сборник материалов конференций
реклама
ФГБОУ ВПО»МГУПП» СБОРНИК МАТЕРИАЛОВ КОНФЕРЕНЦИЙ ЧАСТЬ II Москва 2015 МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ федеральное государственное образовательное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования «МОСКОВСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ ПИЩЕВЫХ ПРОИЗВОДСТВ» Научная конференция «Разработка инновационных инструментальных методов исследования внутренних болезней животных» СБОРНИК МАТЕРИАЛОВ КОНФЕРЕНЦИЙ Февраль 2015 г. Часть II Москва ИК МГУПП 2015 УДК 663/.664:001.891-053.813 664(06)+614.3 ББК 36 36.92/.95:51.23 Ответственный редактор Стахи Т.А. Редакционная комиссия Еделев Д.А., Майорова Н.В., Кальницкая О.И., Стахи Т.А., Тырсин Ю.А., Уша Б.В., Василиевич Н.В., Скляренко С.А., Сидоренко Ю.И., Кантере В.М., Мойсеяк М.Б., Гладько В.В., Долгин Ю.А., Решетова А.Е., Кузнецов А.Л., Будаева В.А. Сборник материалов конференций в 15 ч. / под общ. ред. Т.А. Стахи – М.: ИК МГУПП, 2015. Ч II: Научная конференция «Разработка инновационных инструментальных методов исследования внутренних болезней животных» / Отв. ред. к.п.н. доц. Т.А. Стахи – М.: ИК МГУПП, 2015. – 128 с. ISBN 978-5-9920-0262-1 В сборнике представлены материалы научной конференции «Разработка инновационных инструментальных методов исследования внутренних болезней животных» Московского государственного университета пищевых производств. ISBN 978-5-9920-0262-1 ©МГУПП, 2015 Содержание Уша Б.В., Верховская Г.Л. ИННОВАЦИОННЫЕ ТЕХНОЛОГИИ МЕДИЦИНЫ СЕГОДНЯ 7 – ОСНОВА ВЕТЕРИНАРНОЙ Александрова В.А., КуликовЕ.В., СотниковаЕ.Д., Ватников Ю.А. ИЗУЧЕНИЕ РАЗВИТИЯ СКЕЛЕТА ЦЕСАРОК ПОСТЭМБРИОНАЛЬНОМ ОНТОГЕНЕЗЕ 11 В Ананьев Л.Ю., Крюковская Г.М. ЭТИКА В ВЕТЕРИНАРИИ 15 Ананьев Л.Ю., Герасимов А.Е., Боев В.И. АКТУАЛЬНЫЕ АСПЕКТЫ ИСКУССТВЕННОГО РАЗВЕДЕНИЯ ФАЗАНОВ 18 Антонова А.Н., Ленченко Е.М. ИЗУЧЕНИЕ ВИДОВОГО СОСТАВА И ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТИ К АНТИБИОТИКАМ БАКТЕРИЙ, ВЫДЕЛЕННЫХ ПРИ ДИСБАКТЕРИОЗАХ КИШЕЧНИКА МОЛОДНЯКА СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ 19 Боев В.И., Ананьев Л.Ю. , Сушкова З.Р. БОЛЕЗНИ НАРУШЕНИЯ ОБМЕНА ВЕЩЕСТВ В ОБЩЕЙ ПАТОЛОГИИ ПРОДУКТИВНЫХ ЖИВОТНЫХ 24 Боюнчан Н..Р, Крюковская Г.М., Порфирьева Л.Ю.ОСОБЕННОСТИ СОДЕРЖАНИЯ ЛАБОРАТОРНЫХ ЖИВОТНЫХ ДЛЯ ИНСТРУМЕНТАЛЬНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ 26 Воронкова О.Д., Уша Б.В. РАСПРОСТРАНЕНИЕ И ВИДЫ ПАТОЛОГИЙ МОЛОЧНОЙ ЖЕЛЕЗЫ У СОБАК В УСЛОВИЯХ СОВРЕМЕННОЙ УРБАНИЗАЦИИ 29 Горячева М.М. ЭПИЗООТОЛОГИЯ БРУЦЕЛЛЁЗА ЖИВОТНЫХ 31 Давыдов Е.В., Коробов С.С., Шленский В.Ю., Лудина А. Д., Пантаз Ю. С. ЛЕЧЕНИЕ ОПУХОЛЕЙ МЕТОДОМ ФОТОДИНАМИЧЕСКОЙ ТЕРАПИИ В ВЕТЕРИНАРИИ 32 Демин А.И., Уша Б.В., Серегин И.Г. К ВОПРОСУ ОБНАРУЖЕНИЯ САРКОЦИСТ В МЫШЕЧНОЙ ТКАНИ ДИКИХ УТОК 36 Евдокимова Н.В., Сысоева Н.Ю., Верховская Г.Л. ИЗУЧЕНИЕ МИКРОФЛОРЫ ЖЕЛУДОЧНО-КИШЕЧНОГО ТРАКТА СОБАК ПРИ ДИПИЛИДИОЗЕ 39 3 Ездакова И.Ю., Лощинин М.Н., Журавлѐва М.С., Попова Е.В. ИСПОЛЬЗОВАНИЕ МЕТАБОЛИТОВ МИКРООРГАНИЗМОВ ДЛЯ ОЦЕНКИ ФАГОЦИТАРНОЙ АКТИВНОСТИ КЛЕТОК КРОВИ Иванова Т.В., Уша Б.В. ЦИТОМОРФОЛОГИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ОПУХОЛЕЙ. МЕТОДЫ ИХ ДИАГНОСТИКИ 43 Каюрова М., Уша Б.В. ДИАГНОСТИКА НОВООБРАЗОВАНИЙ В ПЕЧЕНИ У СОБАК МЕТОДОМ КОМПЬЮТЕРНОЙ ТОМОГРАФИИ 46 Коротеева М.А., Уша Б.В. ПРИЖИЗНЕННАЯ ДИАГНОСТИКА ЗАБОЛЕВАНИЙ ПЕЧЕНИ 50 Крюковская Г.М., Крюковский Р.А, Луцай В.И. Боюнчан Н.Р. ФАЗОВО-КОНТРАСТНАЯ МИКРОСКОПИЯ ДЛЯ ОЦЕНКИ ЭРИТРОЦИТОВ В ПОСТТРАВМАТИЧЕСКОМ ПЕРИОДЕ У ЖИВОТНЫХ ПОСЛЕ КРОВОПОТЕРЬ 53 Крюковский Р.А., Соколкова И.В., Верховская Г.Л. ПРИМЕНЕНИЕ НЕМЕДИКАМЕНТОЗНЫХ МЕТОДОВ ТЕРАПИИ 57 Крюковский Р.А. БИОИНДИКАЦИЯ КАК МЕТОД ОЦЕНКИ БЕЗОПАСНОСТИ ОКРУЖАЮЩЕЙ СРЕДЫ 59 Лефта Е.В., Булуктаева О.А., Римиханов Н.И. МЕТОДЫ СОДЕРЖАНИЯ СТРАУСОВ В ФЕРМЕРСКИХ ХОЗЯЙСТВАХ И ЛИЧНОМ ПОДВОРЬЕ 62 Лобова Н.В., Соколкова И.В., Крюковская Г.М. БИОЭНЕРГОИНФОРМАЦИОННЫЙ МЕТОД ГАСТРОДОУДЕНИТАХ 64 ТЕРАПИИ ПРИ 44 Назимова А.В., Римиханов Н.И. БИОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ ВОСПРОИЗВОДСТВА СТРАУСОВ И ЭФФЕКТИВНЫЕ СПОСОБЫ ИНКУБАЦИИ СТРАУСИНЫХ ЯИЦ 65 Осянина М.Н., Уша Б.В., Абрамов В.Е., Балышев А.В. ИЗУЧЕНИЕ ТИТРАЦИИ ДОЗ И ТЕРАПЕВТИЧЕСКОЙ ЭФФЕКТИВНОСТИ ПРИМЕНЕНИЯ ПРЕПАРАТА «АЗИТРОНИТ» ПРИ ОСТРОЙ БРОНХОПНЕВМОНИИ У ТЕЛЯТ 68 Осянина М.Н., Уша Б.В., Абрамов В.Е., Балышев А.В. ИЗУЧЕНИЕ ТЕРАПЕВТИЧЕСКОЙ ЭФФЕКТИВНОСТИ ПРИМЕНЕНИЯ ПРЕПАРАТА «АЗИТРОНИТ» ПРИ БОЛЕЗНЯХ ОРГАНОВ ДЫХАНИЯ У ТЕЛЯТ 71 Саплинова М.А., Сотникова Е.Д. ИЗУЧЕНИЕ ОСОБЕННОСТЕЙ ИЕРАРХИЧЕСКОГО ПОВЕДЕНИЯ КОШЕК 74 Соколкова И.В., Лобова Н.В., Крюковская Г.М. ЭНДОСКОПИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ ЖЕЛУДКА СОБАК 77 4 Соколкова И.В., Крюковская Г.М., Боюнчан Н.Р. ПРИМЕНЕНИЕ ИЗЛУЧЕНИЙ КРАЙНЕ ВЫСОКИХ ЧАСТОТ ПРИ ЛЕЧЕНИИ ДОМАШНИХ ЖИВОТНЫХ 79 Сушкова З.Н., Камалов Р.А., Булуктаева О.А., Римиханов Н.И. АММИВИТ В КОРМЛЕНИИ РАНООТБИТЫХ ТОНКОРУННЫХ ЯГНЯТ 81 Сушкова З.Н., Камалов Р.А. Булуктаева О.А., Римиханов Н.И. ФИЗИОЛОГИЧЕСКИЙ СТАТУС МИНЕРАЛЬНОГО ОБМЕНА ЯГНЯТ ИСПОЛЬЗОВАНИИ В ИХ КОРМЛЕНИИ АММИВИТА 84 ПРИ Сушкова З.Р., Ананьев Л.Ю., Римиханов Н.И., Боев В.И. КОМПЛЕКСНАЯ И ЭНЕРГЕТИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА КОРМОВ ЧУВАШСКОЙ РЕСПУБЛИКИ 88 Тарасова Л.С., Уша Б.В. ПОВЕРХНОСТНАЯ ПИОДЕРМА МЕЛКИХ ДОМАШНИХ ЖИВОТНЫХ. ЦИТОЛОГИЧЕСКАЯ ДИАГНОСТИКА ПОВЕРХНОСТНОЙ ПИОДЕРМЫ 90 Толмачева Г.С., Ленченко Е.М. ИССЛЕДОВАНИЕ ГЕМАТОЛОГИЧЕСКИХ И БИОХИМИЧЕСКИХ ПОКАЗАТЕЛЕЙ ПРИ БОЛЕЗНЯХ ОРГАНОВ ПИЩЕВАРЕНИЯ ЖИВОТНЫХ 92 Троицкая Т.Э., Сотникова Е.Д. ОСОБЕННОСТИ ЛЕЧЕНИЯ ХЛАМИДИЙНОЙ ИНФЕКЦИИ У ПОПУГАЕВ 97 Уша Б.В., Концевая С.Ю., Луцай В.И., Ананьев Л.Ю. МЕТОДЫ ПО ИЗУЧЕНИЮ ТОПОГРАФИЧЕСКОЙ АНАТОМИИ ЛИМФАТИЧЕСКИХ УЗЛОВ И ЭФФЕРЕНТНЫХ СОСУДОВ ГОЛОВЫ У СВИНЬИ 100 Уша Б.В., Коротеева М.А. ЭЛАСТОГРАФИЯ КАК МЕТОД РАННЕЙ ДИАГНОСТИКИ ЗАБОЛЕВАНИЙ ПЕЧЕНИ 103 Уша Б.В., Концевая С.Ю., Луцай В.И., Ананьев Л.Ю. БИОХИМИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ ПОКАЗАТЕЛЕЙ СЫВОРОТКИ КРОВИ ПРИ РАЗЛИЧНЫХ СПОСОБАХ ФИКСАЦИИ РЕБЕР ГРУДНОЙ КЛЕТКИ 105 Харламов В.К., Уша Б.В. КОРРЕКЦИЯ ГЕПАТОЗА ПОЛИФЕПАН 107 У НОРОК ПРИ ПОМОЩИ ЭНТЕРОСОРБЕНТА Шабулдо А. И. МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ БАБЕЗИОЗА СОБАК 5 111 Шаповалова А.А., Сысоева Н.Ю., Крюковская Г.М., Верховская Г.Л. ИЗУЧЕНИЕ МОРФОЛОГИИ ЭРИТРОЦИТОВ ПРИ АЛЛЕРГИЧЕСКОМ БЛОШИНОМ ДЕРМАТИТЕ У СОБАК МЕТОДОМ СВЕТОВОЙ МИКРОСКОПИИ 114 Шведова Д.И., Уша Б.В. ВНУТРИВЕННАЯ ЭКСКРЕТОРНАЯ УРОГРАФИЯ У КОШЕК 118 Шипицина А.А., Сысоева Н.Ю., Верховская Г.Л. МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ ТОКСОПЛОЗМОЗА БЕЗОПАСНОСТИ 119 И ПРОБЛЕМЫ ВЕТЕРИНАРНО-САНИТАРНАЯ ОЦЕНКА ПРЕСНОВОДНОЙ РЫБЫ ПРИ ГЕЛЬМИНТОЗАХ 6 124 ИННОВАЦИОННЫЕ ТЕХНОЛОГИИ – ОСНОВА ВЕТЕРИНАРНОЙ МЕДИЦИНЫ СЕГОДНЯ Проф., д-р вет. наук, академик РАН Уша Б.В. Зав. лаб. Верховская Г.Л. Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» Ветеринарная медицина - область науки и практических знаний о болезнях животных, их профилактике, диагностике и лечении, определении ветеринарно-санитарного качества и безопасности продукции животного и растительного происхождения. Современные проблемы и будущее ветеринарной медицины тесно связаны с комплексной программой развития экономики страны. Важным условием обеспечения повышения производительности труда в животноводстве и в целом эффективности отрасли является применение научнообоснованных технологий и достижений передового опыта. Развитие животноводства может осуществляться только при условии эффективной ветеринарной защиты животных от болезней и при недостаточном проведении лечебно-профилактических мероприятий экономический ущерб от них может достигать в совокупности 40 % стоимости всей производимой продукции в животноводстве. При этом основными проблемами являются борьба с эпизоотиями и профилактика инфекционных болезней. Здесь можно выделить два аспекта: охрана страны от проникновения возбудителей и занесения болезней и профилактика инфекционных болезней, возбудители которых еще сохранились на территории нашей страны. Первый аспект нуждается в знании мировой эпизоотической ситуации, тесном сотрудничестве с международным эпизоотическим бюро, Всемирной ветеринарной ассоциацией, Всемирной организацией здравоохранения и др. Второй аспект проблемы зависит от повседневной работы представителей ветеринарной науки и практики, также ветеринарно-биологической промышленности. Это создание и внедрение высоко специфических диагностических препаратов. Вакцин, лекарственных сывороток, биологических методов профилактики, а с другой зоогигиенические и ветеринарно-санитарные меры, постоянное обследование и прививки животных. Необходимым элементом ветеринарной технологии в промышленном животноводстве, кроме системы противоэпизоотических мероприятий, является диспансеризация, то есть возможность постоянно следить за состоянием здоровья всего поголовья. При этом нужно учитывать основные показатели общей неспецифической резистентности, обмена веществ, а также иммунобиологического состояния животных. Известно, что массовые заболевания чаще всего возникают на фоне снижения резистентности и иммунобиологического состояния животных, особенно молодняка. При высокой концентрации животных в помещении накапливается условно патогенная микрофлора, которая может преодолеть иммунобиологические барьеры даже здорового животного. Кроме того, создаются условия для селекции наиболее патогенной микрофлоры. В этом случае эффективным считается принцип «все занято – все пусто», что дает возможность провести тщательную дезинфекцию и санацию помещений. 7 Перспективной задачей промышленного животноводства является достижение гармонии между технологией и биологией. Ведь техника постоянно контактирует с живым организмом. Вместе с полноценным кормлением особое значение приобретает и микроклимат, нарушение параметров которого немедленно приводит к снижению продуктивности и к массовым болезням животных. Поэтому надежные автоматизированные системы регуляции микроклимата – важнейший элемент современных птицефабрик и свиноводческих комплексов. При несовершенной системе машинного доения маститы у коров могут приобретать массовое распространение, а неудачные конструкции пола могут привести к массовому травматизму конечностей. Профилактическую работу при этом нужно вести в двух направлениях: дальнейшее совершенствование техники, создание технологий, которые отвечают биологическим и физиологическим особенностям животных и выведения пород и линий животных, максимально адаптированных к промышленной технологии и высокой стойкостью к различным болезням. Следовательно, создание комплексных систем здравоохранения животных, являющихся органической составной новых прогрессивных технологий промышленного животноводства, - это перспективное направление развития ветеринарной медицины. В рамках биотехнологического направления микробиологической школы в птицеводческих хозяйствах разрабатывается фагодиагностика и фаготерапия сальмонеллеза, который причиняет социально-экономический ущерб (снижение яйце- носкости курнесушек, количества оплодотворенных яиц, высокая летальность эмбрионов, потеря привесов молодняка, большие затраты на диагностические и лечебно-профилактические мероприятия, возникновение пищевых токсикоинфекций). Обоснована эффективность применения бактериофагов для диагностики, профилактики и лечения сальмонеллеза кур при промышленной технологии содержания. С учетом ведущей роли в комплексе противоэпизоотических мероприятий при вирусных болезнях кур в птицеводческих хозяйствах иммунопрофилактики и недостаточной эффективности живых и инактивированных вакцин проводится поиск, применение и оценка действия иммуномодулирующих препаратов, обладающих иммунокорригирующей активностью, повышающих естественную резистентность птицы, ее устойчивость к технологиче- ским стрессам и снижающих отрицательное иммунодепрессивное действие вакцинных препаратов. Результаты исследований позволят рекомендовать для широкого применения в ветеринарной практике иммуномодуляторы прежде всего при иммунизации кур против болезни Ньюкасла и инфекционного бронхита. В настоящее время проводится изучение и внедрение биотехнологических препаратов нового поколения (альтернатива кормовым антибиотикам), в состав которых входят натуральные растительные экстракты, пробиотики, ферменты, витамины, органические кислоты и гепатопротекторы. Данные препараты обладают бактерицидным, бактериостатическим, антиоксидантным, гепатопротектным эффектом, оптимизируют состояние кишечной микрофлоры, рост симбиотической микрофлоры и усиливают иммунитет. Разумеется, усовершенствование технологий требует создания мощной материально-технической базы, приобретение высокопроизводительной техники и технических средств. Для решения актуальных проблем животноводства – повышения продуктивности и сохранности молочного и мясного скота - разработаны и внедрены методы и средства ранней 8 диагностики и профилактики болезней и лечения животных.. Созданная биохимическая лабораторная база позволяет с высокой степенью информативности оценивать метаболические процессы, состояние органов и систем животного, прогнозировать течение заболевания, стимулировать восстановительные процессы и повышение репродуктивности. На протяжении последних лет в качестве фундаментального и прикладного направлений разрабатываются клеточные технологии регуляции адаптивных и репаративных процессов жизненно важных органов и систем животных в норме, при патологических состояниях и в реабилитационном периоде. Это обусловлено необходимостью поиска новых путей усиления терапевтического потенциала клеточных технологий с целью повышения биорезистентности животных, целенаправленной коррекции деструктивных и компенсаторно-восстановительных процессов с помощью различных физических, химических и биологических воздействий на клетки донора и реципиента. Перспективные технологии являются экологически безопасными, предполагают использование различных клеточных культур, клеток пуповинной крови, фетальных и эмбриональных клеток животных, прошедших пред- трансплантационную обработку, а также биоинженерные системы – гистерезисные композитные никелидтитановые эндопротезы для изменения биоусловий регенерации органов, стимулирующие восстановление нормальных и поврежденных тканей и усиливающие биорезистентность органов, систем и организма животного. Для профилактики паразитарных болезней животных нужно применять современные и эффективные препараты. Это в основном химико-терапевтические средства. Биологические препараты (вакцины, средства диагностики) при паразитозах применяются значительно реже, однако уже есть примеры приготовления и таких средств. Эффективным является применение при паразитарных болезнях лекарственных растений, иммуностимуляторов и других препаратов. В последнее время применение иммуностимуляторов расширяется и становится все более очевидным их высокая эффективность. Внедрение современных технологий в ветеринарную визуализацию постепенно вытесняет инвазивные диагностические манипуляции. Новые менее агрессивные методы исследования позволяют достичь хорошего качества изображения без ущерба для информативности. Внедрение в клиническую практику рентгеновской компьютерной томографии и МРТ существенно расширило возможности диагностики различных поражений животных, в том числе и диагностики новообразований в печени. Перед ветеринарной наукой стоят важные задачи по дальнейшему развитию научных исследований в различных направлениях, особенно в области молекулярной биологии и генной инженерии – основ современной биотехнологии. К новым направлениям можно отнести ветеринарную иммунологию, генетику, лейкозологию и онкологию, гнотобиологию. Перспективным также считается использование ветеринарных аспектов животных, особенно в промышленном животноводстве. Современная биотехнология уже делает вклад в ветеринарную медицину. Здесь особенно ощутимым является создание генно-инженерных вакцин для профилактики болезней животных, использование моноклональных антител с диагностической и лекарственной целью, иммуноинвазионных болезней для диагностики инфекционных и инвазионных болезней с/х животных. 9 Новым подходом к созданию вакцинных препаратов является использование методов генной инженерии. Например, создание таким методом вакцин против ящура полностью предотвращает опасность занесения вируса в окружающую среду. Новые методы удешевят технологию производства вакцин и снимут проблему возможной остаточной вирулентности. Значительный прогресс ветеринарной медицины связывают с дальнейшим развитием иммунологии – науки, которая охватывает все аспекты защиты организма от генетически чужих веществ экзо- и эндогенного происхождения. Она изучает не только проблемы иммунитета при инфекционных заболеваниях. Методы контроля общего иммунного состояния животных на различных этапах технологического цикла должны стать составной частью системы профилактических мероприятий в промышленном животноводстве. Это особенно важно при оценке влияния промышленных технологий на иммунобиологический статус животных. Ведь часто желудочно-кишечные, респираторные и другие болезни развиваются на фоне различных нарушений или просто изменений условий кормления и содержания животных, которые приводят к снижению резистентности и уровня иммунобиологического состояния организма и создают благоприятные условия для действия условно патогенной микрофлоры. Использование методов ИФА и ПЦР для диагностики болезней позволяет не только определения наличия патологических микроорганизмов (бактерий, вирусов), но и для обнаружения в организме самых разнообразных веществ (гормонов, лекарственных препаратов, наркотиков и др.). Иммунологические методы должны найти более широкое использование и в селекционно-генетической работе. Перспективы открываются и перед ветеринарной генетикой, задачей которой является создание высокопродуктивных стад животных с генетически закрепленной высокой стойкостью против заболеваний, длительным сроком продуктивного использования животных. Если на сегодня учитывались только хозяйственно полезные признаки, то селекция и генетика животных должны в будущем отработать и показатели общей стойкости животных к заболеваниям. В ветеринарной медицине можно выделить три перспективных направления развития гнотобиологии: - изучение различной патологии животных, особенно инфекционного происхождения; - использование гнотобиотов при получении свободного от микрофлоры материала для научных исследований, диагностики, изготовления биопрепаратов; - использование свободных от микрофлоры животных для оздоровления животноводческих ферм от различных болезней и даже создания хозяйств со статусом свободных от патогенной микрофлоры. В условиях промышленного животноводства особое значение приобретают различные аспекты этологии – науки о поведении животных; ее изучение поможет предупредить стрессы у животных, которые снижают продуктивность, а иногда способствуют развитию различных болезней. Знание этологии дает возможность установить оптимальные размеры групп животных при беспривязном их содержании, способы кормления и тому подобное. В промышленном животноводстве наблюдать за состоянием животного практически невозможно, тем более определить температуру его тела, состояние сердечнососудистой и других систем организма. Поэтому создание высокоэффективных приборов – жизненная необходимость. 10 Широкое распространение биотехнологий в производственной практике нуждается в высококвалифицированных кадрах. В ФГБОУ ВПО «МГУПП» проводится подготовка студентов по специальности «Ветеринария». Новые технологии обучения, основанные на применении компьютеров, систем мультимедиа, аудивизуальных материалов позволяют значительно активизировать процесс овладения информацией, что способствует более глубокому усвоению студентами изучаемого материала. Преподавание дисциплин ведется на высоком профессиональном уровне с использованием достижений передовой науки и практики. В процессе обучения студенты занимаются в компьютерном классе по разработанным преподавателями программам, где они осваивают теоретические знания и проходят промежуточное тестирование по пройденному материалу. Для студентов обеспечена возможность оперативного обмена информацией с отечественными и зарубежными вузами, предприятиями и организациями, обеспечен доступ к современным профессиональным базам данных, информационным справочным и поисковым системам. Контроль знаний с использованием технических средств обеспечивает получение быстрой объективной информации о фактическом усвоении студентами материала и прививает умение и навыки работы с этими средствами. В рамках подготовки специалистов на кафедре «Ветеринарная медицина» компьютерная техника используется по всем дисциплинам, которые постоянно обновляются. Так, на кафедре, в частности, читаются новые курсы «Соматические болезни» «Дерматология», «Лабораторные методы исследования», «Инструментальные методы диагностики» и другие. Подготовлены и используются при чтении лекции электронные варианты и презентации. Это позволяет кафедре готовить специалистов, способных занять достойное место в современном рынке труда. ИЗУЧЕНИЕ РАЗВИТИЯ СКЕЛЕТА ЦЕСАРОК В ПОСТЭМБРИОНАЛЬНОМ ОНТОГЕНЕЗЕ Александрова В.А., студ. Доц. к.б.н. КуликовЕ.В., доц. к.б.н. СотниковаЕ.Д., проф., д.в.н., проф. Ватников Ю.