влияние барботажной санации на морфологическую реакцию

Реклама
Журнал анатомии и гистопатологии. – 2014. – Т. 3, № 1
УДК 616–001.4–018–089.001.6
© Коллектив авторов, 2014
ВЛИЯНИЕ БАРБОТАЖНОЙ САНАЦИИ НА
МОРФОЛОГИЧЕСКУЮ РЕАКЦИЮ ПРИ ЛЕЧЕНИИ
ГНОЙНЫХ РАН В ЭКСПЕРИМЕНТЕ
С. В. Лобас, А. А. Глухов, Е. В. Микулич, Н. Т. Алексеева
ГБОУ ВПО “Воронежская государственная медицинская академия им. Н. Н. Бурденко”
Минздрава России, г. Воронеж, Россия
Представлены результаты лечения гнойных ран с использованием барботажной санации. Эксперимент проведен на 48 белых крысах-самцах. После моделирования гнойной раны животные были разделены на две группы – контрольную и опытную. В контрольной группе животных лечение раны осуществлялось путем смены асептических повязок 2 раза в сутки с интервалом 8-10 часов. В основной группе кроме
двукратной смены повязки проводилась программная барботажная санация в 0.9% растворе NaCl в течение 3-х минут во время утренней перевязки. Гистологические исследования проводились на 1, 3, 5 и 7 сутки. Осуществлялась оценка микропрепаратов, окрашенных гематоксилином и эозином. В препаратах
контрольной группы отмечалось удлинение сроков воспалительной фазы заживления ран, длительное
сохранение очагов некроза в мышечном слое и неравномерное развитие и созревание грануляционной
ткани. Применение барботажной санации в растворе 0.9% растворе NaCl привело к более быстрому и полному очищению раны от микроорганизмов и продуктов распада тканей, к более равномерному заполнению раневого дефекта грануляционной тканью до уровня сосочкового слоя дермы, исчезновению признаков воспаления и своевременной эпителизации.
Ключевые слова: программная барботажная санация, асептические раны.
© The authors, 2014
The Influence of the Barbotage Sanation on the Morphological Reactions of Rehabilitation in the Treatment of
Purulent Wounds in Experiment
There are offering results of treatment festering wounds in experiment with employment of barbotage
sanation.The study was carried out on 48 white mongrel male rats. After simulation suppurative inflammation in
the wounds, rats were divided on two groups-control and empirical. In control group treatment of the wounds
were realized by changing aseptic bandages two time during the day with interval of 8-10 hours. In empirical
group in addition to two time changing bandages we use program barbotage sanation in 0.9% NaCl solution
during 3 minutes at morning dressing. Histological investigations were doing at 1, 3, 5, 7 days from the beginning
of the experiment. There were accomplished evaluation of micropreparations, which were tinctured by
haemotoxylin–eosin. In preparations of control group was marked extension period of inflammatory phase
wounds healing, lengthy reservation necrotic fragments in muscle stratum, uneven development and maturity of
granulation tissue Employment barbotage sanation in 0.9% NaCl solution promote to more thorough and rapid
cleaning the wound from microorganisms and products of tissues disintegration, more uniform filling of the
wound defect by granulation tissue to the papillar layer of the derm, disappearance features of inflammation,
timely epitelisation.
Keywords: program barbotage sanation, aseptic wounds.
Ведение
Улучшение результатов лечения ран
– одна из первых проблем, с которой медицина и все человечество столкнулись на
самых ранних этапах своего развития [3,
5]. Данная проблема остается актуальной
в настоящее время. Причинами тому являются, сохраняющиеся на высоком
уровне цифры производственного и бытового травматизма, неуменьшающееся
количество локальных военных конфликтов, значительный процент неудовлетворительных результатов лечения ран,
вследствие присоединения хирургической
инфекции, увеличением числа сопутствующих заболеваний, дефектами иммун-
ной системы, развитием антибиотикорезистентности микроорганизмов и другими причинами [1, 4, 6, 7]. В среднем заживление раны, осложненное присоединением инфекции в 1.5–2 раза увеличивает срок лечения, в то время как стоимость
лечения вырастает в цене минимум в 5–7
раз [2, 5, 7]. Очевидными являются факты
повышения инвалидизации населения,
удлинения сроков стационарного и амбулаторного лечения, увеличения числа летальных исходов при осложненном течении раневого процесса [1, 2, 6].
Целью настоящего исследования
явилась оценка эффективности применения программной барботажной санации в
лечении гнойных ран.
33
С. В. Лобас, А. А. Глухов, Е. В. Микулич, Н. Т. Алексеева
Рис. 1. В дне раны нейтрофильные лейкоциты скапливаются в просвете, между некротизированными мышечными волокнами и
инфильтрируют их. Контрольная группа.
1-е сутки. Окраска гематоксилином и эозином. Об. 20.
Рис. 2. Резкий отек дермы с расширенными
полнокровными капиллярами и диффузной
инфильтрацией нейтрофильными лейкоцитами. Контрольная группа. 1-е сутки.
