как и у других
животных, развивается специфический гранулематозный процесс.
Причиной сальмонеллеза изученных ящериц являются бактерии Salmonella Anatum, а изученных змей – бактерии Salmonella Typhimurium, потенциально опасные для человека.
На основании большого количества источников литературы и собственных исследований
можно сделать следующие предложения.
К любому клинически здоровому животному (рептилии) необходимо относиться как к потенциальному источнику сальмонелл и соблюдать строгую личную гигиену при контакте
с животным и его микросредой. Следует исследовать рептилий на носительство сальмонеллеза. Необходимо строго соблюдать температурный режим в террариумах.
Домашние рептилии должны содержаться вдали от кухни и других зон для приготовления
пищи, жить в специально оборудованных террариумах и не должны свободно перемещаться
по дому.
Продавцам зоомагазинов, ветеринарным врачам необходимо предоставлять владельцам
и потенциальным покупателям рептилий информацию о риске заражения от них сальмонеллами.
Библиографический список
1. Алтухов Н. Н. Краткий справочник ветеринарного врача. М. : Агропромиздат, 1990.
574 с.
2. Афанасьев Ю. И., Юрина Н. А., Котовский Е. Ф. Гистология : учебник. 5-е изд., перераб. и доп. М. : Медицина, 2002. 744 с.
3. Бакулов И. А. Эпизоотология с микробиологией. M. : Агропромиздат, 1987. 415 с.
4. Васильев Д. Б. Ветеринарная герпетология: ящерицы. М. : Проект Ф, 2005. 480 с.
5. Васильев Д. В. Теоритические и методологические основы ветеринарной герпетологии :
дис. … докт. вет. наук. 38 с.
6. Дягилец Е. Ю., Карабак В. И., Васильев Д. Б. Бактериальная флора и ее роль в патогенезе основных симптомокомплексов у рептилий в неволе // Материалы IX международного ветеринарного конгресса. М., 2001. С. 121–123.
7. Гавриш В. Г. Справочник ветеринарного врача. 4-е изд. Ростов н/Д. : Феникс, 2003. 576 с.
8. Достоевский П. П. Справочник ветеринарного врача. Киев : Урожай, 1990. 784 с.
9. Жаров А. В., Иванов И. В., Стрельников А. П. Вскрытие и патоморфологическая диагностика болезней животных. М. : КолосС, 2003. 400 с.
10. Кудрявцев С. В., Фролов В. Е., Королев А. В. Террариум и его обитатели. М. : Лесная
промышленность, 1991.
11. Кузнецов А. Ф., Андреев Г. М., Давыдов В. У. Справочник ветеринарного врача. СПб. :
Лань, 2002. 896 с.
12. Лабинская А. С., Костюкова Н. Н., Иванова С. М. Руководство по медицинской микробиологии. Частная микробиологическая и этиологическая диагностика инфекций. М. : Бином, 2010.
13. Матвеев К. И., Соколова М. И. Руководство по микробиологической диагностике инфекционных болезней. М. : Медицина, 1964.
14. Меньшиков В. В. Методики клинических лабораторных исследований : справочное
пособие. М. : Лабора, 2009.
15. Меркулов Г. А. Курс патогистологической техники. Л. : Медгиз, 1961.
16. Методические указания по микробиологической диагностике заболеваний, вызываемых энтеробактериями: МУ 04-723/3. М. : МЗ СССР, 1984.
17. Методические указания по определению чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам: МУК 4.12.1890-04. М., 2004.
18. Покровский В. И., Поздеев О. К. Медицинская микробиология. М. : ГЭОТАР МЕДИЦИНА, 1998.
19. Таршис М. Г., Черкасский Б. А. Болезни животных, опасные для человека. М. : КолосС, 1997. 298 с.
20. Юшканцева С. И., Быков В. Л. Гистология, цитология и эмбриология. Краткий атлас :
учебное пособие. СПб. : П-2, 2006. 96 с.
21. Brenner D. J., Krieg N. R., Staley J. T., Garrity G. M. Bergey's manual of systematic bacteriology. Berlin : Springer, 2004. 1136 p.
22. Gans C. Biology of the reptilian. London, New York, Paris, San Diego, San Francisco, San
Paulo, Sydney, Tokyo, Toronto : Academic press, 1982. 536 p.
23. Jacobson E. Infectious diseases and pathology of reptiles : color atlas and text. 2007. 736 p.
24. Tsellarius A. J., Cherlin V. A. Individual identification and new method of marking of
Varanus griseus (Reptilia, Varanidae) in field conditions // Herpetol. Res. (Leningrad). 1991. № 1.
P. 104–118.