А. Кафедра клинической ветеринарии ФГАОУ ВПО «РУДН» Выяснение закономерностей роста, развития скелета птиц, позволяет не только правильно понимать сущность всех процессов, происходящих в костях, но и целенаправленно регулировать их, обеспечивая тем самым здоровье и продуктивность птицы. Кроме этого, зная интенсивность роста тех или иных костей животных на каждой стадии их развития и реализуя соответствующий тип кормления, можно вырастить птицу желательного направления1-5. Целью работы явилось изучение структурной организации скелета цесарок в постэмбриональном онтогенезе, необходимых для ветеринарной практики при: установлении нарушений обмена веществ у цесарок; 11 ветеринарно-санитарной экспертизе костей (в установлении вида птицы, возрастной и половой групп цесарок). В зоотехнической практике изучение названных вопросов необходимы для разработки: методов повышения яичной и мясной продуктивности цесарок путем использования данных о закономерностях роста и развития костей; рационов для цесарок на основе знаний роста тканей по возрастным периодам и производственным циклам выращивания птицы. Кроме того, данный материал необходим для подготовки специалистов по биологии, ветеринарии и зоотехнии. Для реализации поставленной цели была определена задача - установить особенности развития осевого и периферического скелета цесарок белой волжской породы. Материалы и методы исследований. Материалом для исследований служили цесарки белой волжской породы в возрасте:1 сутки – вылупившаяся птица, исходный материал;60 суток – период интенсивного роста;90 суток – убойные цыплята; 180 суток – начало яйценоскости;270 суток – возраст, в котором от цесарей получают сперму, от цесарок в этом возрасте получают инкубационное яйцо; 365 суток – физиологическая зрелость. Для опытов отбиралась птица обеих полов, всего в экспериментах было задействовано 264 головы цесарок. Вся птица была клинически здоровой, средней упитанности и находилась на свободно – выгульном содержании. В костях конечностей при помощи штангенциркуля с точностью до 0,1 мм измеряли их длину, за которую мы принимали расстояние между двумя суставными поверхностями. В тех же костях, в которых имеется лишь одна суставная поверхность, длину измеряли от этой поверхности до наиболее отдаленной от нее части кости. Затем все кости взвешивали на весах ВЛТК-500 с точностью 0,01 г. Все кости раскладывали по звеньям и сравнивали с костями других домашних птиц: курицы, индейки, гуся. Изыскивали и фиксировали все анатомические и топографические особенности костей цесарок. Все образцы фотографировались. Результаты собственных исследований. Изучение осевого скелета цесарок складывалось из изучения его массы и исследования отдельных костей и звеньев. В целом по линейным промерам и массе всех отделов осевого скелета цесари превосходят цесарок. В период с 1 до 60-суточного возраста абсолютная масса осевого скелета цесарей увеличивается в 16,6 раз, в абсолютном выражении на 22,04 г. В период 60-90-суточного возраста эти показатели равны1,39 раз и на 4,79 г., соответственно. У цесарок эти показатели следующие: в период 1-60-суточного возраста – в 13,9 раз и на 18,94 г.; в период 60-90суточного возраста эти показатели равны 1,28 раз и 5,8 г., соответственно (р<0,05). Наиболее интенсивный рост осевого скелета приходится на период от 1 до 60суточного возраста (максимальная интенсивность роста) и на период от 90 до 180-суточного возраста. В период от 90 до 180-суточного возраста абсолютная масса осевого скелета у цесарей увеличивается на 188,4%, в абсолютных единицах на 25,05 г. У цесарок это показатель несколько выше и составляет – 191,3% и 23,91 г. В период с 180 до 365-суточного возраста интенсивность роста осевого скелета цесарок уменьшается. Как видно из рисунка 1 интенсивность роста у цесарок много ниже, чем у цесарей – по привесу костной ткани явно лидируют цесари. Абсолютная масса осевого скелета у цесарей в возрасте 270 суток 12 превышает таковую у цесарок на 15,6%, в абсолютных величинах – на 8,28 г.; а в возрасте 365 суток эти показатели равны – 17,6% и 10,2 г., соответственно. Рассматривая динамику относительной массы осевого скелета цесарок к абсолютной массе скелета следует отметить, что имеются явные различия по данному показателю между цесарями и цесарками. До полового созревания птицы (180 суток) относительная масса осевого скелета цесарей выше, чем таковой показатель у цесарок. Но к 180-суточному возрасту цесарки догоняют по этому показателю цесарей, а затем и превышают его. Данная разница сохраняется до 365-суточного возраста птицы. В возрасте 180 суток относительная масса осевого скелета цесарок больше таковой у цесарей – на 1,36%, в возрасте 270 суток – на 2,48% и в возрасте 365 суток – на 2,89% в абсолютном выражении (р<0,05). Эти расхождения связаны в первую очередь с тем, что у цесарей идет интенсивный прирост мышечной массы, а у цесарок – интенсивнее растут внутренние органы и идет накопление жировой ткани. Исследование периферического скелета проводилось с изучением скелета поясов. Анализ данных, касающихся динамики абсолютной массы периферического скелета позволяет сделать вывод, что наиболее интенсивный рост периферического скелета у птицы обоих полов наблюдается в два периода: с 1 до 60-суточного возраста (абсолютная масса у цесарей увеличивается в 17,45 раз и на 42,69 г. в абсолютных значениях, а у цесарок эти показатели равны – 15,65 раз и 57,74 г. соответственно) и с 90 до 180-суточного возраста (абсолютная масса у цесарей увеличивается на 60,8% и на 52 г. в абсолютных значениях, а у цесарок эти показатели равны 97,5%и 68 г. соответственно). После 180-суточного возраста у птицы обоих полов наблюдается замедление интенсивности роста, причем интенсивность роста сглаживается и к возрасту т365 суток достоверных различий в интенсивности роста птицы нами не выявлено (р>0,05). И, наоборот, до 180-суточного возраста большей интенсивностью роста периферического скелета отличаются цесарки: до указанного возраста они имеют наибольший привес костной ткани и до полового созревания практически заканчивают формирование основных звеньев периферического скелета, тогда как после 180-суточного возраста интенсивность роста периферического скелета у них снижается и на первое место выходит интенсивный рост осевого скелета, что очень важно для будущей яйценоскости. Необходимо отметить, что при рассмотрении возрастных изменений абсолютной массы периферического скелета, мы наблюдаем практическое повторение кривых осевого скелета, за исключением вышеуказанных особенностей. По отношению к абсолютной массе скелета периферический скелет имеет стабильную величину у цесарей до 365-суточного возраста, у цесарок – до 180-суточного возраста. Это, по-видимому, обуславливается продолжительным ростом мышечной ткани у цесарей и ростом внутренних органов и накоплением жира у цесарок. Возрастные изменения относительной массы периферического скелета в целом имеют закономерность при сравнении с осевым скелетом. За изучаемый период (от 1-суточного возраста) абсолютная масса скелета увеличивается у птиц обоих полов. Интенсивный рост мышечной ткани и внутренних органов с период с 60 до 90-суточного возраста приводит к довольно резкому падению относительной величины массы скелета, которое после 180суточного возраста стабилизируется. Выводы. Сообщая и анализируя приведенный материал по макроморфологическому строению осевого и периферического скелета у цесарок можно сделать следующее резюме. 13 При изучении динамики роста и развития осевого и периферического отделов скелета цесарок установлено, что эти процессы происходят в тесной взаимосвязи с ростом живой массы и скелета цесарок в целом. У цесарей в постэмбриональном онтогенезе относительная масса осевого скелета к абсолютной массе скелета уменьшается – с 27,17% (в суточном возрасте) до 26,19% (в возрасте 365 суток), в то время как у цесарок данный показатель увеличивается - с 25,46% (в суточном возрасте) до 29,08% (в возрасте 365 суток). По аналогичному показателю периферического скелета наблюдается обратная картина. Это связано с яичной продуктивностью у цесарок (интенсивнее растет осевой отдел скелета) и с мясной продуктивностью у цесарей (интенсивнее растет периферический отдел скелета). Результаты изучения массы осевого и периферического скелета показали, что у 1-, 60-, 90-суточных цесарок обеих полов наибольшую абсолютную массу имеет скелет тазовой конечности, затем скелет грудной конечности, позвоночный столб и череп. У 180-, 270-, и 365-суточной птицы наибольшую абсолютную массу также имеет скелет тазовой конечности, а затем следует позвоночный столб, скелет грудной конечности и череп. До возраста 90 суток по показателю абсолютной и относительной массы осевого скелета лидируют цесари (р<0,05). К половому созреванию у цесарок наблюдается резкое усиление, а у цесарей наоборот замедление роста осевого скелета. По отношению к живой массе, начиная со 180-суточного возраста, у цесарок обеих полов масса периферического скелета имеет стабильную величину. Это обуславливается интенсивным ростом мышечной ткани у цесарей и внутренних органов, а также накоплением жира у цесарок. Наиболее интенсивно осевой и периферический отделы скелета растут в 2 периода: 160 суток и 90-180 суток. Половой диморфизм по массе отделов скелета выражен на протяжении всего онтогенеза (р<0,05). Список литературы: 1. Куликов Е.В., Петряева А.В., Селезнев С.Б. Динамика живой массы цесарок белой волжской породы / Инновационные процессы в АПК: Сб. статей. М.: РУДН, 2013. С. 159-161. 2. Куликов Е.В., Ролдугина Н.П., Загайнова Е.И. Особенности гистологического строения костной ткани у цесарок белой волжской породы / Вестник российского университета дружбы народов. Серия% Агрономия и животноводство. М.: РУДН, 2007. № 12. С. 100-106. 3. Куликов Е.В., Селезнев С.Б., Ветошкина Г.А. Морфологические особенности строения скелета цесарок белой волжской породы / Теоретические и прикладные проблемы агропромышленного комплекса, 2014. № 2 (19). С. 27-30. 4. Мыслович Н.А., Куликов Е.В., Матюха М.С. Особенности роста периферического скелета цесарок белой волжской породы / Инновационные процессы в АПК: Сб. статей. М.: РУДН, 2013. С. 169-171. 5. Сельманович Л.А., Мацинович А.А. Морфология шейного отдела позвоночного столба цыплят-бройлеров кроссов «КОББ-500» и «РОСС-308» в постнатальном онтогенезе / Ученые записки учреждения образования «Витебская ордена «Знак почета» Государственная академия ветеринарной медицины», 2012. Т. 48. № 2-2. С. 157-160. 14 ЭТИКА В ВЕТЕРИНАРИИ Ананьев Л.Ю., асп. Доц., канд. вет. наук Крюковская Г.М. Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» Сегодня актуальным является повышение значения этических аспектов науки, ускорение научно-технического прогресса, превращение научной профессии в массовую, усиление роли коллективных форм трудовой деятельности в ветеринарии. В результате становится необходимым освещение различных вопросов этики ученых как своеобразной профессиональной группы, вторую сегодня привлекаются и студенты. Для них проведение научных исследований – это неотъемлемая составляющая учебного процесса, путь к самостоятельному познанию истины и проверка способности к разрешению различных вопросов проблемного характера. Как указывал академик К.И. Скрябин, по количеству объектов изучения, а также по своей глубине ветеринарная медицина представляет собой самое интересное звено человеческой жизни. Ведь нет другой науки, которая бы исследовала и предохраняла от болезней такое большое количество представителей животного мира. Ветеринарную медицину тревожит также судьба мелких домашних животных, редких и экзотических животных зоопарков, различных лабораторных животных, которых она защищает, беспокоится за состояние их здоровья. Вот почему в последнее время так расширился и углубился теоретический арсенал современной ветеринарной медицины. Биоэтика - направление, рассматривающее моральные проблемы в новейших областях медицины, связанные с принятием решений относительно здоровья и продолжения жизни [1]. Биоэтика рассматривает этичность поведения человека по отношению к животным; это направление некоторые зарубежные авторы называют "биологическая" биоэтика". Другое направление биоэтики - этика отношения к человеческим существам; в этом плане биоэтика смыкается с медицинской этикой - деонтологией. В последнее время биомедицинские исследования становятся чрезвычайно важными, необходимыми и экономически востребованными в связи с появлением новых лекарственных препаратов, технологий, приборов и диагностических процедур. Причѐм, если раньше защита прав испытуемых при разработке лекарств, процедур, методов лечения или диагностики рассматривалась как защита целостной личности (индивидуума), то теперь уже стало очевидным, что уважение к правам исследуемого подразумевает уважение, как к биологическому материалу, так и к персональным данным. Всѐ чаще появляется беспокойство широких слоев общественности о возможных социальных, психологических и материальных последствиях полученной в этих исследованиях информации. Вопрос о том, что отношение к животным может и должно быть этичным, был окончательно решен сравнительно недавно. В течение многих веков царило мнение о том, что только человек представляет ценность как живое существо и имеет право использовать произвольно любые объекты живой и неживой природы. Не смотря на то, что животные широко используются в биомедицинских исследованиях, вопрос о допустимости этого продолжает дискутироваться. Среди 15 противников экспериментов на животных можно встретить не только активистов защитников животных, но и философов, биологов, ветеринаров и медиков. Антропоцентрический подход к оценке животного в течение многих веков заставлял человека воспринимать животное через призму его полезности для людей. Даже если речь не шла о пользе животного, как продукта питания, исходного сырья для одежды или биологической модели в экспериментах, а говорилось об узах привязанности между человеком и животным или о сострадании к животному, - ситуация рассматривалась только с точки зрения пользы для человека. Указывалось, что животные ценны для нас тем, что скрашивают одиночество, помогают сохранить здоровье, благоприятно влияют на нервную систему, помогают воспитывать детей отзывчивыми. Ни слова не говорилось о том, что извлекают животные из контактов с человеком, легко ли им дается роль объекта милосердия со стороны детей, тем более роль живой игрушки. Наука решила вопрос о том, что животные могут чувствовать, думать, общаться друг с другом и с человеком. Наиболее близко стоящие к человеку виды обезьян - антропоиды умеют не только разговаривать с помощью системы сигналов типа азбуки глухонемых, но могут заниматься искусством - рисовать. Наблюдения этологов показали сложность психики животных, их способность к глубоким эмоциям и даже наличие у них альтруистического поведения [2]. В 1822 г. в Великобритании впервые в мире был принят закон против жестокого обращения с домашними животными. В 1824 г. в Великобритании начало свою работу первое в мире общество по защите животных, которое активно работает и в настоящее время - это Королевское общество защиты животных, находящееся под покровительством королевы Великобритании. К концу века общества по защите животных и законы, защищающие животных от жестокостей, были созданы во многих развитых странах мира. В документах Всемирного общества защиты животных указывается, что животные это чувствующие существа и, как таковые, имеют потребности. Если потребности животных, в целом, аналогичны потребностям человека: питаться, размножаться, трудиться, играть, общаться с себе подобными, - то, очевидно, они также должны быть удовлетворены. Человек всегда считал своей привилегией наличие у него потребностей и своим правом - их удовлетворение. В XX веке Альберт Швейцер (1875-1965) [4] основал новую универсальную этику этику "благоговения перед жизнью". А. Швейцер распространил моральный статус на все живое на Земле, на все формы жизни, считая, что инстинкт самосохранения, стремления жить заслуживает глубокого уважения независимо от того, человек ли это или одноклеточное существо. "Те люди, которые проводят эксперименты над животными, связанные с разработкой новых операций или с применением новых медикаментов, те, которые прививают животным болезни, чтобы использовать затем полученные результаты для лечения людей, никогда не должны вообще успокаивать себя тем, что их жестокие действия преследуют благородные цели. В каждом отдельном случае они должны взвесить, существует ли в действительности необходимость приносить это животное в жертву человечеству. Они должны быть постоянно обеспокоены тем, чтобы ослабить боль, насколько это возможно. Как часто еще кощунствуют в научно-исследовательских институтах, не применяя наркоза, чтобы избавить себя от лишних хлопот и сэкономить время! Как много делаем мы еще зла, когда подвергаем животных ужасным мукам, чтобы 16 продемонстрировать студентам и без того хорошо известные явления!". Так писал А. Швейцер в книге "Культура и этика", вышедшей в 1923 г. [5]. Сегодня актуальным является повышение значения этических аспектов науки, ускорение научно-технического прогресса, превращение научной профессии в массовую, усиление роли коллективных форм трудовой деятельности в науке. В результате становится необходимым освещение различных вопросов этики ученых как своеобразной профессиональной группы. Для них проведение научных исследований - это неотъемлемая составляющая учебного процесса, путь к самостоятельному познанию истины и проверка способности к разрешению различных вопросов проблемного характера Профессиональная этика в сфере науки требует высокой оценки роли науки в жизни общества. Профессиональный этос ученого неразрывно связан с мировоззрением, общественной моралью, необходимостью отстаивать истину и добиваться использования научных достижений на благо, а не на зло людям. Требования этики науки редко формулируются в виде кодексов, как правило, они усваиваются каждым ученым в процессе его профессиональной подготовки и деятельности. Они охватывают различные виды деятельности ученых, подготовку и проведение исследований, публикацию полученных результатов, проведение научных дискуссий, экспертизу полученных коллегой данных. В современной науке особую остроту приобрели этические проблемы взаимоотношений науки и ученого с обществом, то есть социальная ответственность ученого. Для этого, чтобы заниматься научной деятельностью, необходима моральная санкция со стороны общества. поэтому вопросы о моральном оправдании и обосновании таких занятий обсуждаются постоянно. Но в эпоху научно-технической революции науки и масштабов ее социальных эффектов, проблемы ответственности ученого перед обществом особенно заострились и наполнились новым содержанием. Социальная ответственность ученого на современном этапе научного прогресса выражается, в первую очередь, в стремлении предвидеть нежелательные для человека и человечества последствия, потенциально заложенные в результатах его исследований, а также в информировании общественности о возможности такого рода последствий и путях их предупреждения. Этика в науке – это система моральных требований, норм и правил, которые регулируют взаимоотношения в действиях ученых, поощрения и морального наказания. В процессе развития науки этика постоянно меняется. Вместе с тем для нее характерна преемственность, сохранение ключевых этических ценностей. В нормах этики науки воплощены, в первую очередь. Общечеловеческие моральные требования и запреты, конкретизированы особенности научной деятельности. Так, плагиатора можно квалифицировать как нарушителя заповеди «не кради», а фальсификатора, умышленно искажающего данные эксперимента, - заповеди «не обманывай». Кроме того, этические нормы науки служат для утверждения и защиты специфических ценностей ее самой. Первая среди них – бескорыстный поиск и отстаивание истины. И поскольку не всегда удается оценить истинность полученных данных, нормы этики не требуют, чтобы результат каждого исследования обязательно давал истинные знания. Достаточно, чтобы этот результат был новым, обоснованным. Научные достижения были бы невозможными без взаимного доверия между теми, кто в этой деятельности участвует. Поэтому нарушения норм научной этики закономерно 17 нуждаются в моральных санкциях со стороны научного содружества, которые могут быть, слишком ощутимыми для нарушителя вплоть до исключения его из научного коллектива. Список литературы: 1. Байбурин А.К. Топорков А.Л. У истоков этики. - Л., 1990 2. Фрайер Ф.Г. Картина жизни. - М.: Наука, 2006, с.54. 3. Гусейнов А.А. Великие моралисты. М.: "Республика", 1995. 4. Швейцер А. Упадок и возрождение культуры. Избранное. М.: Прометей, 1993. АКТУАЛЬНЫЕ АСПЕКТЫ ИСКУССТВЕННОГО РАЗВЕДЕНИЯ ФАЗАНОВ Ананьев Л.Ю., асп., Герасимов А.Е., студ. доц., канд. вет. наук Боев В.И. Журавлева И.А. Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» Освоение территорий, интенсификация сельского хозяйства ослабляют воспроизводство пернатой дичи, что приводит к сокращению ее численности. В густонаселенных районах стали редкими глухарь, тетерев, серая куропатка, дикий перепел и многие другие охотничьи виды. В современных условиях развитие охотничьего хозяйства вызывает необходимость использования новых систем его ведения, обеспечивающих интенсификацию отрасли природопользования. Одной из таких систем является искусственное дичеразведение и, в частности искусственное разведение фазанов. С помощью этого приема, возможно, насыщать дичью охотничьи угодья к началу сезона охоты. Фазановодство, как особая отрасль птицеводства существует давно и с каждым годом находит все более широкое распространение, как за рубежом, так и в охотничьих хозяйствах нашей страны. В настоящее время охотничий фазан является наиболее популярным объектом дичеразведения во всем мире (ежегодные выпуски этой птицы достигают 50 млн. голов). Он распространен во многих странах мира: США, Канаде, Австралии, Новой Зеландии и др. Для удовлетворения потребности охотников-спортсменов выпуски дичи должны быть ежегодными, а их количество – достаточно большим. Отсюда возникает необходимость создания крупных дичеферм, которые не могут функционировать без применения промышленной технологии, обеспечивающей наивысшие показатели при наименьших затратах. Охотничий фазан за границей и в России – не только объект увлекательной охоты, но и источник ценного диетического мяса. В зарубежных странах эту птицу широко используют в гастрономических целях, особенно в странах с развитым мясным птицеводством – США, Канаде, Великобритании, Франции и др. Тенденция разведения фазанов связана с относительным насыщением рынка цыплятами-бройлерами и индейками, а также ухудшением качества мяса домашней птицы из-за интенсификации промышленного производства. 