Окраска гематоксилином и эозином. Об. 40.
Рис. 3. Преобладание клкток пролиферативного ряда. Опытная группа. 5-е сутки.
Окраска гематоксилином и эозином. Об. 40.
Рис. 4. Уплотнение краев раны, исчезновение отека. Опытная группа. 5-е сутки. Окраска гематоксилином и эозином. Об. 40.
Материалы и методы исследования
Исследование выполнено на 48 белых беспородных крысах-самцах. Моделирование гнойных ран проводилось согласно модифицированной методике И.А.
Сыченникова (1974). Животным под наркозом препаратом “Золетил-100” (8
мк/кг) на предварительно выбритом участке наружной поверхности средней трети
бедра производили линейный разрез 1–
1.5 см. Рассекалась кожа, фасция, мышцы.
Элементы раны (края, стенки, дно) раздавливали зажимом Кохера. В рану вносили марлевый тампон массой около 0.5
34
г. со взвесью суточной культуры
Staphilococcus aureus в дозе 1010 микробных тел в 1 мл 0.9% раствора хлорида натрия. После этого на кожу накладывали
1–2 адаптационных шва шелковой нитью.
Рану покрывали асептической повязкой.
Для моделирования гнойных ран во всех
случаях применялся один и тот же штамм
стафилококка. На 3-и сутки во всех ранах
развивалась картина острого гнойного
воспаления с обильным гнойным отделяемым. Швы снимали, края раны разводили, удаляли марлевый тампон; при
этом выделялось 1.0–1.5 мл гноя. В результате формировалась гнойная рана.
Журнал анатомии и гистопатологии. – 2014. – Т. 3, № 1
Лечение начинали на 3-и сутки после моделирования раны с вторичной хирургической обработки.
Животные были разделены на 2
группы, по 24 животных в каждой. В контрольной группе лечение осуществлялось
путем смены асептических повязок 2 раза
в сутки с интервалом 8-10 часов. В опытной группе кроме двукратной смены повязки проводилась программная барботажная санация в 0.9% растворе NaCl в
течение 3-х минут во время утренней перевязки. Проведение сеансов программной барботажной санации осуществлялось при помощи оригинального устройства, разработанного на кафедре общей
хирургии ВГМА им. Н.Н. Бурденко. Оценку гистологических показателей проводили на 1, 3, 5 и 7 сутки. Для гистологического исследования взятый материал
фиксировали в 10% растворе нейтрального формалина. Изготавливали парафиновые срезы толщиной 6 мкм, которые окрашивали гематоксилином и эозином.
Результаты и их обсуждение
В препаратах всех экспериментальных групп на 1-е сутки исследования отмечалась сходная морфологическая картина. В полости и дне раны содержатся
бесструктурные некротичные массы (рис.
1), по краям раны – некротические массы
с обильным скоплением нейтрофильных
лейкоцитов и выпадением фибрина. В
дерме и соединительной ткани наблюдается отек (рис. 2), полнокровие расширенных капилляров, воспалительная инфильтрация из нейтрофильных лейкоцитов, макрофагов, единичных тучных клеток. В мышечном слое отмечается интерстициальный отек, некроз и разрушение
мышечных волокон, скопление нейтрофилов между мышечными волокнами и
инфильтрация некротизированных волокон, полнокровие капилляров с краевым
стоянием и стазами лейкоцитов.
На 3-и сутки исследования в препаратах контрольной группы в просвете наблюдается гнойный детрит, переходящий
в нежный фибрин, связанный с краями
раны. Происходит появление веретеновидных фибробластов во всех уровнях
мягких тканей с началом их упорядочивания. В мышечном слое наблюдаются
более мелкие, чем в опытных группах,
очажки образования грануляционной
ткани.
На данный экспериментальный
срок в опытной группе отмечается появление островков молодой грануляционной ткани среди мышечных волокон в дне
раны. В дерме и подкожной жировой
клетчатке сохраняются отек, лейкоциты,
небольшое количество макрофагов, появляются веретеновидные фибробласты,
лимфоциты, начинается новообразование
сосудов. В просвете наблюдаются бесструктурные аморфные массы, по краям –
зона нейтрофильных лейкоцитов с образованием демаркационной линии и сеть
из волокон фибрина.
К 5-м суткам в контрольной группе,
по сравнению с опытной, остается больше
клеток фазы воспаления – нейтрофильных лейкоцитов, макрофагов, тучных
клеток, упорядочивается расположение
фибробластов. Грануляционная ткань
расположена тонким слоем, более молодая, в мышечном слое наряду с грануляционной тканью сохраняется воспалительная инфильтрация между мышечными волокнами, сохраняются некротизированные мышечные волокна.