18 Успех использования искусственного разведения фазанов в охотничьем хозяйстве зависит от правильного, научнообоснованного подхода при решении каждого раздела этого комплексного приема: содержания, кормления, разведения на фермах. Продуктивность одной самки охотничьего фазана в средней полосе России составляет около 50 яиц за сезон, а выведение на каждую самку 10 фазанят за год считается удовлетворительным результатом работы дичепитомника. В средней полосе России продуктивный период у охотничьего фазана начинается только в конце марта - начале апреля. Несмотря на то, что период яйцекладки у фазанок продолжается до первой половины августа, последняя партия яиц должны закладываться в инкубатор 10-15 июня, т.к. фазанята, полученные в июле-августе не успевают вырасти, сформироваться и приобрести взрослое оперение не только к началу осенней охоты на пернатую дичь, но и к зиме. Вынужденная передержка, полученного в поздние сроки поголовья, приводит к значительному увеличению затрат на содержание птицы в зимний период. Что снижает экономическую эффективность искусственного разведения фазанов, делая эту отрасль зачастую убыточной. В связи с изложенным поиск наиболее действенных, наименее трудоемких способов повышения эффективности работы дичеферм в условиях искусственного разведения фазанов на территории Европейской части России является актуальным. ИЗУЧЕНИЕ ВИДОВОГО СОСТАВА И ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТИ К АНТИБИОТИКАМ БАКТЕРИЙ, ВЫДЕЛЕННЫХ ПРИ ДИСБАКТЕРИОЗАХ КИШЕЧНИКА МОЛОДНЯКА СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ Антонова А.Н., асп. Научный руководитель: проф., д.в.н. Ленченко Е.М. Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» При содержании на ограниченных площадях, искусственный микроклимат, поточная система выращивания сельскохозяйственных животных, в том числе, птиц обусловливают развитие и распространение возбудителей инфекционных болезней, характеризующихся множественной антибиотикорезистентностью [1, 2, 4]. Из числа изолятов, выделенных при гастроэнтеритах молодняка животных, энтеробактерии составляли 21,0-57,6 % [4, 5]. В 2012 г наибольшее количество положительных результатов исследований на сальмонеллез было зарегистровано по птице (54%), крупному рогатому скоту (18,0 %) и свиньям (18,0 %). Учитывая, что резистентные варианты микроорганизмов, как правило, распространены при циклическом ведении птицеводства, животноводства, то есть в относительно обособленных объектах, для оптимизации схемы бактериологической диагностики целесообразным является изучение видового состава и изыскание эффективных методов изучения чувствительности к антибиотикам микроорганизмов, выделенных при дисбактериозах кишечника молодняка сельскохозяйственных животных. Целью работы явилось изучение видового состава патогенных и условно-патогенных бактерий, циркулирующих животноводческих хозяйствах при болезнях органов пищеварения 19 поросят и цыплят. Объектом исследования явились поросята пород «Ландрас», «Дюрок», «Пьетрен» 10-, 20-, 30-ти суточного возраста постинкубационного онтогенеза, цыплята породы «Белый леггрон» 5-, 10-, 15-ти суточного возраста постинкубационного онтогенеза. Диагноз на наличие болезней, вызываемых патогенными энтеробактериями, устанавливали на основании бактериологических исследований, учитывая эпизоотические, клиникоморфологические данные, в соответствии с «Методическими указаниями по диагностике сальмонеллеза человека и животных, обнаружению сальмонелл в кормах, продуктах питания и объектах внешней среды» (М., 1996), «Методическими указаниями по бактериологической диагностике смешанной кишечной инфекции молодняка животных, вызываемой патогенными энтеробактериями» (М., 1999), «Методическими указаниями по бактериологической диагностике колибактериоза (эшерихиоза) животных», (М., 2000). Для исследования чувствительности микроорганизмов к антибиотикам были использованы паспортизированные штаммы: E. coli О1:K99; E. coli О2:K88; E. coli О1:F41; Klebsiella pneumoniae № 24; Salmonella enteritidis № 204; Proteus vulgaris Н2091; Yersinia enterocolitica Sи R-формы №383 (Онищенко И.С., 2008, Смирнов А.М., 2012). При изучении чувствительности микроорганизмов к антибиотикам использовали методы диффузии в агар и методы серийных разведений [4, 5]. При ретроспективном анализе этиологической структуры болезней молодняка животных в соответствии с первичными данными: «Отчет о заразных болезнях животных» форма 1-вет; «Отчет о противоэпизоотических мероприятиях» форма 1-вет А; «Отчет о незаразных болезнях животных» форма 2-вет, болезни органов пищеварения составляли 51,7–72,6 %, у молодняка до 6 месяцев – 52,7-83,4 %. При болезнях органов пищеварения молодняка животных клинические признаки характеризовались диареей, проявляющейся выделением жидких фекалий серовато-белого или желто-серого цвета с пузырьками газа или примесью слизи, потерей аппетита, слабостью, адинамией, нарушением сердечной деятельности, учащенным дыханием, интоксикацией. Поражение центральной нервной системы характеризовалось судорогами, парезами, параличами конечностей, депрессией, сменяющейся возбуждением. При затяжном течении инфекции развивалось обезвоживание и истощение, серозно-катаральные или серозно-гнойные истечения из носовых полостей, кашель, конъюнктивит, артрит. При патологоанатомическом исследовании на эпи- и эндокарде в области клапанов точечные и пятнистые кровоизлияния. Легкие имели мраморный рисунок с наличием лобулярной пневмонии, в бронхах и трахее пенистый экссудат. В почках под капсулой точечные кровоизлияния, четкой границы между корковым и мозговым слоем не наблюдалось. Поражения органов пищеварения характеризовались катаральным или катарально-геморрагическим гастроэнтеритом с наличием кровоизлияний на слизистой оболочке тонкого и толстого отделов кишечника; мезентериальные лимфатические узлы увеличены, на разрезе сочные, красного или вишневого цвета. Брыжейка толстого отдела кишечника отечная, кровеносные сосуды инъецированы. В брюшной полости содержался серозный экссудат светло-желтого цвет с примесью крови. Печень имела глинистый цвет, пульпа органа на разрезе дряблой консистенции. Селезенка с утолщенными краями, увеличена, с точечными кровоизлияниями под капсулой. При проведении бактериологических исследований содержимого кишечника молодняка животных для первичной идентификации родов семейства Enterobacteriaceae учитывали отношение количества идентифицированных культур микроорганизмов от общего 20 числа типичных для вида колоний, выросших на средах: «Эндо», «Левина», «Висмут сульфит агар» – «ВСА», «Дезоксихолат-цитратный агар с лактозой и сахарозой» («Deoxycholate Citrate Lactose Sucrose agar» – «DCLS agar»); «Бриллиантовый зеленый агар» («Brilliant green agar» – «Brilliant agar»); «Триптоно-желчный-X-глюкуронидный агар» («Tryptone bile XGlucoronidae medium agar» – «TBX agar»). При видовой идентификации типичных для семейства Enterobacteriaceae изолированных колоний, исследовали морфологические и тинкториальные свойства микроорганизмов. При наличии грамотрицательных палочек оксидазаотрицательные, каталазаположительные культуры микроорганизмов пересевали в пробирки со скошенным МПА для изучения ферментативных свойств. При количественном учете бактерий в микробиоценозах кишечника поросят с синдромом желудочно-кишечных болезней (опыт) количество энтеробактерий составило 19,04 ± 0,38 КОЕ lg/г – опыт, 16,9+0,4 КОЕ lg/г – контроль. При исследовании проб feces поросят с синдромом острых желудочно-кишечных заболеваний доминировали культуры микроорганизмов, отнесенные к видам: Salmonella typhimurium – 12,8%, Salmonella enteritidis – 10,7%, Staphylococcus aureus – 11,8%, Enterococcus faecalis – 10,7%, Proteus vulgaris – 7,9%, Enterococus faecium – 4,9%. Количество энтеробактерий в микробиоценозах кишечника цыплят при желудочно кишечных болезнях составило 5,84 ± 0,15 КОЕ lg/г – опыт, 7,07 ±0,21 КОЕ lg/г – контроль. При идентификации изолятов, выделенных при болезнях органов пищеварения цыплят, культуры микроорганизмов были отнесены к видам: Esherichia coli – 52,4%; K. pneumoniae – 25,2%; P. vulgaris – 20,0%. Следующим этапом исследования являлось изучение чувствительности к антибактериальным препаратам микроорганизмов, выделенных из содержимого кишечника молодняка сельскохозяйственных животных. При изучении чувствительности к антибиотикам для приготовления суспензии использовали чистую суточную культуру микроорганизмов, выросших на плотных питательных средах. При использовании метода дисков исследуемую культуру микроорганизмов (1,5 х 108 КОЕ/мл) высевали на поверхность чашки Петри с питательной средой в объеме 1-2 мл, через 15 мин наносили диски с антибиотиками, культивировали при температуре 35 °С в течение 24 ч. Результаты учитывали, измеряя диаметр зон задержки роста в миллиметрах вокруг колоний исследуемых культур микроорганизмов. Метод позволяет определять чувствительность исследуемой культуры микроорганизмов к нескольким антибиотикам одновременно. К недостаткам можно отнести невозможность применения метода в случае, если антибиотики слабо диффундируют в агар (аминогликозиды). При определении чувствительности микроорганизмов к антибиотикам с помощью «Е-теста» использовали полоску, содержащую градиент концентраций антибиотика от максимальной к минимальной. В месте пересечения эллипсовидной зоны подавления роста с полоской «Е-тест» получали значение минимальной подавляющей концентрации (МПК). Для определения чувствительности микроорганизмов к антибиотикам макрометодом серийных разведений 0,5 мл рабочего раствор антибиотика вносили в пробирку, содержащую 0,5 мл 0,7 %-ного МПА. Процедуру повторяли для приготовления ряда необходимых разведений. Для инокуляции использовали взвесь микроорганизмов – 106 КОЕ, по 0,1 мл каждого разведения высевали в чашки Петри на поверхность плотной питательной среды, культивировали при 35 °С в течение 24 ч. Минимальную подавляющую концентрация (МПК) определяли по наименьшей концентрации антибактериального 21 препарата, подавляющей видимый рост микроорганизма. При использовании микрометода исследуемую культуру микроорганизмов (106 КОЕ) вносили в лунки планшета, содержащие антибиотики, культивировали при 35 °С в течение 24 ч. Учет результатов проводили спектрофотометрически, сравнивая рост микроорганизмов в лунке, содержащей антибиотик, с отрицательным контролем. Преимуществом микрометода является высокая производительность и возможность длительного хранения планшет. При использовании метода серийных разведений в агаре исследуемую культуру микроорганизмов (104 КОЕ) высевали на чашки Петри с агаром, содержащим последовательные разведения антибиотика. Параллельно для контроля роста производили посев на агар, не содержащий антибиотики, культивировали при 35 °С в течение 24 ч, затем определяли МПК препарата. При изучении чувствительности к антибиотикам установлено, что референтные штаммы микроорганизмов изученного семейства были чувствительными и умеренно чувствительными к антибиотикам группы аминогликозидов (амикацин, канамицин, неомицин, тобрамицин), фторхинолонов (байтрил, пефлоксацин, офлоксацин, ципрофлоксацин, энрофлон), к группе макролидов (эритромицин, олеандомицин). Отмечено, что характерной особенностью изученных культур микроорганизмов явилась резистентность к β-лактамным антибиотикам группы природных пенициллинов (ампицилин, бензилпенициллин, карбенициллин, оксациллин). При изучении чувствительности к антибиотикам штаммов энтеробактерий, выделенных при болезнях органов пищеварения поросят и цыплят, установили, что к антибиотикам группы цефалоспоринов (цефазолин, цефотаксим) были резистентными 18,2 % культур микроорганизмов Salmonella enteritidis; 15,2 % – Escherichia coli; 15,4 % – Klebsiella pneumoniae; 8,9 % – Proteus vulgaris; 9,7 % – Yersinia enterocolitica. Механизмом устойчивости микроорганизмов к β-лактамам является ферментативная инактивация в результате гидролиза одной из связей β-лактамного кольца ферментами β-лактамазами, локализация кодирующих генов плазмидная или хромосомная) определяет эпизоотическую значимость резистентности [6-9]. По данным литературы в результате мутаций возможна полная или частичная утрата поринов, приводящая к снижению чувствительности к β-лактамам, снижение проницаемости за счет утраты или снижения количества пориновых белков встречается в ассоциации с продукцией β-лактамаз расширенного спектра, что приводит к формированию устойчивости одновременно к нескольким группам антибиотиков [9-11]. В частности, множественная устойчивость к антибиотикам E. coli O157:H7 установлена в отношении к β-лактамам, левомицетину, тетрациклину бисептолу, стрептомицину, гентамицину [3]. При наличии предрасполагающих особенностей физиологического, иммунологического статуса молодняка животных, обильное накопление во внешней среде, повышение вирулентности микроорганизмов, вследствие многократных пассажей через восприимчивый организм, на фоне применения слабоиммуногенных антигенов, при неполной иммунологической перестройке, сенсибилизации наблюдается атипическое проявление эпизоотических, клинических и морфологических признаков болезней [10]. Вариабельность факторов вирулентности, возникновение устойчивых форм бактерий за счет наличия плазмид резистентности значительно осложняют дифференциальную диагностику болезней молодняка сельскохозяйственных животных, снижают эффективность антибактериальных препаратов и обусловливают целесообразность разработки вакцин, обладающих высокой антигенной и иммуногенной активностью с широким спектром защитного действия. 22 На основе результатов собственных исследований и анализа данных литературы сделано заключение, что из числа апробированных методов наиболее результативными и перспективными являлись методики с применением «Е-теста» и серийных разведений в 0,7 %-ном растворе МПА, позволяющие определять чувствительность микроорганизмов, относящихся к разным систематическим группам, минимальную подавляющую концентрацию антибиотиков, проводить оценку степени чувствительности к антибиотикам, сократить расход питательных сред, стерильной бактериологической посуды и времени проведения анализа. Современные методологические подходы мониторинга распространения антибиотикорезистентности позволяют выявить молекулярные механизмы эволюции и распространения устойчивых к действию антибиотиков микроорганизмов. Список литературы: 1. Ленченко Е.М. Фагоцитарная активность клеток крови поросят при взаимодействии с патогенными бактериями / Е.М. Ленченко Е.А. Волкова, В.С. Сускова // Ветеринария. – 2011. – №4. – С.27-31. 2. Максимов Г.В. Естественная резистентность свиней в условиях промышленной технологии выращивания / Г.В, Максимов, О.Н. Полозюк, Е.И. Федюк, Е.А. Крыштоп // Ветеринария. – 2010. – №9. – С. 43-48. 3. Светоч Э.А. Чувствительность Esherichia coli O157:H7, возбудителя геморрагического колита, к антибактериальным преапаратам // Э.А. Светоч, Ю.Г. Степаншин, И.Н. Манзенюк, А.В. Степанов, М.В. Храмов, С.Ю. Рудницкий, В.Н. Борзенков, Б.В. Ерусланов, Т.С. Шобухова, А.Г Лобковский, С.В. Безобразова, Т.А. Попова // Антибиотики и химиотерапия. – 1998. – №11. – С.16-20. 4. Смирнов А.М. Ветеринарно-санитарные и зоогигиенические мероприятия в свиноводстве / А.М. Смирнов, В.Г. Тюрин // Ветеринария. – 2012. – № 9. – С.3-7. 5. Тамбиев Т.С. Ассоциативные желудочно-кишечные инфекции молодняка: автореф. дис. канд. вет. наук / Т.С. Тамбиев. – пос. Персиановский. – 2012. –22 с. 6. Berghaus R.D. Enumeration of Salmonella and Campylobacter in Environmental Farm Samples and Processing Plant Carcass Rinses from Commercial Broiler Chicken Flocks / R.D. Berghaus, S.G. Thayer, B.F. Law // Applied and Environmental Microbiolog. – 2013. 7. Carmichael W.J. Variations in furrows with special reference to the birth weight of pigs. / W.J. Carmichael, J.B. Rice // 111. Ag. Exp. Sta. Bull. 2000.– vol 99.-p. 226. 8. Pasmans F. Modulation of interactions of Salmonella typhimurium with pigs bystress and T-2 toxin / F. Pasmans, S. Croubels, F. Haesebrouck // Faculty of Veterinary Medicine, Ghent University, Ghent. – 2012. – P. 11-169. 9. Singh I., Virdi J.S. Production of Yersinia stable toxin (YST) and distribution of yst genes in biotype 1A strains of Yersinia enterocolitica // J. Med. Microb. — 2004. — N 53. — P. 1065-1068. 10. Tennant S.M., Grant T.H., Robins-Browne R.M. Pathogenicity of Yersinia enterocolitica biotype 1A // FEMS Immun. Med. Microb. — 2003. — N 38. — P. 127-137. 11. Westermark Linda. Yersinia-phagocyte interactions during early infection / Westermark Linda// Umea Center for Microbial Research, Umea. – 2013. – P. 1-60. 23 БОЛЕЗНИ НАРУШЕНИЯ ОБМЕНА ВЕЩЕСТВ В ОБЩЕЙ ПАТОЛОГИИ ПРОДУКТИВНЫХ ЖИВОТНЫХ Боев В.И., к.б.н., доцент Ананьев Л.Ю. , аспирант Сушкова З.Р. аспирант Кафедра « Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» Исследователи, изучающие патологию животных Жаров А.В., Кондрахин И.П., Луцкий Д.Я., Николаев В.И., Таранов М.Т., Уразаев Н.А., Шарабрин И.Г. и др. высказывают различные мнения о причинах болезней сельскохозяйственных животных. Однако, большинство из них едины во мнении о том, что в настоящее время незаразные болезни сельскохозяйственных животных занимают 94-97% в общей их патологии. Согласно наблюдениям многих учѐных, в молочном и мясном скотоводстве РФ, Западной Европы и Америки среди незаразных болезней преобладающее место занимают болезни обмена веществ. Исследователи считают, что экономическое значение болезней нарушения обмена веществ в РФ и других странах мира обусловлено частотой проявления, а также высоким удельным весом в общих потерях животноводства, который по основным видам сельскохозяйственных животных в промышленных условиях производства составляет около 90%. Установлено, что к наиболее важным в экономическом отношении нарушениям обмена у крупного рогатого скота в современных промышленных условиях производства, относятся метаболический ацидоз, кетоз, родильный парез, гипофосфоремическая болезнь коров, остеомаляция, остеопороз, гемоглобинурия, гипомагниемия, метгемоглобинемия, печѐночная кома, а также болезни связанные с недостатком в рационах витаминов и микроэлементов. По литературным данным метаболический ацидоз занимает ведущее место среди заболеваний обмена веществ у крупного рогатого скота в зимний стойловый период. В некоторых хозяйствах Московской области диагностируется у 42,3-53,4% лактирующих коров. Существует мнение, что при интенсивном развитии молочного животноводства среди проблем борьбы с незаразными болезнями крупного рогатого скота, исключительно актуальной, является профилактика кетоза. Это преимущественно хроническая болезнь, сопровождающаяся накоплением в организме кетоновых тел (бета-оксимасляной, ацетоуксусной кислот и ацетона), поражением вследствие этого гипофиз-надпочечниковой системы, щитовидной, околощитовидной желез, яичников, печени, сердца, почек, расстройством пищеварения и всех видов обмена веществ, проявляющимся гипогликемией, гиперкетонемией, кетонурией. В настоящее время предложено выделять истинный кетоз и симптоматическую (вторичную) кетонурию (кетонемию), как признак какого-либо основного заболевания. Ранее Синев А.В. предложил Все процессы с повышенным содержанием кетоновых тел он разделять на первичные, вторичные и истинные, или генуинные: - к первичным относятся кетозы, обусловленные нарушением кормления, в том числе на почве избытка белков и жиров при недостатке углеводов (ацетонемия крупного рогатого 24 скота), недостатке белков (кетонурия суягных овец), скармливании испорченного жира (ацетонемия у кур); -к вторичным – кетоз, обусловленный накоплением ацетоновых тел при травматическом ретикулите, тимпании, катаре кишечника, родильном парезе, сахарном диабете, остеодистрофии, авитаминозах А, В, С, глубокой стельности, болезней органов дыхания, беломышечной болезни; - к истинным, - кетозы, развивающийся при расстройстве функций желез внутренней секреции (передней доли гипофиза, надпочечников и поджелудочной железы). Основная проблема в изучении кетоза, по мнению многих авторов заключается в полиэтиологической (комбинированной) природе данного заболевания, так как ведущая роль каждой из причин может меняться в зависимости от наличия других факторов. Считается, что на основании только биохимического статуса стада нельзя достаточно объективно судить о статусе обмена веществ у стада. Необходимо сопоставить его с данными физиолого-клинического статуса, количеством и качеством кормов, зоогигиеническими условиями содержания и другими важными условиями. Как полагают, особенностью кетоза в большинстве случаев является скрытое течение. В это время постановка диагноза сильно затруднена, но болезнь уже наносит большой экономический ущерб. По мнению специалистов развитие клинической биохимии, аналитических методов, вычислительной техники, ветеринарной профилактики дало возможность выявлять не только больных животных с клинически выраженными признаками, но и целые популяции животных, находящихся на стадиях субклинического кетоза Таким образом, следует заключить, что болезни обмена веществ занимают значительное место в общей патологии сельскохозяйственных животных и представляют собой серьезную проблему для современного животноводства. Профилактика болезней обмена в настоящее время представляет интерес не только для ветеринарных специалистов, а также для селекционеров, занимающихся выведением пород и генотипов с устойчивым здоровьем, адаптированных к различным неблагоприятным факторам и условиям содержания, кормления и технологическим приемам. Список литературы: 1. Журавлева И.А., Боев В.И., Ананьев Л.Ю. «АСПЕКТЫ ВОСПРОИЗВОДСТВА СТАДА КОРОВ МОЛОЧНОГО НАПРАВЛЕНИЯ» В сборнике: ТЕОРИЯ И ПРАКТИКА НАУКИ ТРЕТЬЕГО ТЫСЯЧЕЛЕТИЯ сборник статей Международной научно-практической конференции. отв. редактор А.А. Сукиасян. г. Уфа, РФ, 2014. С. 325-327. 25 ОСОБЕННОСТИ СОДЕРЖАНИЯ ЛАБОРАТОРНЫХ ЖИВОТНЫХ ДЛЯ ИНСТРУМЕНТАЛЬНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ Боюнчан Н..Р, науч. сотр. Лаборатории регуляции агрегатного состояния крови ФГБУ НИИОПП РАН, доц., канд. вет.наук Крюковская Г.М. Порфирьева Л.Ю., ветврач Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» Экспериментальная медицина основана на использовании лабораторных животных. Одним из видов подопытных животных является крыса. Состояние здоровья зверьков влияет на результаты опытов. Больные животные в тестах не участвуют. Однако ,если животное в процессе эксперимента заболело, то оно либо лечится( если результаты лечения не влияют на результаты эксперимента), либо выбывает из опыта. В этом случае оно изолируется в отдельную клетку, помещается на отдельный стеллаж в помещении для исследования и находится под наблюдением до принятия решения о его участи ( наблюдение до исчезновения клинических признаков болезни, лечение, эвтаназия).При проведении экспериментального исследования в случае необходимости животному оказывается медикаментозное лечение препаратами, разрешенными для применения в ветеринарии( кроме случаев, когда протоколом исследования не предусмотрено иное). Наиболее часто в условиях вивария встречаются следующие болезни: заболевания ротовой полости, респираторные, желудочно-кишечные и новообразования. Они могут возникать как в результате поражения бактериями, вирусами, грибами, паразитами, так и в результате неудовлетворительного содержания. В помещении для лабораторных животных в течении всего года должны поддерживаться основные показатели микроклимата: температура, влажность , кратность воздухообмена, давление и скорость движения воздуха, содержание загрязняющих веществ, уровень шума, освещенность. Стены и пол комнаты должны быть из долговечного материала, который легко мыть и дезинфицировать. Температура в помещении составляет 20-26 С, поскольку и холод и жара приводят к нежелательным последствиям, особенно недопустимо наличие сквозняков. Влажность не должна превышать 70-75%. Высокая температура, малая подвижность воздуха, большая влажность тормозят теплоотдачу, что вызывает перегрев у зверьков. Шумом считается звук, вызывающий неприятное или тревожное ощущение и оказывающий негативное воздействие на животных ( в частности снижающий реактивность организма).В процессе жизнедеятельности крысы выделяют следующие газы: углекислый газ, аммиак , сероводород. Аммиак образуется при разложении органических азотсодержащих соединений под действием бактерий. С водой образует щелочь, которая вызывает химический ожог( раздражение конъюнктивы, слизистой оболочки дыхательных путей, попадает в кровь). Сероводород выделяется при бактериальном гниении серосодержащих белков и с кишечными газами, по действию токсичнее аммиака. В воздухе помещения содержится пыль. Чем она меньше, тем дольше находится во взвешенном состоянии, и тем глубже проникает в органы дыхания. Она может 26 содержать органические, неорганические , токсичные соединения, нести на себе микроорганизмы. Учитывая перечисленное выше для предотвращения нежелательных последствий показатели микроклимата должны постоянно контролироваться и корректироваться. Подробнее остановимся на содержании .Животные содержатся индивидуально либо в группах. Поскольку крыса рассматривает клетку как собственный участок, то уже с раннего возраста должна быть приучена к нахождению в паре или группе. Чтобы посадить вместе взрослых животных необходимо предоставит им новую клетку. Клетки должны быть прочными и легко чиститься, их края- гладкими для избегания травм. Они должны хорошо вентилироваться из-за предрасположенности крыс к респираторным заболеваниям. Подстилка у животных меняется 1 раз в 7 дней, но при необходимости ее следует менять 2-3 раза в неделю. В качестве материала используют древесную щепку, стружку, опилки, так как они хорошо впитывают и предотвращают развитие раздражений от мочи и появлению дерматитов. Недостатком их является образование мелкой пыли, что неблагоприятно сказывается на животных с респираторными заболеваниями. Кормление крыс осуществляется полнорационным гранулированным кормом, изготовленным в соответствии со стандартом «Комбикорма полнорационные для лабораторных животных». Корм хранится в сухом, чистом, хорошо проветриваемом помещении при определенной температуре и влажности. Корм не должен быть плесневелым. Свежая вода должна быть всегда доступна. Флаконы с водой необходимо регулярно проверять на наличие утечки или закупорки, т.к. это довольно часто встречается. В нашем случае из 30 экспериментальных животных погибли 3 крысы, вследствие невозможности пить воду из бутылок. У крыс встречаются заболевания ротовой полости. У этих животных резцы растут в течение всей жизни. Коренные зубы имеют ограниченный период роста. Клинические признаки патологии ротовой полости неспецифичны: гиперсаливация, анорексия, потеря веса, проблемы с жеванием, изменение пищевых привычек, ухудшение качества меха. Могут возникать вторичные желудочно-кишечные заболевания, проблемы формирования фекалий и копрофагии. Любое нарушение в ротовой полости может привести к скудному помету, аэрофагии , желудочно-кишечной гипокинезии, метеоризму, вторичному энтериту. Стоматологические проблемы у мышеобразных чаще связаны с резцами. Иногда длинные резцы проникают в мягкие ткани верхней или нижней челюсти или твердого неба, и начинается острое или хроническое воспаление с образованием абсцессов. В нашем случае возник подглазничный абсцесс. Вначале наблюдался экзофтальм , затем появилась лицевая ассиметрия, болезненная припухлость. Через 3 недели образовался абсцесс, который вскоре вскрылся. Из паразитарных заболеваний наблюдалось поражение вшами, насекомыми 1-2 мм в длину, яйца прикреплены к шерсти .Вызывают зуд, присоединение вторичной инфекции. Сильное поражение вшами приводит к снижению веса, вялости, ухудшению ухаживания за собой, анемии, возможен смертельный исход. В нашем случае одно животное погибло, остальные подверглись обработке несколько раз. Помимо животных обрабатывались клетки и помещение. Из онкологических заболеваний наиболее распространены новообразования молочных желез. По статистике самыми частыми опухолями молочных желез являются фиброаденомы (80-90% случаев), остальные в большинстве представлены карциномами. Новообразования могут возникать и у самцов. Опухоли бывают одиночными и 27 множественными. Анатомически ткань молочной железы расположена по обе стороны от срединной линии живота от подмышечной до паховой области. Следовательно, опухоли могут быть в подчелюстной, лопаточной областях, на боках, у основания хвоста. Они могут вырастать до огромных размеров, вызывать снижение подвижности, затруднять прием пищи. Большие опухоли склонны к изъязвлению и вторичному инфицированию. У нас наблюдалась одна самка с опухолью молочной железы в подчелюстной области. Проведено удаление опухоли. Также была выявлена самка с плотным шаровидным образованием в брюшной полости, оказавшимся опухолью яичника. Проведена овариогистеректомия. Цитологическое и гистологическое исследования не проводились. Также распространенной проблемой являются заболевания органов дыхания. В их патогенезе огромную роль играют условия содержания, окружающая среда, иммунный статус. Переполненность клеток, плохая вентиляция, высокая влажность, нерегулярная смена подстилки могут привести к развитию болезней дыхательной системы. Клинические признаки могут быть неопределенными. Возможны летаргия, снижение или отсутствие аппетита, плохое состояние шерстного покрова, вокруг глаз и носа появляется окрашивание шерсти порфирином. Чрезмерное выделение порфирина может быть результатом общего заболевания вследствие плохого ухода животного за собой или быть результатом обструкции слезных протоков из-за ринита. У крыс могут появляться выделения из носа и глаз, чихание , одышка, брюшное дыхание. У отдельных животных может быть слышен характерный дыхательный шум – «щелканье». Также может наблюдаться наклон головы в результате развития инфекции в среднем ухе. В нашем случае отмечалось 3 крысы с заболеваниями дыхательной системы. Проведено симптоматическое лечение. Итого, из 30 экспериментальных животных за 8 мес. наблюдения, 3 крысы пали от обезвоживания, 1-от стресса при манипуляции, 1-от сильного поражения вшами. Одно животное оперировано по поводу опухоли молочной железы, 1-по поводу опухоли яичника и еще 1 – вскрытие и обработка абсцесса. У 3 крыс выявлены заболевания дыхательной системы. При проведении эксперимента важным условием является изначальный отбор клинически здоровых животных и поддержание их здоровья при грамотно организованном содержании. Список литературы: 1. Руководство по лабораторным животным и альтернативным моделям в биомедицинских технологиях / под редакцией: Н.Н. Каркищенко и С.В.Грачева. – М., 2010 2. Э.Кибл, А.Мередит. Грызуны и хорьки. Болезни и лечение. – М., Аквариум 2013 3. Справочник ветеринарного врача / Н.М. Алтухов, В.И.Афанасьев и др. – М., Колос, 1996 4. Кайзер С. Справочник лекарственных препаратов в терапии мелких домашних животных. – М., Аквариум, 2005 28 РАСПРОСТРАНЕНИЕ И ВИДЫ ПАТОЛОГИЙ МОЛОЧНОЙ ЖЕЛЕЗЫ У СОБАК В УСЛОВИЯХ СОВРЕМЕННОЙ УРБАНИЗАЦИИ Воронкова О.Д., асп. Научный руководитель – проф., д-р вет. наук, академик РАН Уша Б.В. Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» В условиях современной урбанизации городов мы наблюдаем тенденцию к росту количества собак декоративных пород (йоркширский терьер, чихуахуа, той терьер) по сравнению с собаками крупных пород (ротвейлер, восточно-европейская овчарка, родезийский риджбек, ньюфаундленд, сенбернар). По статистическим данным посещения ветеринарной клиники в центре Московского мегаполиса, из 100 собак 67 составляют собаки мелких пород, 21 – собаки средних пород (джек рассел терьер, бигль) и лишь 12 – собаки крупных пород. Также мы наблюдаем тенденцию к значительному сокращению моциона у животных вследствие недостатка времени у владельцев при современном ритме жизни и возрастание количества заболеваний, связанных с нарушением физиологических инстинктов животных. Примерно 25 % собак мелких пород страдает недостатком инсоляции и моциона, несбалансированным рационом питания, что приводит к дисбалансу гормонального фона, клинически проявляющемуся либо удлинением стадии проэструса (от полугода в норме до года в современных городских условиях), либо ложными щенностями после каждой течки (наступления стадии лактации через 2 месяца после окончания эструса ввиду психосоматических реакций у животного). Стоит отметить, что подобные патологии у больших собак встречаются значительно реже, примерно в 7 % клинических случаев. Кроме всего вышеперечисленного, отмечается сознательное нарушение физиологической репродуктивной функции самок непосредственно владельцами собак. Это проявляется либо постоянными родами при использовании собаки в разведении, без предоставления стадии покоя самкам, либо полная половая инертность без профилактического оперативного вмешательства (овариоэктомия или овариогистерэктомия). Также имеет место быть неправильное проведение хирургических операций у собак крупных пород, когда удаляют только один яичник из двух функционирующих с целью избежания последующего недержания мочи как побочного эффекта овариогистерэктомий у собак (однако оставшийся яичник является функциональным и риск возникновения онкологий молочных желез у таких собак достаточно велик, что теряет всякий смысл проведений подобной операции с профилактической целью). Все это является предраспологающими факторами к развитию заболеваний молочной железы у самок собак, в частности, онкологического происхождения. Опухоли молочной железы являются наиболее часто диагностируемыми новообразованиями у самок собак. Примерно 80% опухолей молочной железы у собак диагностируется у сук старше 7 лет. В европейских странах, где обычная овариоэктомия не выполняется, общая распространенность опухолей молочных желез выше, чем в Соединенных Штатах, где имеет местно профилактическая овариогистерэктомия сук до первой течки (до 6 месяцев). Здесь следует отметить, что проведение овариогистерэктомии до первой течки снижает риск возникновения опухолей молочных желез до 0,5%; проведение данной операции после первой и второй течки снижает данный риск на 90% и 29 70% соответственно; проведение овариогистерэктомии после 2,5 лет никак не оказывает влияния на формирование и развитие опухолей молочных желез. По данным многолетних исследований установлено, что онкологические заболевания молочных желез являются гормонозависимыми. При наблюдении в ветеринарной практике пациентов с данным диагнозом выявлено, что выраженный дисбаланс гормонального фона имеют 50% собак, не зависимо от гистологического типа новообразований (наблюдения проводились на собаках карликовых и мелких пород старше 5 лет, не подвергавшихся профилактической овариогитерэктомии). В опыте принимали участие 30 собак – пациенты на приеме одной Московской ветеринарной клиники. Из них 50% собак были с диагнозом фибросаркома молочной железы, 20% с опухолями соединительной ткани, 20% - с фиброаденомой молочной железы и 10% - с пролиферативной мастопатией. В результате опыта установлено, что у собак с опухолями соединительной ткани не отмечается увеличение концентрации гормонов. Из 10 % пациентов (3 собаки) с диагнозом пролиферативная мастопатия у двух собак отмечено повышение эстрадиола в крови и у одной выявлено значительное повышение прогестерона. При развитии фиброаденомы у половины собак выявлено незначительное повышение эстрадиола при нормальном уровне прогестерона, а у другой половины картина прямо противоположная. У 4 собак с диагнозом фибросаркома молочной железы выявлено значительное повышение эстрадиола при нормальном прогестероне, у 3 – превышение уровня прогестерона при нормальном уровне этрадиола, у 4 – одновременное повышение уровней прогестерона и эстрадиола и лишь у 4 собак выявлен гормональный фон, характерный для данной фазы полового цикла. Следует отметить, что во всех группах интенсивный рост новообразований приходится на период метэструса или диэструса. По данным наблюдениям можно сделать вывод, что повышенное содержание эстрадиола и прогестерона в большинстве случаев является необходимым фоном для развития характерных новообразований тканей молочных желез. У животных с доброкачественными новообразованиями высокий уровень содержания эстрадиола в крови длительное время может провоцировать в комплексе с другими факторами переход доброкачественного процесса в злокачественное течение. По данным всемирной организации здравоохранения (ВОЗ) опухоли молочной железы у собак гистологически подразделяются на четыре категории: злокачественные опухоли, доброкачественные опухоли, неклассифицированные опухоли и гиперплазии/дисплазии молочной железы. Эта классификация отражает клеточную атипию, модель опухолевого роста, происхождение опухолевых клеток и описательную морфологию каждого клеточного компонента. Подклассификация зависит от выяснения очертания опухолевой клетки. Наиболее распространенными видами являются смешанная доброкачественная опухоль, аденома и аденокарцинома. Около 30% случаев являются злокачественными карциномами молочной железы. Эти опухоли могут быть одиночными или многоцентровыми. Доброкачественные смешанные опухоли состоят из эпителиальных опухолей и мезенхимальных опухолей, которые могут проявляться как кость, хрящ или фиброзная опухоль. Аденома и аденокарцинома имеют много различных подтипов. Реклассификация в порядке возрастания злокачественности включает в себя неинфильтрирующую карциному, сложную карциному, простую карциному и простую анапластическую карциному. Воспалительные карциномы составляют менее 5% от всех опухолей молочных желез. В вопросах лечения онкологических заболеваний молочной железы существуют два основных подхода – консервативный и оперативный. Выбор метода 30 зависит от возраста, физиологического состояния животного и направлен на улучшение срока и качества жизни пациента. Из хирургических методов существует несколько вариантов: Иссекающая биопсия – удаление только опухолевого узла; Локальная (простая) мастэктомия – удаление только пораженной железы; Региональная мастэктомия – удаление пораженной железы и ее пары; Иссечение блоком – удаление пораженной железы, регионарного лимфоузла и всех желез и лимфатических сосудов, лежащих между ними; Односторонняя (унилатеральная) мастэктомия – удаление всех желез на пораженной стороне; Двусторонняя (билатеральная) мастэктомия – удаление все желез (может быть одновременная или поэтапная). Доказано, что тип хирургической операции не влияет на время после операции, в течение которого не появляются рецидивы. Из консервативных методов лечения наиболее широкое применение нашли химиотерапия и лучевая терапия. Гормонотерапия и иммуномодулирующая терапия в настоящее время ещѐ не дают достоверных результатов. Также применяется озонотерапия в качестве возможного противовоспалительного средства, так как озон блокирует свободные радикалы и облегчает тканевое дыхание. В настоящий момент при современной экономической ситуации делается упор на разработку методов диагностики и лечения заболеваний молочной железы, так как многие средства лечения и последующего контроля используются гораздо меньше по сравнению с распространенностью данной патологии. Список литературы: 1. Уша Б.В. Некоторые аспекты применения инновационных технологий в ветеринарии /А.М. Смирнов, Б.В. Уша и др. //Научно-практический журнал «Ученые записки», «Витебская государственная академия ветеринарной медицины».- Витебск, 2011. – Т. 47, вып. 2, часть 1. – С. 205-207 2. Уша Б.В., Беляков И.М., Пушкарев Р.П. Клиническая диагностика внутренних незаразных болезней животных. — М.: Колос, 2003. 3. Клиническое обследование животных: Монография /Уша Б.В., Шабунин С.В., Жавнис С.Э. //. //Germany – LAP LAMBERT Fcfdemic Publishing GmbH &Co Cg /2013/- 22,5 п.л. ЭПИЗООТОЛОГИЯ БРУЦЕЛЛЁЗА ЖИВОТНЫХ доц, канд.вет.наук Горячева М.М. Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» Бруцеллез (brucellessis) – хроническая инфекционная болезнь животных и человека. У многих животных проявляется абортами и задержанием последа, орхитами, рождением нежизнеспособного молодняка и бесплодием. В связи с социальной опасностью бруцеллез 31 включен в список карантинных болезней. Бруцеллез распространен во многих странах мира – в Африке, Центральной и Южной Америке, в некоторых странах Азии и Европы, в том числе в Украине, России, Казахстане. Возбудитель бруцеллеза - бактерии рода Brucella. Название рода связано с именем Д.