На 5-е сутки в препаратах опытных
групп наблюдается выполнение дна раны
мощным слоем грануляционной ткани с
большим количеством вереновидных
фибробластов. Края раны на всем протяжении, вплоть до эпидермиса, покрыты
слоем грануляций, уменьшается отек,
дерма, подкожная клетчатка и соединительная ткань уплотняются (рис. 3, 4), исчезают клетки воспалительного ряда,
происходит новообразование сосудов. В
дерме отмечается выраженный коллагеногенез. Начинается сближение краев раны и реэпителизация зоны дефекта.
В контрольной группе на 7-е сутки
исследования процессы образования грануляции раны выражены слабее, несмотря на созревающую грануляционную
ткань глубина раневого дефекта достигает
мышечного слоя, в котором сохраняется
очаговая воспалительная инфильтрация
нейтрофильными лейкоцитами, единичными эозинофилами и лимфоцитами.
Также сохраняются инфильтрация краев
раны нейтрофильными лейкоцитами,
отек мягких тканей. В случае более полного заполнения раневого дефекта зрелой
грануляционной тканью (до уровня верхней дермы) в толще новообразованной
ткани остаются мелкие абсцессы на разных уровнях.
35
Журнал анатомии и гистопатологии. – 2014. – Т. 3, № 1
На 7-е сутки в препаратах опытной
группы отмечаются следующие изменения: выполнение зрелой грануляционной
тканью раневого дефекта до уровня сосочкового слоя дермы. В просвете сохраняется скопление фибрина или тканевой
детрит. Грануляционная ткань зрелая, с
большим количеством фибробластов, новообразованных капилляров, коллагеновых волокон. В краях раны исчезает отек,
мягкие ткани уплотняются, происходит
созревание грануляционной ткани и
сближение краев раны. С краев раны эпителий нарастает на грануляционную
ткань.
Выводы
Таким образом, несмотря на примерно одинаковые сроки начала появления грануляционной ткани в дальнейшем
заживление раны протекало более полноценно при использовании барботажной
санации, отмечалось более равномерное
заполнение раневого дефекта грануляционной тканью до уровня сетчатого слоя
дермы, исчезновение признаков воспаления и своевременная эпителизация.
Список литературы
1.
Алипов В. В. Экспериментальное обоснование сочетанного применения наночастиц меди и низкоинтенсивного лазерного
облучения при хирургическом лечении
инфицированных ожоговых ран кожи /
В.В. Алипов [и др.] // Вестник экспериментальной и клинической хирургии.
2013. Т. VI, №4. С. 411–417.
2. Бледнов А. В. Перспективные направления в разработке новых перевязочных
средств / А.В. Бледнов // Новости хирургии. 2006. Т. 4, № 1. С. 9–19.
36
3. Булынин В. И. Лечение ран / В.И. Булынин, А.А. Глухов, И.П. Мошуров. Воронеж,
1998. 248 с.
4. Винник Ю. С. Особенности патогенеза
длительно
незаживающих
ран
/
Ю.С.Винник [и др.] // Новости хирургии.
2011. Т. 19, №3. С. 101–110.
5. Ларичев А. Б. Вакуум-терапия в комплексном лечении гнойных ран / А.Б. Ларичев, А.В. Антонюк, В.С. Кузьмин // Хирургия. 2008. №6. С. 22–26.
6. Мохов Е. М. Применение озонированного
перфторана при лечении гнойных ран /
Е.М. Мохов, С.И. Воробьев, А.Р. Армасов
// Вестник экспериментальной и клинической хирургии. 2012. Т. V, №2. С. 324–
329.
7. Суковатых Б. С.
Иммобилизированная
форма хлоргексидина биглюконата в комплексном лечении гнойных ран / Б.С. Суковатых [и др.] // Вестник экспериментальной и клинической хирургии. 2013. Т.
VI, №4. С. 406–410.
Информация об авторах
Лобас Сергей Владимирович – канд. мед. наук,
ассистент кафедры общей хирургии ГБОУ ВПО
“Воронежская государственная медицинская академия им. Н. Н. Бурденко” Минздрава России.
394036, г. Воронеж, ул. Студенческая, д. 10.
Глухов Александр Анатольевич – д-р мед. наук, профессор, зав. кафедрой общей хирургии
ГБОУ ВПО “Воронежская государственная медицинская академия им. Н. Н. Бурденко” Минздрава
России. 394036, г. Воронеж, ул. Студенческая, д. 10.
Микулич Елена Викторовна – канд. мед. наук,
ассистент кафедры общей хирургии ГБОУ ВПО
“Воронежская государственная медицинская академия им. Н. Н. Бурденко” Минздрава России.
394036, г. Воронеж, ул. Студенческая, д. 10.
Алексеева Наталия Тимофеевна – канд. мед.
наук, доцент, зав. кафедрой нормальной анатомии
человека ГБОУ ВПО “Воронежская государственная медицинская академия им. Н. Н. Бурденко”
Минздрава России, 394036, г. Воронеж, ул. Студенческая, д. 10. E-mail: [email protected]
Поступила в редакцию 11.02.2014 г.
Скачать