Брюс, открывшего в 1886 году возбудителя бруцеллѐза. Бактерии из рода Brucella подразделяют на 6 видов: Br. abortus (возбудитель бруцеллеза крупного рогатого скота); Br. melitensis (овец и коз; особенно восприимчив человек); Br. Suis (свиней); Br. neotomae (крыс); Br. ovis (инфекционного эпидидимита баранов); Br. canis (бруцеллез собак). Все виды бруцелл по морфологии и культуральным свойствам не отличаются друг от друга. Это мелкие неподвижные бактерии размером 0,3-0,5 х 0,6-2,5 мкм, спор не образует, грамотрицательны, растут на обычных питательных средах. К физическим и химическим факторам устойчивость бруцелл невысокая: в почве, воде, навозе, грубых кормах возбудитель сохраняет жизнеспособность до 4 мес.; прямые солнечные лучи убивают за 3-4 часа, нагревание до 900-1000С – моментально. По устойчивости к дезосредствам отнесены к 1-й группе возбудителей инфекционных болезней (малоустойчивы). Болезнь характеризуется у человека поражением опорно-двигательного аппарата, мочеполовой, сердечно-сосудистой, нервной систем и длительной лихорадкой. У животных бруцеллез характеризуется абортами, задержанием последов, эндометритами, рождением слабого молодняка, серозными бурситами, гигромами, артритами, тендовагинитами, бесплодием, а у мужских особей – орхитами и эпидидимитами. У свиней бруцеллез характеризуется появлением абсцессов в подкожной клетчатке и паренхиматозных органах, параличами мышц тела и конечностей, а у лошадей – бурситами в области затылка и холки. Характерным клиническим признаком бруцеллеза у северных оленей и маралов считают бурситы конечностей. У собак и кошек заболевание протекает бессимптомно и выявляется только серологическими методами. В настоящее время бруцеллез представляет собой мировую проблему для животноводства, экономики и здравоохранения. Человек заражается в результате прямой или косвенной передачи инфекции от зараженных животных, что приводит к инвалидности и потере трудоспособности. Данная инфекция также приводит к значительному уменьшению продуктов питания, особенно полноценных белков животного происхождения, необходимых для здоровья и благополучия человека. Потери поголовья скота и, следовательно, животного белка происходят вследствие абортов, преждевременных отелов, бесплодия и уменьшения лактации у сельскохозяйственных животных. Восприимчивы многие виды диких и домашних животных. Чаще заболевает крупный рогатый скот, свиньи, овцы, реже – лошади и верблюды. К бруцеллезу восприимчив человек. Молодняк до 5-ти мес. возраста относительно устойчив к бруцеллезу. Его восприимчивость возрастает к периоду созревания половой системы. Из лабораторных животных – восприимчивы морские свинки, реже – белые мыши. Источник возбудителя инфекции – больные животные. Возбудитель выделяется из организма с абортированным плодом, околоплодными водами, истечениями из половых органов, с молоком, спермой, мочой и калом. Факторами передачи являются контаминированные объекты внешней среды, акушерские инструменты, продукция и сырье животного происхождения, инвентарь и спецодежда. Заражение происходит алиментарным и половым путем, через кожу и слизистые оболочки (даже неповрежденные), трансмиссивно (через укусы клещей и 32 кровососущих насекомых). Для заболевания характерна стационарность, которая обусловлена носительством возбудителя мышевидными грызунами, кровососущими насекомыми, дикими животными. Сезонность болезни не выражена. Развитие болезни во многом зависит от вирулентности и количества попавшего в организм возбудителя, иммунной реактивности животного и условий, в которых находится больное животное. В развитии инфекционного процесса при бруцеллезе различают три стадии: регионарной инфекции, генерализации и вторичной латенции. Бруцеллы вначале размножаются в воротах инфекции, а затем по лимфатическим путям проникают в регионарные лимфатические узлы и паренхиматозные органы, в которых развиваются воспалительные процессы, образуются гранулемы, в организме развивается иммунологическая тройка. Клинические признаки в стадию регионарной инфекции не проявляются. Если заражающая доза возбудителя невелика, а устойчивость организма высокая, инфекционный процесс не развивается и организм освобождается от возбудителя. При недостаточной сопротивляемости организма животного, у беременных животных развивается генерализация инфекционного процесса. Бруцеллы, размножившись в лимфатических узлах, проникают в кровь, вызывая бактериемию, которая длится 10-30 дней после заражения. Затем бруцеллы локализуются в матке, вымени, лимфоузлах, селезенке, печени и других органах. Наиболее благоприятные условия для размножения бруцелл имеются в беременной матке, так как плодные оболочки многих животных содержат эритриол - фактор роста для бруцелл. Размножение бруцелл приводит к воспалительнонекротическим изменениям плодных оболочек. Нарушается трофика плода, наступает его гибель и, а к следствие, аборт, рождение нежизнеспособного, слабого приплода, задержание последа. У небеременных маток бруцеллы длительно сохраняются в вымени, надвыменных лимфоузлах, а также в лимфоузлах тазовой полости. При очередной беременности (или снижении резистентности организма) местная инфекция может обостриться и перейти в генерализованную. У самцов бруцеллы наиболее длительно локализуются в семенниках и их придатках. Воспалительный процесс с явлением некроза может разминаться в различных тканях и органах и клинически проявляться в виде орхитов, бурситов, абсцессов под кожей. Вторичная латенция характеризуется отсутствием клинических признаков и аллергической перестройкой организма. У крупного рогатого скота, свиней и овец бруцеллез протекает в виде эпизоотий, заболеваемость может достигать 60%, больные животные погибают в редких случаях. Возникновению бруцеллѐза способствуют неудовлетворительные ветеринарно– санитарные условия содержания и выращивания поголовья, снижающие резистентность организма животных, несвоевременная уборка последов, абортированных плодов, навоза, несоблюдение режима дезинфекции. В хозяйстве болезнь может возникнуть после ввода в стадо племенных животных из неблагополучных хозяйств, пример с овцами (Хакасия – Тува, 2011г.), или при несоблюдении основных правил карантинирования поголовья; или при совместном выпасе здорового и больного скота, использовании инфицированных водоисточников и скотопрогонных трасс. Возбудитель болезни может быть занесѐн в хозяйство собаками, грызунами, а также с молодняком из неблагополучных стад, где нет клинического проявления болезни. В свежих эпизоотических очагах бруцеллѐза в течение нескольких месяцев может быть инфицировано до 60% и более восприимчивого поголовья. В стаде вначале появляются единичные, а затем массовые аборты. В дальнейшем (через 2-3 года) в таких стадах аборты могут не регистрироваться, но при поступлении в них новой 33 партии животных эпизоотический процесс активизируется и болезнь обостряется, поражая как введенных, так и ранее переболевших животных. Перегруппировка животных в хозяйстве приводит к появлению вспышек бруцеллеза. В течение ряда последних лет в Российской Федерации наблюдается ухудшение эпизоотической ситуации по бруцеллѐзу крупного и мелкого рогатого скота. В результате мониторинга распространения бруцеллеза выявлено новых неблагополучных пунктов по бруцеллезу крупного рогатого скота: в 2012 г. – 360, в 2013 г. – 367, в 2014 г. – 620. Заболело за год (тыс. голов): в 2012 г. – 10820; в 2013 г. – 13835; в 2014 г. – 14238. Выявлено неблагополучных пунктов по бруцеллезу мелкого рогатого скота: в 2012 г. – 22, в 2013 г. – 45, в 2014 г. – 53. Заболело за год (тыс. голов): в 2012 г. – 894, в 2013 г. – 1972, в 2014 г. – 2520. Особенно неблагополучными по бруцеллезу крупного рогатого скота оказались следующие Федеральные Округи в РФ: Северо–Кавказский (Карачаево–Черкесская республика, Чеченская республика, Ставропольский край, республики Дагестан, Ингушетия, Кабардино–Балкарская); Приволжский (Саратовская, Самарская, Оренбургская области, республика Мордовия); Сибирский (республики Бурятия, Хакасия, Алтайский край, Забайкальский край, Омская область); Дальне-Восточный (Еврейская автономная область, Приморский край, Амурская область). По бруцеллезу мелкого рогатого скота особенно неблагополучными оказались следующие Федеральные Округи и области РФ: Центральный (Ивановская, Московская, Смоленская области); Северо–Западный (Ленинградская область.); Южный (Краснодарский край, республика Калмыкия, Астраханская и Ростовская области); Северо–Кавказский (республика Дагестан, Ставропольский край); Приволжский (Саратовская и Оренбургская области, республика Удмуртия); Уральский (Свердловская область); Новосибирский (республики Хакассия, Тыва, Красноярский край, Кемеровская и Новосибирская области). Согласно вышеуказанным цифрам в стране имеется тенденция роста основных эпизоотологических показателей. Диагноз на бруцеллез у животных основывается на анамнезе и эпизоотологических данных, клинических признаков, результатов аллергического и бактериологического исследований. Основным методом прижизненной диагностики бруцеллеза у животных является серологический. Серологические исследования на бруцеллез крупного рогатого скота приводит путем постановки реакции агглютинации (РА), реакции связывания комплемента (РСК), роз бенгал пробы (РПБ), кольцевой реакции (КР); овец, коз, лошадей РА, РСК, РПБ; свиней - РСК, РПБ. Повторно животных исследуют на бруцеллез серологическим методом через 15-30 дней, а аллергическим - через 25-30 дней. Аллергический метод применяется для исследования собак и животных других видов. Коров (нетелей) исследуют независимо от периода беременности, овцематок (козематок) и свиноматок - через 1-2 месяца после окота или опороса, молодняк животных всех видов - с 4месячного возраста. Бактериологическому исследованию (включая постановку биопробы) подвергают биоматериал от животных в случае наличия у них признаков, вызывающих подозрение на заболевание бруцеллезом. Абортированные плоды, поступающие в ветеринарную лабораторию для исследования на фихомоноз, кампилобактериоз, сальмонеллез, лептоспироз, хламидиоз, подлежат также обязательному исследованию на бруцеллез. 34 В настоящее время диагностические исследования на бруцеллез предусматривают проведение иммуно-ферментного анализа (ИФА), роз бенгал пробы (РПБ), реакцию связывания комплемента (РСК) и реакцию иммунодиффузии (РИД) с О-ПС антигеном. Парные сыворотки крови от животных исследовали с интервалом 15-30 дней через два месяца после иммунизации животных вакциной из штамма Вrucella abortus 82. Выбор используемых диагностических средств был обусловлен тем, что два из них - ИФА и РБП рекомендованы Международным эпизоотическим бюро для применения, в том числе при международной торговле животными, а РСК является единственным в стране дифференциальным диагностическим средством и позволяет исследовать крупный и мелкий рогатый скот уже через 1,5 месяца после иммунизации слабоагглютиногенными вакцинами, которые применяются в нашей стране наиболее широко (ФГУ ВГНКИ). В заключении можно отметить, что ситуация по бруцеллезу, сложившаяся в стране, и сомнительные результаты серологического исследования животных на бруцеллез в благополучных по данной болезни хозяйствах, полученные при выполнении плана эпизоотологического мониторинга в 2014 году, обусловливают целесообразность продолжения проведения государственного эпизоотологического мониторинга распространения данной болезни на территории Российской Федерации. Литература: 1. А.А.Конопаткин и др. Эпизоотология и инфекционные болезни, М. «Колос», 2. Материалы отчѐта ФГУ ВГНКИ (01.2015г.). 1993. ЛЕЧЕНИЕ ОПУХОЛЕЙ МЕТОДОМ ФОТОДИНАМИЧЕСКОЙ ТЕРАПИИ В ВЕТЕРИНАРИИ Доц., к.в.н. Давыдов Е.В. Коробов С.С., асп. Шленский В.Ю.,студ. Лудина А. Д.,студ., Пантаз Ю. С., студ. Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» В условиях современного мегаполиса с каждым годом возрастает процент онкологически больных животных. Лечение, увеличение продолжительности и качества жизни таких животных является одной из важнейших задач современной ветеринарной медицины. Выбор тактики лечения онкопациентов зависит от вида опухоли, ее локализации и стадии процесса. Основными методами лечения являются хирургический метод, химиотерапия, лучевая терапия. Однако, не все животные в силу возраста и проведенных обследований могут выдержать лечение представленными методами. Альтернативным методом лечения является метод фотодинамической терапии (ФТД). ФТД – это метод локальной активации накопившегося в опухоли фотосенсибилизатора видимым красным 35 светом, приводящего в присутствии кислорода тканей к гибели опухолевых клеток. В ветеринарной практики данный метод используется примерно с 2009 года и на сегодняшний день является экспериментальным и еще не до конца изученным методом лечения. Для удобства можно условно выделить процесс фотодинамического эффекта (фотодинамической реакции) и процессы разрушения опухоли. Результатом ФТД можно считать: разрушение эндотелия кровеносных сосудов, активация и агрегация тромбоцитов, давление на капилляры и, как следствие, нарушение кровотока в ткани опухоли, вплоть до полного его прекращения, и развитием некроза. Преимущество ФТД состоит в том, что опухоль разрушается при воздействии на нее низкоинтенсивного лазерного излучения, исключающего опасность неконтролируемого термического повреждения стенки органа. Фотодинамическая терапия является своего рода частью фотохимиотерапии, при которой, помимо света и препарата, необходим кислород. Таким образом, ФДТ представляет собой результат комбинированного воздействия 3 компонентов: фотосенсибилизатора, света и кислорода. Противоопухолевый эффект обеспечивается прямым фотоповреждением раковых клеток, разрушением сосудистой системы опухоли и активацией иммунного ответа. Лечение методом ФДТ имеет ряд существенных преимуществ: - минимальные побочные эффекты по сравнению с традиционным лечением; - минимально инвазивная терапия; - широкие возможности по доступу к пораженным органам благодаря использованию лазеров и гибких оптических волокон. По сравнению с хирургией и радиотерапией, ФДТ - это щадящая для пациента процедура, которая в то же время дает очень хорошие результаты. Она обычно переносится пациентом относительно легко. Сеанс ФДТ может быть повторен через несколько дней после предыдущего, таким образом, снимаются ограничения на проведение последующих процедур. Список литературы: 1. Клиническое обследование животных: Монография /Уша Б.В., Шабунин С.В., Жавнис С.Э. //Germany – LAP LAMBERT Fcfdemic Publishing GmbH &Co Cg /2013/- 22,5 п.л. К ВОПРОСУ ОБНАРУЖЕНИЯ САРКОЦИСТ В МЫШЕЧНОЙ ТКАНИ ДИКИХ УТОК Демин А.И., асп. Научные руководители: проф., д.в.н., академик РАН Уша Б.В. Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» Проф., к.в.н. Серегин И.Г. РСХА им. К.И. Тимирязева В настоящее время саркоцистозу уделяется мало внимания. В доступной литературе имеются лишь единичные материалы, посвященные данной теме. При этом следует отметить, что саркоцистоз является серьезным протозойным заболеванием млекопитающих и птиц и может представлять опасность для человека. 36 Саркоцистозы (саркоспоридиозы) — хроническое заболевание зверей и диких птиц, часто заканчивающееся смертельным исходом. При сильном поражении организма происходит перерождение мышц, появляются истощение, гидремия тканей. Возбудителем заболевания являются паразиты, которые относятся к роду Sarcocystis. Они относятся к классу токсоплазм и по своему строению весьма похожи на токсоплазмы. Саркоцисты (саркос — мясо, циста — пузырь) гнездятся преимущественно в мышечных клетках и в межмышечной соединительной ткани. Трофозоиты длиной 8—10 и шириной 2— 4 мк (иногда и больше) бобовидной или серповидной формы. Один конец трофозоита заострен, на нем имеется полюсное кольцо, от которого лучеобразно отходят 22—26 нитей, погруженных в сарконемы. В центре трофозоита расположены центральные гранулы, другой конец закруглен, в нем ядро, ядрышки, две митохондрии и вакуоли, окруженные густой плазмой. Развитие саркоцист происходит в мышечных клетках. В них сначала появляются молодые амебоподобные формы - трофозоиты, которые затем превращаются в многоядерные образования, приобретающие продолговатый мешкообразный вид цисты. Внутри мешочковцист множество одноклеточных круглых паразитов, из которых затем образуются материнские клетки — трофозоиты. Последние в свою очередь дают начало развитию саркоцист в мышечных клетках — трофозоитам. Трофозоиты могут переноситься кровососущими паразитами из тела больных животных на здоровых. Следует указать, что трофозоиты не устойчивы. Например, в воде они сохраняют свою инвазионность только до 2 дней. В литературе имеются сведения о том, что в естественных условиях хищные и всеядные звери, а также птицы заражаются при поедании мяса, пораженного саркоцистами. Паразиты в стадии саркоцист очень устойчивы — переносят высушивание в течение месяца; нагревание при 60° также не ослабляет их болезнетворных свойств. Рис. 1. Саркоциста в мышечной ткани Саркоцисты выделяют яды — саркоцистин и саркоспориоцин, которые вызывают у кроликов гибель через 5—6—20 час. Отравление этими ядами сопровождается у грызунов понижением температуры, признаками поноса и появлением конвульсий. Яд саркоцистин извлекают - экстрагируют в 50%-ном растворе глицерина. В этиологии саркоцистозов диких животных известно несколько видов этих паразитов: Sarcocystis gracilis — у косули (в мышцах глотки, корня языка); S. tenella [=ovicanis] — у муфлона (в мускулатуре глотки, языка, зева, диафрагмы, туловища, сердца); S. miescheriana — у кабана (во всех поперечнополосатых мышцах, больше в мышцах ножек диафрагмы, кончика языка, зева, брюшной стенке, в мышце сердца); S. leporum — у зайцев 37 (во всех мышцах скелета); S. rileyi —у уток разных видов (поражают мышцы скелета). Цисты расположены в межмышечной соединительной ткани. Саркоцистами поражаются косули, олени, муфлоны, горные козлы, серны, кабаны, зайцы, дикие утки, крысы, мыши. Люди также могут заразиться при употреблении в пищу сырого саркоцистозного мяса. Инкубационный период при саркоцистозах весьма длительный и окончательно не изучен. Известно только, что при сильном поражении животные претерпевают истощение — изнурение. Наблюдают отеки в подчелюстной области и в области подгрудка. При выраженном интерстициальном воспалении мышц животные плохо передвигаются, больше лежат, иногда погибают. При слабом поражении больные животные могут быть саркоцистоносителями годами, без видимых клинических признаков заболевания. У павших от саркоспоридиоза животных прежде всего бросается в глаза истощение трупов. Во внутренних паренхиматозных органах резко выраженных изменений не находят, но заметно, что органы уменьшены в объеме. В мышцах диафрагмы, внутренних поясничных, брюшных, корня языка, зева, в мышце сердца обнаруживают массовые продолговатые белые или серые включения — саркоцисты. В хронических случаях наряду с наличием множества саркоцист вокруг них образуется отложение солей извести и при этом имеет место оссифицирующий миозит, а также выраженная гидремия в скелетной мускулатуре. При микроскопическом исследовании срезов из скелетной мускулатуры (брюшная мышца, поясничные мышцы, ножки диафрагмы, корня языка, зева) обнаруживают массу продолговатых саркоцист, наполненных трофозоитами. В случаях оссифицирующего миозита в мускулах животных находят множество саркоцист, деформированных отложившимися солями извести. Диагноз устанавливается микроскопическим исследованием срезов из проб мяса пораженных животных. При этом следует помнить, что саркоцисты в отличие от токсоплазм локализуются в мышечных волокнах и в межмышечной соединительной ткани. Мероприятия по борьбе с саркоцистозом не разработаны. Саркоцистозы можно диагностировать только после смерти (павших или отстрелянных) животных. Их трупы и туши необходимо подвергать микроскопическому исследованию; пораженные трупы закапывать на глубину 2 м. Туши отстрелянных животных в зависимости от степени поражения скелетной мускулатуры могут быть использованы. При единичных саркоцистах в 24—28 срезах (увел, в 56—80 раз) мясо может употребляться для пищевых целей. При сильном поражении с признаками выраженного изменения скелетной мускулатуры и гидремии тушу следует уничтожать. Мы провели ветеринарный осмотр тушек диких уток, отстрелянных охотниками с целью выявления поражения их саркоцистозом. По договоренности с охотниками, тушки в потрошенном виде доставлялись на исследование в день отстрела. При осмотре тушек определяли массу, категорию упитанности, проводили осмотр пищевода диафрагмы и сердца, затем делали разрезы грудных и бедренных мышц и определяли наличие саркоцист в них.. Всего было исследовано 22 тушки диких уток, отстрелянных на территории Московской, Тверской, Тульской, Владимирской, Калужской и Рязанской областей РФ. Результаты исследования. При осмотре 22 тушек диких уток саркоцистоз был выявлен в двух случаях. Экстенсивность инвазии составила 9,09% от числа обследованных тушек. Одна утка была отстреляна на территории Тверской области, другая – на водоемах 38 Владимирской области. Саркоцисты у первой утки в большом количестве выявлены в грудных мышцах и в меньшей степени в мышцах шеи. У другой утки саркоцисты в небольшом количестве были во всех скелетных мышцах. При пальпации мышц выявляли уплотнение и утолщение пораженного мускула. Величина саркоцист была неодинаковой, но в пределах размеров просяного зерна. В обоих случаях саркоцисты располагались вдоль мышечных волокон и имели вид сероватожелтых пузырчатых образований круглой или овальной формы. На месте развития саркоцист выявляли ответную воспалительную реакцию, что, по-видимому, влияло на скорость полета уток и на более легкую их добычу охотниками. Масса обработанных тушек не превышала 560-640 г, упитанность составляла показатели низких пределов 2-й категории. Рис. 2. Саркоцисты в дикой утке Заключение. Анализ проведенных исследований показал, что у диких уток саркоцистоз выявлен в 9,09 % случаев. Саркоцисты визуально были выявлены при осмотре грудных и шейных мышц. Список литературы: Горегляд X. С. Болезни диких животных. Мн., «Наука и техника», 1971. 304 с. с илл. ИЗУЧЕНИЕ МИКРОФЛОРЫ ЖЕЛУДОЧНО-КИШЕЧНОГО ТРАКТА СОБАК ПРИ ДИПИЛИДИОЗЕ Н.В. Евдокимова, студ. Доц., канд. вет. наук Сысоева Н.Ю., зав. лаб. Верховская Г.Л. Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» Гельминты домашних плотоядных представляют особый интерес для изучения, так как многие из них являются возбудителями болезней человека и сельскохозяйственных животных. Так, из 82 видов гельминтов, зарегистрированных у плотоядных в России, 32 могут паразитировать у человека, и 26 видов у сельскохозяйственных животных. 39 Дипилидиоз (dipylidiosis) – широко распространенное цестодозное заболевание собак, кошек и других плотоядных, сопровождающееся поражением пищеварительного тракта и общей интоксикацией организма. Болеет дипилидиозом и человек. Возбудителем болезни является ленточный гельминт Dipylidium caninum (огуречный цепень). Половозрелый паразит локализуется в тонком отделе кишечника и представляет собой цестоду белого или слегка розоватого цвета, длиной до 1 м при ширине около 3 мм. Гельминт состоит из головки (сколекса) и сегментированного тела (стробилы). Для прикрепления в кишечнике на сколексе имеются четыре присоски и крючки. Стробила состоит из члеников, в длину может достигать 70 см, ширина зрелых члеников составляет до 3-5 мм. В переднем конце тела гельминта находятся незрелые членики, в среднем отделе стробилы – гермафродитные членики, содержащие как мужской, так и женский половые аппараты. К задней части стробилы зрелые членики постепенно утолщаются, содержат округлые коконы (капсулы) с яйцами и по внешнему виду напоминают семена огурца, при этом мужской половой аппарат редуцируется. Зрелые членики легко обнаруживаются, так как выделяются с фекалиями плотоядных, по форме напоминают огуречные семечки или зерна риса. Коконы яиц поедают личинки блох, являющиеся промежуточными хозяевами (кошачья, собачья и человеческая блохи и собачий власоед), в теле которых развивается личинка дипилидиума. Заражение плотоядных происходит при заглатывании блох или власоедов, содержащих личинок цестоды – цистицеркоидов. Установлено, что у одной блохи может находиться до 50 цистицеркоидов. Распространение повсеместное. Дефинитивные хозяева заражаются при заглатывании инвазированных блох. В кишечнике плотоядных Dipylidium caninum может паразитировать до 1 года. Дипилидиоз плотоядных распространен повсеместно. У людей заболевание носит спорадический характер. Болеют в основном дети младшего возраста. Заражение происходит при случайном проглатывании блох. В организме человека может паразитировать вид Dipylidium caninum (Linnaeus, 1758), Railliet, 1892,— цепень собачий. Синонимы: огуречный или тыквовидный цепень. Заражение животных чаще происходит в летний период. Интенсивность инвазии у одного животного может быть от одного до нескольких экземпляров гельминтов. Дипилидиумы механически воздействуют на слизистую кишечника, вызывая нарушение секреторно-моторной функции пищеварительного канала. Скопление цестод в кишечнике приводит к затруднению проходимости кормовых масс. Паразитируя в организме хозяина, гельминты выделяют в просвет кишечника продукты своей жизнедеятельности, которые являются для животных токсинами и аллергенами. Всасываясь в кровь, они вызывают интоксикацию организма. На фоне этого происходит общее угнетение состояния и возникает вторичный токсикоз. У животных, больных дипилидиозом, наблюдаются расстройства пищеварения, рвота, истощение, нервные явления. Наиболее восприимчивы к дипилидиозу молодые животные, при высокой степени инвазии наблюдается сильное отставание в росте, истощение, снижение иммунного статуса и, как следствие, повышение восприимчивости к инфекционным заболеваниям. Диагноз ставится посредством гельминтоскопии (обнаружение в фекалиях члеников гельминта, заполненного коконами с яйцами) или гельминтоовоскопии (обнаружение отдельных коконов) [2]. 40 Для анализа берут свежие пробы кала. Так как выделение члеников в окружающую среду происходит неравномерно, то, при однократном исследовании и/или недостаточном объеме пробы, возможен ложноотрицательный результат. Для получения достоверных результатов необходимо 2-3-кратное проведение исследований. Мы поставили перед собой задачу изучить состав кишечной микрофлоры у собак больных дипилидиозом. Состав нормальной микрофлоры взрослых собак стабилен и при отсутствии заболеваний колеблется незначительно. Основу его составляют неспорообразующие облигатные анаэробные микроорганизмы. Соотношение представителей анаэробной флоры кишечника к аэробной составляет примерно 1000:1 соответственно. Важнейшими представителями резидентной флоры желудочно-кишечного тракта являются бифидо- и лактобактерии, эшерихии, энтерококки, дрожжеподобные грибы [1]. Исследования проводились на 12 собаках различных пород в возрасте от 1 до 8 лет, владельцы которых обращались в ветеринарную клинику по поводу профилактической дегельминтизации. На основании результатов копрологических исследований были сформированы две группы животных. Опытную группу составили 7 собак, в фекалиях которых находили членики дипилидиума, а контрольную группу – 5 клинически здоровых животных. Эшерихии в норме входят в состав резидентной флоры кишечника, они располагаются по всей полости кишечника, локализуются в просвете и лишь частично примыкают к эпителию его ворсинок. Количество их колеблется в пределах 10 2 -109 в одном грамме фецес, при этом следует учитывать, что большинство видов эшерихий – патогенны с постоянно выраженной высокой вирулентностью. Результаты проведенных микробиологических исследований показали, что у клинически здоровых собак эшерихии составляли в среднем 7,2±0,3 lg/г КОЕ, а у больных дипилидиозом животных их количество возрастало до 8,0±0,6 lg/г КОЕ, при этом 15% из них составляли атипичные эшерихии со слабой лактозной активностью. У 71 % больных дипилидиозом собак были обнаружены бактерии рода протей в количестве 2±0,5, у здоровых собак атипичные эшерихии и бактерии рода протей не выделялись. Количество лактобактерий у собак больных дипилидиозом снижалось до 5,3±0,5 lg /г КОЕ, а у здоровых животных составляло – 6,7±0,4 lg /г КОЕ. Микрофлора тела желудочно-кишечного тракта животных выполняет для организма важные метаболические функции: влияет на всасывание в тонком кишечнике, ферменты ее участвуют в деградации и обмене желчных кислот в кишечнике, образует необычные жирные кислоты в пищеварительном тракте. Под влиянием микрофлоры идет катаболизм некоторых пищеварительных ферментов макроорганизма в кишечнике; инактивируются, распадаются энтерокиназа, щелочная фосфатаза, в толстом кишечнике идет распад некоторых иммуноглобулинов пищеварительного тракта, выполнивших свою функцию и т. д. Микрофлора желудочно-кишечного тракта участвует в синтезе многих витаминов, необходимых для макроорганизма. Ее представители (например, ряд видов бактероидов, анаэробные стрептококки и др.) своими ферментами способны расщеплять клетчатку, пектиновые вещества, не усваиваемые животным организмом самостоятельно. Нормальная микрофлора кишечного тракта животных представлена сложными микробиоценозами, составляющими единую экологическую систему с макроорганизмом. Одной из важнейших функций нормальной микрофлоры является обеспечение совместно с организмом хозяина колонизационной резистентности. При нарушении компенсаторных 41 механизмов в микробиоценозах начинает преобладать транзиторная (аллохтонная) микрофлора, что может вызывать развитие локальной инфекции и других патологических процессов. По мнению Сысоевой Н.Ю. с соавт., нормальная микрофлора – это неспецифический барьер, после прорыва которого инициируется включение неспецифических и специфических механизмов защиты организма [3]. Полученные нами результаты согласуются с данными многих исследователей, которые установили, что во взаимоотношениях между гельминтами и бактериальной флорой существует зависимость, наиболее выраженная в желудочно-кишечном тракте. При доминировании эшерихий над другими представителями облигатной флоры начинают проявляться их патогенные свойства. Увеличение количества эшерихий, в том числе со слабой лактозной активностью способствует возникновению различных нарушений со стороны кишечного тракта и усугублению патологических процессов. Особенно, если учесть тот факт, что лактозопозитивная Escherichia coli является единственным представителем семейства в кишечнике собак. Патогенез при гельминтозах представляет сложное явление и имеет различные аспекты. Болезнь есть результат взаимодействия сочленов паразитоценоза друг с другом и с организмом хозяина. В хозяине паразиты находятся в сложных и многообразных взаимоотношениях. У животных больных дипилидиозом снижается количество лактобактерий, доминирующее по численности положение начинают занимать эшерихии, в том числе и эшерихии со слабой лактозной активностью, начинается рост патогенных и условно-патогенных энтеробактерий, протея. Лечение собак и кошек, больных дипилидиозом, должно быть комплексное. Для дегельминтизации животных необходимо назначать такие антгельминтики, как празиквантел, дронцит, албендазол. Контроль состояния микрофлоры у конкретных животных или их групп позволит своевременно корректировать нежелательные изменения важной аутохтонной части нормальной микрофлоры, исправить нарушения за счет искусственного введения полезных бактериальных представителей, например бифидобактерий или лактобактерий и т. д., и не допустить развития дисбактериоза в очень тяжелых формах. Такой контроль осуществим, если в нужный момент провести микробиологические исследования видового состава и количественных соотношений, в первую очередь в аутохтонной строго анаэробной микрофлоре некоторых областей тела животного. Для восстановления кишечного микробиоценоза целесообразно использовать про- и пребиотики [3]. Профилактика дипилидиоза заключается в соблюдении гигиенических правил при содержании домашних животных, своевременном уничтожении эктопаразитов, проведении профилактических дегельминтизаций. Большое значение имеет просветительская работа с владельцами животных. Детям необходимо прививать навыки соблюдения личной гигиены при общении с домашними животными, которое не приводило бы к заражению дипилидиозом. Список литературы: 1. Субботин В.В., Данилевская Н.В. Микрофлора собак: физиологическое значение, возрастная динамика, дисбактериоз, коррекция //Ж. Ветеринар, 2002.- № 1.- С. 42 2. Методические рекомендации по выделению и идентификации условно-патогенных энтеробактерий и сальмонелл при острых кишечных заболеваниях у молодняка сельскохозяйственных животных / И. Н. Блохина Е, С. Воронин и др. М: МВА, 1990. 32 с. 3. Сысоева Н.Ю., Субботин В.В., Верховская Г.Л. Использование бифидола для коррекции нарушений деятельности желудочно-кишечного тракта ягнят при подготовке к дегельминтизации //Ветеринарная патология. 2003. № 2.- С. 44-46 ИСПОЛЬЗОВАНИЕ МЕТАБОЛИТОВ МИКРООРГАНИЗМОВ ДЛЯ ОЦЕНКИ ФАГОЦИТАРНОЙ АКТИВНОСТИ КЛЕТОК КРОВИ Ездакова И.Ю., Лощинин М.Н., Журавлѐва М.С., Попова Е.В. ВНИИ экспериментальной ветеринарии им. Коваленко В эксперименте использовали образцы крови животных (овцы, лошади, куры) и метаболиты клеточных культур различных сероваров сальмонелл (S.enteritidis, S.typhimurium, S.infantis, S.choleraesuis). Культуральную жидкость микроорганизмов в фазе логарифмического роста фильтровали (Millex-GS 0,22μm) и анализировали в ПААГ-ДСН. Перед определением фагоцитарной активности (ФА) образцы крови инкубировали с метаболитами в течение 30 мин. при 37 °С (кровь кур при 42 °С). Определение ФА проводили по стандартной методике с частицами латекса (1,0×106). Целью работы было изучить влияние метаболитов бактерий на процесс фагоцитоза клеток крови животных. Электрофоретический спектр белков метаболитов сальмонелл был представлен 4 компонентами, основная часть которых была сосредоточена в области молекулярных масс (м.м.) 25-55 kDa, а также в меньшей области 10 kDa. Все серовары сальмонелл характеризовались присутствием полипептида с м.м. 55 kDa. Фагоцитарная активность иммунокомпетентных клеток крови овец под влиянием метаболитов сальмонелл составила от 37,7% до 48%. Для каждого серовара вычисляли индекс сдвига, так для метаболитов S.choleraesuis-0,71; S.typhimurium-0,73; S.infantis-0,88; S.enteritidis-0,68. Таким образом, установлено депрессивное влияние на функциональные свойства фагоцитов, а наиболее неблагоприятное воздействие на процесс фагоцитоза оказали метаболиты S.enteritidis (Ис=0,68). В опыте с клетками кур и лошадей были получены аналогичные результаты. Индекс сдвига в реакции ФА не превышал значения 0,7. Вопрос о влиянии метаболитов на процесс фагоцитоза требует дальнейших исследований, так как представляет глубокий научный интерес не только в познании механизмов иммунной защиты организма от инфекционных агентов, но и в создании новых методов иммунодиагностики. Список литературы: 1. Тутельян А.В. Прайминг фагоцитов и его применение в системе оценки специфической активности иммунорегуляторных соединений./ А.В. Тутельян, Г.И. Клебанов// Иммунология, №1, 2004.-25.№1. С.14-16. 43 2. Лощинин М.Н. Антительный ответ у мышей при пероральной иммунизации против сальмонеллеза. / М.Н. Лощинин, В.В. Субботин // Труды ВИЭВ.-2009.- Т.75.-С.437-441. 3. Ездакова И.Ю. Динамика адгезивной активности перитонеальных макрофагов мышей при вакцинации/ И.Ю. Ездакова// Труды ВИЭВ.- 2009.- Т.75.-С.235-238. 4. Лощинин М.Н. Клеточный иммунный ответ у мышей при пероральной и подкожной вакцинации лизат-антигенами сальмонелл / М.Н. Лощинин // Журнал ветеринария и кормление. - 2011. - №2. - С. 46-47. ЦИТОМОРФОЛОГИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ОПУХОЛЕЙ. МЕТОДЫ ИХ ДИАГНОСТИКИ Иванова Т.В., асп. Научный руководитель проф., д.в.н., академик РАН Уша Б.В. Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» Опухоли - универсальные, часто встречающиеся болезни разных видов животных и человека, а также растений. Из домашних животных они наиболее часто встречаются у плотоядных, а также у крупного рогатого скота, лошадей, мелкого рогатого скота, птиц и свиней. Частота возникновения опухолей не зависит от высоты филогенетического положения в пределах подтипа и характерна для отдельных систематических групп. За последние десятилетия частота возникновения разнообразных опухолей возросла, а локализация их чрезвычайно разнообразна. Так, например, у животных преобладают опухоли органов размножения. Современные представления о происхождении опухолей сводятся к многопричинности. Каждая опухоль возникает под воздействием различных причин и условий. Для обследования онкологических больных применяют методы диагностической визуализации, используемые с различными целями. 1.Для определения типа и распространения предполагаемой первичной опухоли. 2.Для исследования метастазов 3.Для мониторинга прогрессирования опухолей. Так, например, рентгенологическое исследование играет основную роль в первичной диагностике онкологического заболевания. Ультразвуковое исследование органов брюшной полости относится к дополнительным методам исследования, основное назначение которого - выявление метастазов во внутренних органах. Магнитно-резонансная томография с использованием контрастного вещества позволяет оценить локализацию, размер, а также степень инвазии новообразований. Так же в онкологической практике широко используется компьютерная томография и радинуклидная сцинтография. 44 Нужно отметить, что опухоли следует отличать от припухлостей, которые могут являться кистами, гематомами, грыжами, водянками и другими воспалительными процессами. Для того, чтобы дифференцировать вышеперечисленные патологии от онкологии наиболее часто применяют цитологическое исследование. Сутью цитологического исследования является анализ отдельных клеток или небольших групп клеток, взятых с поверхности опухоли из неопластических выпотов или путем пункции плотных опухолей. При изучении цитограмм обращают внимание на следующие морфологические показатели: на размеры клеток и ядер, строение хроматина в них, ядрышки, на ядерноцитоплазматический отношения, количество и характер митозов. Принципиальными критериями отличия эксфолитивных неопластических клеток, являются повышенная цитоплазматический базофилия и изменения ядер - значительные вариации их размеров. Ядрышки также могут быть увеличенными или множественными, особенно в железистом эпителии или лимф одинок ткани. Ядерные мембраны опухолевых клеток часто имеют неровные очертания и соотношения ядра к цитоплазме нередко увеличено в пользу первого. Также можно увидеть аномальный рисунок митоза. Цитологически различают три группы опухолей: Карцинома Саркомы Круглоклеточный опухоли Карциномы растут из эпителиальной ткани. Клетки опухоли часто быстро слущиваются в виде кластеров, полос или гроздей, при этом внутри группы клеток образуется свободный просвет. Цитоплазма имеет "пенистый" вид, а клетки в кластерах часто полиморфны и имеют необычную форму. Соотношения ядро/цитоплазма часто 1:2. Иногда видны большие аномальные клетки, в которых содержатся фагоцита иные нейтрофилы или эритроциты, это часто является показателем злокачественной трансформации. Саркомы растут из соединительной ткани. Это плотные фиброзные опухоли. Клетки с их поверхности не слущиваются, если их не поскоблить. Опухолевые клетки имеют веретенообразную форму, располагаются как по одной, так и группами. Часто нельзя поставить более точного диагноза, чем "веретеноклеточная опухоль", пока не установлена их внутриклеточная матрица, как при микосаркоме, при капле жира внутри клеток, как при липосаркоме. Круглоклеточные опухоли - мастоцитома, лимфосаркома и гистиоцитома. Для цитологического анализа этих опухолей необходимы более специализированные методы окрашивания, чтобы выделить различные клеточные типы. Резко выраженная атипичность клеток и структура ядер дают отличить злокачественный характер опухоли. Также, нужно отметить, что цитологический анализ полученный диагностическими тестами при распознавании рака в начальных стадиях его развития позволяет сформировать группы повышенного риска, а также диагностировать развитие опухолей на ранних стадиях. 45 Список литературы: 1. Уша Б.В., Щербаков Г.Г. и др. Внутренние болезни животных. Санкт-Петербург, изд-во «Лань». – 58 п.л. 4. Клиническое обследование животных: Монография /Уша Б.В., Шабунин С.В., Жавнис С.Э. //Germany – LAP LAMBERT Fcfdemic Publishing GmbH &Co Cg /2013/- 22,5 п.л. ДИАГНОСТИКА НОВООБРАЗОВАНИЙ В ПЕЧЕНИ У СОБАК МЕТОДОМ КОМПЬЮТЕРНОЙ ТОМОГРАФИИ Каюрова М., асп. Научный руководитель – проф., д-р вет. наук, академик РАН Уша Б.В. Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МТИММП» В настоящее время диагностика заболеваний печени ограничивается общими методами исследования, реже применяется рентгенологическое и ультразвуковое исследование. Однако применение специальных методов исследования дает возможность не только верифицировать диагноз, но и установить точную топографию и операбельность узла новообразования в печени. Компьютерная томография — это особый вид рентгенологического исследования, которое проводится посредством непрямого измерения ослабления или затухания рентгеновских лучей из различных положений, определяемых вокруг обследуемого пациента. Метод основан на принципе регистрации рентгенологической плотности сложных объектов движущейся рентгеновской трубкой и позволяет создавать изображения в виде срезов. Основным преимуществом компьютерной томографии является выявление малых очаговых образований (0,5—1,0 см), которые не удается визуализировать другими методами. К числу главных проблем относится сложность интерпретации данных при условии появления артефактов, связанных с дыханием пациента и спонтанными движениями кишечника. Эти недостатки были практически устранены с внедрением спиральных компьютерных томографов. Наибольшие преимущества компьютерная томография получает в диагностике очаговых заболеваний печени и в меньшей степени при ее диффузных поражениях. Фокальные изменения в печени обычно различаются по своей плотности, что позволяет отличать опухоли от кистозных образований. Вместе с тем нередко встречающаяся неоднородность опухолевой ткани, связанная с кровоизлияниями, кальцификацией и распадом, делает проблематичной дифференциальную диагностику первичного и метастатического рака, злокачественных и доброкачественных новообразований [1,2]. Компьютерная томография позволяет оценить распространенность опухолевого роста, наличие прорастания во внутри- и внепеченочные сосудистые структуры, наличие тромбов в их просвете. Вместе с тем применение метода весьма ограничено в исследовании желчных протоков (возможна визуализация только расширенных внутри- и внепеченочных желчных 46 протоков). Наряду с этим метод не позволяет провести полноценную дифференциальную диагностику первичного и метастатического рака, особенно при одиночных метастазах, либо первично-множественном поражении печени. Специфичность исследования может быть повышена лишь при использовании пункционной биопсии под контролем компьютерной томографии.[2] Метастазы в печени при компьютерной томографии имеют одинаковую картину независимо от локализации и морфологической структуры первичной опухоли (рис.1) Как правило, это множественные опухолевые очаги различающиеся по форме и размерам. В крупных метастазах могут появляться зоны пониженной плотности в центре (признак некроза) и повышенной на периферии. Несмотря на отсутствие надежных критериев, отличающих доброкачественные опухоли печени от злокачественных новообразований, при кавернозных гемангиомах происходит контрастное усиление очага первоначально по периферии и далее к центру. Последний скан дает максимальное усиление периферии опухоли (характерный признак), но небольшие размеры гемангиом проявляются неспецифичным гомогенным усилением. Рис. 1. Бернский зенненхунд Федор, 6 лет, множественный опухолевый процесс, метастазы в печени в правой латеральной доле; многокамерное образование с гипотенсивным очагом. Множество полостей неоднородной плотности в середине заполнена жидкостью. При диффузных заболеваниях печени роль компьютерной томографии ограничена, поскольку получаемая плотность ткани печени чаще находится в пределах нормальных значений даже в случаях цирротического поражения органа. Исключение составляют гемохроматоз и жировая инфильтрация, при которых плотность тканей снижается диффузно или локально. Вместе с тем компьютерная томография позволяет оценить состояние сосудов (особенно при бифазном сканировании) и уточнить различные проявления портальной гипертензии. В ранней стадии цирроза печени определяются изменения размеров печени в сторону увеличения или уменьшения, признаки очаговой жировой инфильтрации. Для терминальной стадии заболевания характерно уменьшение размеров печени, неровность контуров с увеличением хвостатой доли, выражен коллатеральный кровоток, появляются спленомегалия и асцит. Современные аппараты для компьютерной томографии позволяют делать срезы толщиной 1 мм с временем сканирования менее 1 секунды, что существенно расширило 47 возможности этого метода. Внедрение в клиническую практику методов усиления изображения путем внутриартериального и внутрипортального селективного введения контрастирующих препаратов, меченых эритроцитов и лейкоцитов значительно улучшило диагностику различных очаговых заболеваний печени и позволило уточнять характер имеющейся патологии.[1,2] Мы в своих исследованиях для определения новообразований в печени у собак использовали аппарат TOSHIBA Asteion Super 4, который представляет собой мультисрезовый спиральный КТ сканер, поддерживающий сканирование всего тела животного. Система генерирует 4 среза за один оборот путем использования многорядового детектора с выбором толщины среза (SSMD). Поскольку она также выполняет высокоскоростную реконструкцию для 12 кадров в секунду, каждое исследование можно выполнить на сверхвысокой скорости. В сочетании с технологией непрерывного формирования изображений можно быстро выполнить более точное сканирование и исследования. Применяемая мультисрезовая технология системы Asteion 4 позволяла получить истинно изотропные объемные данные. Это означает, что разрешение для изображений идентично в сагиттальном, фронтальном и аксиальном направлениях, что давало возможность просмотреть данные в любой проекции без потери качества изображения. Перед проведением исследования в периферическую вену вводили катетер для подачи лекарственных препаратов и при необходимости контрастного вещества. Исследование проводилось под общей анестезией, животное в течение 10-20 минут неподвижно находилось на столе томографа. Исследование начинали с выполнения томограммы, с помощью которой определяли краниальную и каудальную границы исследования. Для наблюдения за динамикой патологического процесса в печени и распределением контрастного препарата в ней использовали исследование, ограниченное только границами органа. Для крупных собак весом 50-60 кг достаточно 16-17 мл омнипака 300. Исследование выполняли в следующих режимах: мощность - 40 - 130 Кв при 50 - 100 Ма, расстояние к центру исследуемого объекта от трубки - 90 см ± 0,5 см, шаг сканирования от 1 до 5 мм, количество сканов от 8 до 346. Обработку сканов вели программой DICOM. При работе с изображением проводили реконструкцию из полученных срезов, которые в дальнейшем могли быть реконструированы в срезы в любой произвольной плоскости. Как на исходных, так и на реконструированнных изображениях возможны геометрические измерения (длина, угол, площадь). В отличие от рентгенографии, где мы не можем измерить рентгеновскую плотность интересующего нас участка, при проведении КТ это становится возможным. Это позволяло, к примеру, дать нам заключение о характере выпота (например, отличали экссудат от транссудата или крови). Рассмотрим компьютерно-томографическую семиотику первичного рака печени. Размеры основного опухолевого очага при первичном раке составляли от 3 до 10 см. Внутриорганные метастазы выявлялись в виде дополнительных узлов округлой формы диаметром до 1,5-2 см. Из этого следует, что данные критерии (количество и размер очагов) не позволяют отличить первичный рак от других очаговых поражений печени. В тоже время максимальные размеры опухолевых узлов холангиоцеллюлярного рака в наших наблюдениях были намного меньше, чем при гепатоцеллюлярном раке, что можно 48 рассматривать как один из дополнительных критериев при проведении дифференциальной диагностики. Денситометрические показатели опухоли, большинства больных собак первичным раком печени на 15-20 ед. Н ниже, чем у паренхимы органа, в связи с чем опухоль четко визуализировалась на томограммах. В ряде наблюдений гепатоцеллюлярного рака печени плотность злокачественного образования совпадала или была незначительно меньше, чем плотность непораженной опухолевым процессом ткани печени, что обусловлено как особенностями структуры опухоли, так и состоянием окружающей паренхимы. Это значительно ухудшало визуализацию опухоли, контуры которой особенно на фоне цирротических изменений органа или при жировой дистрофии могли практически не визуализироваться (цирроз-рак). Заподозрить первичный рак печени помогало наличие набольших участков некроза в некоторых опухолевых узлах, а так же выявление метастазов в воротах печени. Для исключения ложноотрицатльных ответов обязательно применяли внутривенное контрастное усиление, что позволяло визуализировать опухоль. При внутривенном усилении было характерно быстрое контрастирование гепатоцеллюлярного рака в артериальную фазу. Это объясняется тем, что опухолевые очаги в отличие от паренхимы печени имеют преимущественно артериальное кровоснабжение, а так же благодаря их усиленной гиперваскуляризации вследствие развития в опухолевой ткани патологических сосудистых ветвей. Кроме того, внутривенное усиление в сложных случаях позволяло четко разграничивать гепатоцеллюлряный рак с гемангиомой, поскольку пик контрастирования гемангиом наблюдался в венозную фазу. Форма основного очага первичного рака печени бывает округлой, неправильной или напоминает четырехугольник. При гепатоцеллюлярном раке, в отличие от холангиоцеллюлярного, чаще отмечали поражение отдельной доли печени, которая целиком была замещена патологическим образованием. Кроме того, он мог визуализироваться, в виде прилежащих друг другу узлов пониженной плотности, разделенных более плотной тканевой прослойкой. Опухолевый узел гепатоцеллюлярного рака мог располагаться преимущественно экстраорганно, на ножке. В этих наблюдениях при гепатоцеллюлярном раке печени в отличие от гемангиом довольно быстро проявлялся асцит. При внутриорганном опухолевом узле он мог визуализироваться благодаря периферийному ободку более низкой плотности. При холангиоцеллюлярном раке обычно поражались протоки центральных отделов печени с распространением процесса на паренхиму, вовлечением портальных ворот и расширением внутрипеченочных желчных протоков. Определенную помощь в дифференциальной диагностике нам оказал анализ контуров опухоли. В некоторых наблюдениях гепатоцеллюлярного рака нами были отмечены относительно четкие ровные контуры очагов, тем не менее у большинства больных собак, в том числе у трех собак пораженных холангиоцеллюлярным раком, была отмечена нечеткость контуров новообразования на границе с непораженной паренхимой печени, что свидетельствовало об инфильтративном росте злокачественной опухоли. Дифференциальную диагностику первичного рака печени проводили не только с другими внутрипеченочными новообразованиями, но так же с крупными опухолями правого надодпочеченика, правой почки, экзогастральными опухолями желудка и забрюшинными неорганными опуолями в области правого эпимезогастрия, которые могут имитировать опухоль печени. В таких случаях дифференциальной диагностике помогало выявление 49 тонкой жировой прослойки, отделяющей опухоль от паренхимы печени. Такая жировая прослойка свидетельствует о том, что опухоль исходит не из печени и лишь плотно прилежит к ней. При опухолях, исходящих из печени, она отсутствует. Таким образом, применение компьютерной томографии у собак больных первичным раком печени позволяет четко разграничить гепатоцеллюлярныи и холангиоцеллюлярный рак. Для гепатоцеллюлярного рака более характерно поражение одной из долей печени, которая может целиком замещаться патологическим образованием, а так же, как правило, отсутствие расширения внутрипеченочных желчных протоков. При холангиоцеллюлярном раке поражаются преимущественно центральные отделы печени, в области ее портальных ворот, с расширением внутрипеченочных желчных протоков, а паренхима периферии печени остается интакнтной. Список литературы: 1. Кармазановский Г. Г., Вилявин М. Ю., Никитаев Н. С. Компьютерная томография печени и желчных путей. М. «Паганель-бук» 1997. С. 82-88, С. 146-147, С.154 2. Матиас Хофер Компьютерная томография. М.: Медицинская литература, 2008 С.119-121, С. 124 3. Уша Б.В., Щербаков Г.Г. и др. Внутренние болезни животных. Санкт-Петербург, изд-во «Лань». – 58 п.л. ПРИЖИЗНЕННАЯ ДИАГНОСТИКА ЗАБОЛЕВАНИЙ ПЕЧЕНИ Коротеева М.А., асп. Научный руководитель – проф., д. вет. наук, академик РАН Уша Б.В. Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» С целью дифференциальной диагностики гепатопатий (гепатозов, циррозов, острых и хронических гепатитов) применяли методы прижизненной морфологической диагностики, в частности, усовершенствованные методы лапароскопии и прицельной биопсии. Для проведения лапароскопического исследования был использован инструментарий и оборудование фирмы «Olympus» (Германия). Лапароскопическое исследование проводилось в 2 этапа: 1) наложение пневмоперитонеума; 2) визуальный осмотр органов брюшной полости. Для наложения пневмоперитонеума нами был использован вентральный доступ. Собаку фиксировали в положении на боку и использовали вентральный доступ в брюшную полость в области голодной ямки. Для того, чтобы обеспечить выход печени из диафрагмального купола в брюшную полость, грудную часть и голову у животных фиксировали в приподнятом положении. Точка проникновения выбиралась с помощью оптической системы таким образом, чтобы миновать сосудистые структуры, селезенку и жировую серповидную связку. 50 При вентральном проникновении в брюшную полость сначала в точке, которая расположена по абдоминальной линии на 4 см каудальнее пупка, вводили гильзу с газонепроницаемым уплотнением (модель А 5276 фирмы «Olympus» (Германия)) с наружным диаметром 5,7 мм. Через данную гильзу с помощью инсуффлятора «Olympus» (Германия) (модель GLV-U20) проводили заполнение воздухом брюшной полости. Для создания достаточного пневмоперитонеума у собаки достаточно 2—2,5 л воздуха. Затем вводили оптическую систему «Olympus» (Германия) (модель А 5255А) через гильзу с газонепроницаемым уплотнением. Гильзу при этом держали рукой под углом 45 — 60о к брюшной стенке, ориентируя ее в сторону правого подреберья. Для осмотра органов брюшной полости использовался также светоисточник (модель CLV-U20) и общий световод (модель А3071) фирмы «Olympus» (Германия). Осмотр внутренних органов осуществляли по намеченной схеме: определяли цвет брюшины, состояние брыжейки, кишечника, селезенки, почек, уделяя особое внимание осмотру печени (определяли еѐ размер, цвет, характер сосудистого рисунка и состояние желчного пузыря). Но наиболее универсальным и эффективным методом является лапароскопический метод исследования печени с взятием биопсийного материала. Биопсия печени — традиционный «золотой стандарт» для оценки хронических заболеваний печени. После определения топографических особенностей печени и выбора подходящего места для проведения биопсии, на коже в выбранной точке делали небольшой надрез скальпелем, через который вводилась стерильная, тщательно просушенная универсальная игла Уша с наружным диаметром канюли 2,5 мм. Эта игла была сконструирована в 1966 году и впервые использована автором при исследовании печени крупного рогатого скота. Универсальная игла Уша используется как при обычной, так и при аспирационной биопсии, а наличие разных диаметров канюли позволяет использовать иглу при биопсии крупного и мелкого рогатого скота, мелких домашних и различных видов диких животных. Игла для биопсии вводилась под зрительным контролем с использованием лапароскопа, который вводился через гильзу с газонепроницаемым клапаном, расположенную по абдоминальной линии в среднем на расстоянии 4 см каудальнее пупка. В случае, если у собаки в процессе исследования обнаруживался асцит, транссудат откачивали, а затем проводилась биопсия печени. Перед проведением биопсии ограничитель устанавливали на заданную величину вкола. Глубина введения иглы засисит от размеров собаки, упитанности и обычно находится в пределах 1,5 — 2 см. При проведении биопсии конец иглы плотно прижимали к печени, до ощущения характерного хруста, создаваемого в результате взаимодействия острия иглы и соединительно-тканной печеночной капсулы. После этого из иглы удаляли мандрен и присоединяли к ней шприц объемом 20 мл, потянув поршень и создав таким образом отрицательное давление в шприце, резко вводили иглу в паренхиму печени, затем медленно ее извлекали из брюшной полости. Момент извлечения иглы совпадает с максимальным давлением в шприце. Обратным движением поршня полученный образец выдували на химически чистую чашку Петри. Полученный образец ткани печени извлекали из чашки с помощью анатомического пинцета и помещали на фильтровальную бумагу. Кусочек ткани для частичного обезвоживания переворачивали пинцетом несколько раз, а затем помещали в пенициллиновый флакон с 10%-ным формалиновым фиксатором. 51 В результате пункционной биопсии получили столбик ткани длиной 15—20 мм, диаметром 1,5 мм и весом приблизительно 20—30 мг. Полученного материала достаточно для проведения гистологических исследований. После завершения процедуры взятия биопсийного материала из брюшной полости удаляли оптическую трубку, а затем через кран троакара выпускали воздух. Перкуторно устанавливали степень эвакуации воздуха. Затем через гильзу троакара вводили раствор антибиотика, пенициллина или стрептомицина. После чего гильзу троакара удаляли, рану обрабатывали коллоидным раствором и накладывали асептическую повязку. Показания, противопоказания и осложнения при проведении лапароскопии и прицельной аспирационной биопсии печени у собак. Показанием к проведению лапароскопии являются дифференциальная диагностика гепатопатий различного генеза; диагностика гепатопатий, которые не сопровождаются характерными клиническими признаками; гепатомегалия неясного генеза. Показанием к проведению прицельной пункционной биопсии являются: разграничение воспалительных и дистрофических изменений в тканях печени при дифференциальной диагностике острого паренхиматозного гепатита, хронического прогрессирующего гепатита, верификации диагноза на гепатозы, цирроза печени. Противопоказаниями к проведению лапароскопии и прицельной пункционной биопсии являются вторая половина щенности у сук, опухоли, тяжелые воспалительные процессы в брюшной полости, паразитарные кисты, абсцессы органов брюшной полости, нарушения свертываемости крови, механическая желтуха. Прижизненное морфологическое исследование печени является достаточно безопасным и эффективным методом диагностики, и при наличии необходимого опыта у исследователя, практически не вызывает осложнений. Список литературы: 1. Котард Ж.П., Бобиннек Ле.Г., Галуаз-Бриде X. Асцит в следствии гепатопортального фиброза / Ж. Ветеринария, 1999, №10-12. 2. Серов В.В., Паниш К. Морфологическая диагностика заболеваний печени. М.: Медицина, 1989. 3. Уша Б.В., Беляков И.М. Болезни печени собак, М.: ПАЛЬМА пресс, 2002. 4. Уша Б.В., Беляков И.М., Пушкарев Р.П. Клиническая диагностика внутренних незаразных болезней животных. — М.: Колос, 2003. 5. Уша Б.В., Щербаков Г.Г. и др. Внутренние болезни животных. Санкт-Петербург, изд-во «Лань». – 58 п.л. 52 ФАЗОВО-КОНТРАСТНАЯ МИКРОСКОПИЯ ДЛЯ ОЦЕНКИ ЭРИТРОЦИТОВ В ПОСТТРАВМАТИЧЕСКОМ ПЕРИОДЕ У ЖИВОТНЫХ ПОСЛЕ КРОВОПОТЕРЬ Доц., канд. вет. наук Крюковская Г.М. Крюковский Р.А, маг. доц., канд. вет. наук Луцай В.И. Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» Боюнчан Н.Р. науч. сотр. ЛРАСК, ФГБУ НИИОПП РАН Системой, связующей как никакая другая все части организма воедино, является кровь. Именно на картине крови в первую очередь отражается сбой в любой клетке тела. Отражение этого сбоя приводит к функциональным и органическим нарушениям в самой крови. Самое просто констатируемое морфологическое изменение в крови – изменение внешнего вида еѐ форменных элементов. Так как эритроциты являются единственными не антигенпрезентирующими клетками крови с определѐнной формой, именно изменение их деформационных свойств имеет диагностическое значение. Согласно проведѐнным нами исследованиям, все животные после травм, связанных с кровотечением и стрессом для организма, имеют в той или иной степени выраженные изменения структуры эритроцитов, количественно отличные от процента таковых у здоровых животных. Красные клетки крови одними из первых реагируют на меняющиеся условия внутренней среды организма изменением структуры своей мембраны. Модификации вязко-эластических свойств эритроцитов не только зависят от функционального состояния отдельных органов, но и сами оказывают влияние на их жизнедеятельность. В связи с этим представляет интерес дифференциальный подсчѐт патологических форм эритроцитов. Результаты наших исследований представлены в таблице. 50 40 30 20 10 0 1-й кролик 2-й кролик 3-й кролик 4-й кролик В постоперационный период выраженный пойкилоцитоз проявлялся с 5 по 8 сутки после операции. Такое явление можно объяснить воздействием гиперфункционирующей селезѐнки на эритроциты в периферическом русле, вызывающим нарушение процессов энергообеспечения клеток. По мнению ряда авторов, в условиях выраженной посттравматической анемии провоцируется терминальный эритропоэз. Ускоренное созревание эритроцитов сопровождается интенсификацией процессов окисления белковых молекул их цитоскелета, образованием сшивок между ними, уменьшением электрического потенциала и нарушением межмолекулярных взаимодействий внутри цитоскелета, 53 нарушением процессов фосфорилирования и снижением уровня АТФ в клетках, что приводит к синтезу спектрина с крушѐной первичной структурой. На восьмые сутки после операции гемолитический эффект селезѐнки ослабевает в связи с понижением интенсивности терминального эритропоэза, т. к. насыщение тканей кислородом востанавливается. Возрастает способность эритроцитов к деформации, увеличивается их количество, концентрация гемоглобина и диаметр, т. е. в кровь поступают молодые клетки с большей эластичностью. Тяжѐлая травма всегда сопровождается активацией и выделением в кровоток различных медиаторов воспаления и цитокинов, которые детерминируют появление различных видов гемопатий. В зависимости от степени травмы, в сроки от 18 до 24 часов после операции, происходит генерализация реологических сдвигов: повышение вязкости крови, увеличение адгезивно-агрегационной активности еѐ элементов и снижение пластических свойств свойств эритроцитов, что резко ухудшает кровообращение в системе микроциркуляции и ведѐт к развитию полиорганной недостаточности. Нарушения периферического кровообращения вызывают повреждения структурных элементов эритроцитов и его ферментных систем. Анаэробные процессы начинают преобладать над аэробными, происходит накопление в процессе гликолиза 2,3-дифосфоглицерата, который приводит к диссоциации связей между спектрином, актином, анкирином и белком полосы 4,1, в результате чего мембрана теряет стабильность и деформабильность. К такому же эффекту приводит окисление SH-групп спектрина. 2,3-дифосфоглицерат уменьшает сродство гемоглобина к кислороду (мы видим большой процент анемичных эритроцитов рис. 1.), ткани испытывают кислородное голодание. Развивается метаболический ацидоз. Рис. 1. Анемичные эритроциты – стадия образования кодоцитов: увеличен диаметр и жѐсткость диска. Нативный препарат х 1000 При травме, в связи с разрушением большого количества клеток, в крови накапливаются продукты перекисного окисления липидов (ПОЛ) и окислительной модификации белков их мембран. Активация этих процессов происходит и в самом эритроците, на фоне снижения концентрации компонентов антиоксидантной системы. Аутоокисление полиненасыщенных жирных кислот, обладающих большей текучестью, чем насыщенные, изменяет соотношение холестерин/ фосфолипиды в мембране эритроцита, что приводит к повышению жесткости билипидного слоя и обуславливает нарушения гемореологических свойств, реализуемые через повреждения циркулирующих эритроцитов. Стимуляция α1-адренергических рецепторов в стрессорном состоянии постоперационного периода приводит к активации фосфолипазы С через G-белок. Высвобождаемые продукты и Са2+ активирует протеинкиназу С. Активация протеинкиназы С в присутствии ингибитора каталазы и продуктов ПОЛ значительно увеличивают вход ионов Са, а следовательно Са 2+54 зависимую К+-проницаемость мембраны эритроцитов, К интенсивно выходит из клетки, что вызывает подъѐм гиперполяризационного ответа. Повышенная Са2+-зависимая К+проницаемость мембраны эритроцитов снижает их деформируемость путѐм коагуляции спектрина под воздействием ионов Са. Вышеперечисленные факторы приводят к образованию следующих характерных форм эритроцитов. Сфероциты - клетки, готовые к гемолизу, являются конечной стадией превращений других патологических форм клеток (рис 2, 3). Сфероцитоз наблюдается при гемолитических анемиях, септицемии, несовместимости крови, синдроме ДВС, при имплантации искусственных сосудов, клапанов сердца, ожогах, аутоиммунной болезни. Рис. 2. Макросфероцит. Нативный препарат х 1000 Рис. 3. Сфероцит между двумя кодоцитами. Внизу – менискоцит (клетка с разорванной вакуолью). Нативный Кодоциты (мишеневидные эритроциты) - плоские эритроциты с окрашенной периферией (кольцом мишени) и центральным скоплением гемоглобина. В мишеневидных клетках не хватает гемоглобина, что приводит к уменьшению объѐма клетки и дополнительному еѐ уплощению, вызывающему соприкасание поверхностей мембраны изнутри, отчего менее жѐсткая поверхность вмятины, или обе, становятся выпуклыми, образуя между собой пространство, в которое сгоняется оставшийся гемоглобин. Эритроцит становится более плоским, тонким и жѐстким, его диаметр возрастает. От чрезмерного сжатия в оболочке возникают большие касательные и растягивающие напряжения, расслаивающие и даже разрывающие еѐ по экватору, где больше натяжение. Разрывы превращают эритроцит из мишеневидного в звѐздчатый (акантоцит) (рис. 4). 55 Рис. 4. Овалокодоцит и акантоцит За величину отрицательного заряда на поверхности мембраны отвечает сиаловая кислота, содержание которой уменьшается с возрастом эритроцита. Изменение поверхностной структуры мембраны приводит к распознаванию и разрушению клеток макрофагами и лимфоцитами. На эритроцитарной мембране появляются в ходе старения рецепторы, являющиеся фрагментами анкирина. К ним прикрепляются иммуноглобулины класса G, которые способствуют фагоцитозу эритроцитов макрофагами. Процесс старения эритроцитов идет двумя путями — кренированием (т.е. образованием зубцов на плазмолемме) или путем инвагинации еѐ участков. При кренировании образуются эхиноциты (рис. 5.) с различной степенью формирования выростов плазмолеммы, которые впоследствии отпадают, что представляет собой потерю мембранного вещества. При этом формируется эритроцит в виде микросфероцита. До этой стадии трансформация дискоцит – эхиноцит обратима и не зависит от объѐма. Рис. 5. Эхиноциты Рис. 6. Стоматоцит При инвагинации плазмолеммы эритроцита образуются стоматоциты (рис. 6.), конечной стадией которых также является микросфероцит. Стоматоциты - эритроциты, у которых центральное просветление имеет линейную или другую форму. Характерные изменения формы клеток происходят по кальций- зависимому механизму, активированному низким значением рН. В области углубления эритроцита формируется везикулярное 56 образование, разделяющее периферическую и оставшуюся слегка вогнутой центральную части. Далее клетки по форме приближаются к сфере с небольшой ямочкой и везикулой на еѐ дне (стомато-сфероциты). Края изначальной вогнутости могут полностью нивелироваться, так, что при срезе углубление стоматоцита представляет собой только везикулярное образование. Трансформация дискоцит – стоматоцит обратима до стадии потери мембранного вещества. С одной стороны, именно эндотоксикоз является причиной формирования полиорганной недостаточности, с другой – нарушение функции жизненно важных органов приводят к угнетению естественных процессов детоксикации организма и приводят к ещѐ большему накоплению токсинов. Замыкается порочный круг. У исследованных нами кроликов, подвергнутых оперативному воздействию, деформируемость эритроцитов снижалась с 5 по 8 сутки после операции. Выраженный пойкилоцитоз предположительно связан с развитием раневого ацидоза. Список литературы: 1. Луцай В.И. Изменение морфологии эритроцитов коз после торакального вмешательства на реберном каркасе /Луцай В.И., Матвеева М.В., Крюковская Г.М., Марюшина Т.О. // «Ветеринарная практика» – 2011.– № 3 (54) – С. 20-25 ПРИМЕНЕНИЕ НЕМЕДИКАМЕНТОЗНЫХ МЕТОДОВ ТЕРАПИИ Крюковский Р.А., маг., Соколкова И.В., студ. Зав. лаб. Верховская Г.Л. Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» Впервые идея возможности влияния миллимитровых излучений на биологические структуры была высказана отечественными учеными Н.Д. Девятковым и М.Б.Голантом в 1964-1965 гг. (после разработки генераторов указанных излучений). КВЧ-терапию следует рассматривать как разновидность активационной терапии, которую можно применять самостоятельно, либо в комплексе другими методами. Оптимальные режимы воздействия на организмы волн, генерируемых установками ―Явь-1‖, «Милта-КВЧ терминал» (выбор рабочей волны 5,6 мм или 7,1 мм, интервала времени между сеансами, перерывов в приеме процедур и т.п.), определяются состоянием больного животного. Оно оценивается врачом, который задает эти режимы. Ветеринарный врач должен иметь ясное представление о том, каким образом изменения режимов и связанные с ними изменения хода происходящих в организме физических процессов влияют на динамику его восстановления (1,2). Для достижения максимального эффекта от проводимой с помощью ЭМИ терапии основное значение имеют: - правильные показания к применению ЭМИ в качестве основного или вспомогательного лечения; - время облучения, подбираемое в зависимости от исходного состояния больных; - локализация воздействия; - количество сеансов облучения на курс лечения. 57 Очень важным является тот факт, что ЭМИ практически не имеет противопоказаний для применения в клинической практике. Воздействующие извне на больной организм КВЧ-излучения имитируют сигналы, вырабатываемые самим организмом; в этом случае они помогают ему быстрее и эффективнее устранять нарушения. То есть КВЧ-сигналы приводят в действие механизмы, исправляющие нарушения. В зависимости от частоты КВЧ-сигналы ускоряют биохимические реакции, влияя на ферментативную активность. Излучаясь во внешнее по отношения к клетке пространство, КВЧ-сигналы позволяют установить, усилить или ослабить межклеточную связь и взаимодействие: они влияют на дифференцировку клеток (3,4,6,8) . Каждому нарушению функционирования соответствует генерация клетками организма КВЧ-сигналов на ―своих‖ частотах (обычно их называют резонансными), способствующих устранению нарушения. Соответственно и помощь организму при использовании КВЧ-воздействий от внешних источников должна быть связана с увеличением интенсивности сигналов, генерируемых на этих частотах, до величины, достаточной для эффективного управления восстановительными процессами (1,2). Эффективность остро резонансного действия на организм излучений, исходящих от внешних по отношению к нему источников когерентных колебаний, связана с тем, что эти излучения могут возбуждать в организме когерентные КВЧ-колебания, имитирующие сигналы, генерируемые в определенных условиях самими организмами. Основным средством распространения в организме на дальние дистанции информации, связанной с возбужденными КВЧ-колебаниями, является, нервная система. Опыты Л.А. Севастьяновой показали, что как наркоз, так и перерезание нервных волокон снижает влияние КВЧ-воздействий на функционирование организма (2,3,7). КВЧ-сигналы распространяются по миелиновым липидным оболочкам нервных волокон, КВЧ-потери в которых минимальны. Исходя из выше изложенного, КВЧ-терапию следует рассматривать как разновидность активационной терапии, которую можно применять самостоятельно, либо в комплексе с другими методами. Решение о способе применения ЭМИ (самостоятельно или в комплексе с другими методами лечения) принимается ветеринарным врачом, исходя из целесообразности назначения активационной терапии в виде основного или вспомогательного метода лечения (1,4,6,7,). В ветеринарной клинике Института ветеринарной экспертизы, санитарии и экологии МГУПП применяется КВЧ-терапия животных (лошади, козы, кролики) при различных соматических заболеваниях. Отмечено, что низкоинтесивное электромагнитное излучение миллиметрового диапазона оказывает положительное влияние на клиническое состояние животных с сердечно-сосудистыми заболеваниями, что сопровождается благоприятными изменениями центральной, церебральной гемодинамики и биоэлектрической активности головного мозга. Так же КВЧ нашло применение при заболеваниях желудочно-кишечного тракта, получены положительные результаты при применении функциональной печеночной недостаточности у коз и др. животных [3]. Особенно хорошо себя зарекомендовала методика КВЧ-терапии при патологии опорно-двигательного аппарата у лошадей. Следует особо отметить, положительные результаты применения электро-магнитного излучения респираторных заболеваниях у телят. Однако нами отмечено, что применение моно КВЧ 58 терапии с достижением клинического выздоровления зарекомендовало себя не в тяжелых клинических случаях, когда организм животного имеет достаточно резервных сил. По результатам наших наблюдений, мы рекомендуем ЭМИ КВЧ терапию в качестве вспомогательного физиотерапевтического звена при комплексном лечении. Список литературы: 1.Бецкий О.В. История становления КВЧ – терапии и десятилетние итоги работы медико-технологической ассоциации КВЧ / О.В. Бецкий, Н.Н. Лебедева // ММ волны в биологии и медицине. – М. –2001. – № 4(24). – С. 3-12. 2.Крюковская Г.М. Морфофункциональные изменения при хроническом гастрите у собак и воздействии ЭМИ КВЧ миллиметрового диапазона // Дисс. … канд. вет. наук. М., 2006. - 185 с. 3. Уша Б.В., Беляков И.М., Пушкарев Р.П. Клиническая диагностика внутренних незаразных болезней животных. — М.: Колос, 2003. 4. Лабораторная диагностика заболеваний пищеварительной системы: Учебное пособие //Уша Б.В., Елизарова Т.С., Жавнис С.Э., Крюковская Г.М., Цвирко И.П. - М.: МГУПП, 2014. – 110 с. БИОИНДИКАЦИЯ КАК МЕТОД ОЦЕНКИ БЕЗОПАСНОСТИ ОКРУЖАЮЩЕЙ СРЕДЫ Крюковский Р.А., магистр Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» Несмотря на кризисное состояние российской экономики, рыба и морепродукты остаются в ряду важнейших компонентов рациона питания основных групп населения, имеющих высокое содержание животного белка, который усваивается организмом человека легче, чем белок мяса теплокровных животных. Также рыба содержит большое количество полезных веществ – витаминов, минеральных веществ и аминокислот, необходимых человеку для жизнедеятельности. Живая рыба в силу своих высоких потребительских качеств начинает пользоваться большим спросом в России и поэтому доля рынка продуктов из пресноводных рыб растѐт за счѐт увеличения объѐмов вылова пресноводных рыб, запас которых легко восполним из-за высокой продуктивности и быстрого темпа роста. При этом все большую массовую долю в общем объеме вылова начинает занимать прудовая рыба. Поставщиками живой рыбы являются озерно-прудовые и речные рыбоводные хозяйства. В них в основном разводят карпа, в меньшей степени - толстолобика, красноперку, щуку, карася. Как правило, карповых рыб выращивают в поликультуре с растительноядными и хищными рыбами. В естественных водоемах добывают плотву, красноперку, леща, щуку, карпа, судака и угря. Охрана окружающей среды от загрязнения, в том числе биологическим инвазионным материалом, является одной из актуальных проблем современности. Она находится в центре внимания государств, различных международных организаций, ученых, практических работников ветеринарии и здравоохранения всего мира. Для оценки экологической ситуации 59 проводится мониторинг окружающей природной среды, который представляет собой комплексную систему наблюдений с целью оценки отдельных ее компонентов под влиянием воздействий, предупреждение о создавшихся критических ситуациях, вредных или опасных для здоровья людей, животных и других живых организмов и их сообществ. В природных экосистемах в результате интенсивной урбанизации наблюдается процесс изменения составляющих их компонентов. Особенно это становится заметных в водных экосистемах, которые являются местом аккумуляции последствий большинства антропогенных факторов. Происходит нарушение сбалансированной структуры их биоценозов, в том числе и паразитарной компоненты, которая является неотъемлемой частью любого биоценоза. В водоемах обитают свыше 1000 видов рыб, в том числе 250 промысловых. В настоящее время трудно найти даже единичные особи рыб естественных популяций, свободные от гельминтов. Паразитические организмы являются нормальными сочленами биоценозов, и практически не существует ни одного экземпляра взрослой рыбы, внутри или на поверхности тела которой не содержалось бы таких организмов. Большинство их имеют микроскопические размеры, не причиняют рыбам вреда и не представляют опасности для человека. Однако среди паразитов, обитающих в рыбе, могут встречаться и такие, которые опасны для человека, способны изменять физико-химические свойства рыбного сырья или портить товарный вид работы и рыбной продукции. Выявление таких паразитов и установление степени зараженности ими для последующего решения вопроса о возможности пищевого или иного использования сырья является задачей паразитологического инспектирования. Псковская область насчитывает более 13 крупных озер площадью более 10 кв. км, в числе которых и озеро Жижицкое, которые имеют рыбохозяйственное значение. Озеро во все времена славилось рыбой. По видовому составу это самый «разношерстный» псковский водоем. Здесь обитает около 25 видов различных пресноводных рыб, в том числе снеток, судак, лещ, уклея, густера, плотва, щука, красноперка, окунь, ерш, угорь, линь, карась, язь, синец, жерех, сом, налим, пескарь, бычок-подкаменщик, вьюн и шиповка. Потенциальная промысловая продукция оценивается приблизительно в 1 000 т, однако в последние годы промысловые уловы незначительны — 20-50 т. Разработка и апробация методик, позволяющих оценивать экологическое состояние природных водоемов, в связи с большой антропогенной нагрузкой, испытываемой природными комплексами в последнее время, становится все более актуальной. Так как все компоненты природы тесно и неразрывно взаимосвязаны между собой, то нарушения одного компонента вызывает изменение состояния всех остальных. В связи с этим организмы, населяющие водоемы, являются своего рода индикаторами, т. е. показателями вида и характера загрязнений. В настоящее время таких индикаторных организмов известно более тысячи. К таким индикаторным организмам относятся моллюски. Из всех таксонов макрозообентоса именно моллюски, в том числе и брюхоногие, широко распространены в континентальных водоемах, являются довольно крупными организмами, имеют прочный наружный скелет, хорошо сохраняющийся при отмирании, поэтому использование этой группы животных для биоиндикационных целей весьма выгодно в практическом отношении. Нами были проведены исследования по изучению паразитофауны моллюсков, заселяющих озеро, для определения биологической безопасности рыбной продукции. При анализе результатов паразитологических исследований зараженности моллюсков личинками 60 гельминтов нами установлено, что моллюски вида Lymnaea stagnalis в 94,07 % случаев заражены церкариями и метацеркариями трематод семейства Echinoctomatidae. Церкарии трематод семейства Echinoctomatidae крупные, имеют собственно тело и хвостик, подвижно сочлененный с телом. Длина тела соответствует величине хвостика (рис. 1). В моллюсках семейства Planorbidae в мы обнаруживали церкарии трематод Diplostomum sp. семейства Diplostomatidae в 3,14 % случаев, метацеркарии – в 6,29 % случаев. Рис. 1. Церкарии трематод семейства Echinoctomatidae Тело метацеркария прозрачное. На середине тела имеется брюшная присоска, возле нее железистый фиксаторный орган Бранлеса. От ротового отверстия отходит короткий пищевод, разветвляющийся на 2 кишечных ствола, которые на заднем конце тела соединяются в один слепо заканчивающийся ствол (рис. 2). Рис. 2. Метацеркарии трематод Diplostomum sp. Следует отметить, что, что круг окончательных хозяев у трематод достаточно широк и включает как домашних, так и многих диких животных. Это в конечном итоге обусловливает природно-очаговое распространение инвазий, а отсюда и трудности в организации высокоэффективных профилактических мероприятий. Инвазированность моллюсков личинками трематод позволяет сделать вывод, что озеро Жижицкое является неблагополучным по паразитарным болезням водоплавающей и рыбоядной птицы, которая является основным хозяином выявленных трематод. Результаты наших исследований позволяют считать озеро Жижицкое неблагополучным по паразитарным болезням и рекомендовать проведение профилактических мероприятий для борьбы с возбудителями гельминтозов рыб. 61 МЕТОДЫ СОДЕРЖАНИЯ СТРАУСОВ В ФЕРМЕРСКИХ ХОЗЯЙСТВАХ И ЛИЧНОМ ПОДВОРЬЕ Лефта Е.В., студ., Булуктаева О.А., асп. Научный руководитель проф., д-р с.-х. наук Римиханов Н.И. Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» Наши исследования, проведенные в племенном зверосовхозе «Салтыковский», показали, что страусы очень неприхотливы к содержанию, весьма выносливы к неблагоприятным климатическим условиям и быстро размножаются. Как оказалось, страусы не только прекрасно переносят высокие, до +35 °С, температуры, но и довольно низкие - до минус 20-25 °С. При этом взрослое поголовье практически не нуждается в отапливаемых помещениях, так как страусы имеют различные приспособления для контроля своего теплообмена (распускают или разглаживают свое оперенье, убирают или распускают крылья и др.). Важно и то, что при ежедневном контакте с людьми страусы привыкают к ним и полностью становятся податливыми и практически ручными. Для выращивания здоровых и продуктивных страусов обязательно необходимо создавать соответствующий рацион кормления и условия для их выгула. Правильное и сбалансированное кормление страусов, как и другой птицы, является главным условием обеспечения хороших результатов разведения страусов и их воспроизводства. Рацион страусов должен базироваться на зерновых культурах: пшенице, ячмене, кукурузе, овсе, подсолнечнике и ржи. В состав рациона обязательно должны входить грубые корма в виде доброкачественного сена, приготовленного из зелени люцерны, клевера, луговых трав и т. д., а также зеленый корм (трава с выпаса), и минеральные добавки. Кроме того, для молодняка в возрасте до 4-6 месяцев, необходима защита от суровых погодных условий – это будет способствовать уменьшению риска передачи различных инфекционных заболеваний. Наличие у страусов места для выгула, т.е. загона, благоприятно сказывается на его физическом и общем состоянии и развитии. При этом существенно уменьшается количество потенциальных стрессовых ситуаций, а регулярные прогулки помогают птице избежать деформации конечностей, которые нередко ведут к самым серьезным проблемам со здоровьем. Загон обязательно должен иметь определенную минимальную площадь, исходя из того, сколько страусов там одновременно прогуливаются. Для молодняка необходимо сооружать отдельные загоны, для которых требуется меньшая территория для выгула и им вполне подойдут легкие мобильные изгороди, которые являются оптимальными для молодняка. Содержания молодняка страусов в условиях племенного зверосовхоза «Салтыковский», свидетельствует о том, что его сохранность за первый год жизни в среднем составляет 65-70 %. Нами установлена биологическая закономерность, что молодняк, выращенный в летнее время, более устойчив к простудным заболеваниям, чем тот, что был получен в холодный период года. Наблюдения за молодняком черного страуса показали, что вылупившиеся и уже подсохшие птенцы страуса имеют высоту в спине около 20 см. С первого же дня они растут со средней скоростью 1 см в сутки. Следует иметь в виду, что потеря страусятами около 10% 62 от начальной массы тела в течение первых 4-7 дней жизни, является нормой. Это связано с тем, что в первое время малыши не питаются, а живут за счет оставшейся в них желтковой массы. Поэтому не рекомендуется кормить и поить страусят в течение первых 6-8 суток, чтобы организм полностью усвоил остаточный желток. В первую недели жизни, страусят нужно содержать в тепличных условиях. В помещении, где находится молодняк, необходим ламповый обогрев, а также тщательное предохранение от сквозняков. В отличие от других видов сельскохозяйственной птицы, которых родители приучают к потреблению различных кормов, приучение птенцов страуса к корму, особенно при появлении в их рационе ранее неизвестной пищи, обычно производится с помощью старших птенцов, которые самостоятельно поедают новый корм. А маленькие птенцы, подражая старшим, приучаются к такому виду корма. По достижении страусятами трехмесячного возраста, их можно содержать в загонах, оборудованных навесами над кормушками для защиты от возможных осадков. Молодняк, который выращивают без взрослых птиц, практически весь теплый период года можно пасти на лугах и полях, засеянных многолетними травами. Из трав они особенно предпочитают клевер и люцерну. Для повышения эффективности племенной работы необходимо проводить на ферме отбор страусов - будущих производителей. Молодняк, предназначенный для откорма, необходимо помещать в отдельный загон. В таких загонах молодых страусов содержат в течение 8-10 недель, а затем их перемещают в откормочные загоны. Убой молодняка целесообразно проводить в 8-9-месячном возрасте в летний сезон, и в 11-12 месяцев в зимний, при этом живая масса страуса, должна составлять от 110 до 130 кг. Результаты наших исследований свидетельствуют о том, что для содержания взрослых страусов существует некая критическая длина загона, которая равна 40 м. Кроме того, для страусов требуется небольшая внутренняя площадка в загоне, или стойло, которое располагается в помещении или под навесом. В стойле должен быть ровный пол, который покрывают сухой подстилкой из соломы или стружек. Подстилку по мере загрязнения меняют, в среднем 2-3 раза в неделю. Продолжительность брачного сезона у страусов во многом зависит от условий содержания, качества питания и погодных условий. Именно поэтому так необходимо создать страусам комфортные условия. В период яйцекладки самок страуса, рацион кормления должен быть хорошо сбалансированным по энергии, протеину и минеральным веществам, и не должен вести к увеличению живой массы тела птицы. В этот период, допускается снижение живой массы на 5-10%. Полнорационный комбикорм для кур заводского изготовления, с уровнем протеина 17% и обменной энергией 1,130 МДж, в основном, удовлетворяет все основные потребности взрослых страусов. Вместе с тем, следует помнить, что страус - птица пастбищная, которой для нормального функционирования ее пищеварительной системы и всего организма требуется большое количество различных травянистых кормов. Для кормления страусов используют кормушки и поилки, которые желательно встроить в ограждения загонов. Размеры поилок должны иметь 75 см в длину и 20 см в глубину. В зимнее время страусам желательно давать для питья не холодную воду, а слегка подогретую. На страусиной ферме, как и на любом другом птицеводческом предприятии, следует выдерживать все технологические требования производства и в обязательном порядке проводить весь необходимый комплекс ветеринарных мероприятий. 63 Таким образом, выявленные нами закономерности позволяют эффективно вести страусоводство в фермерских хозяйствах и личном подворье в условиях сурового климата Подмосковья. Список литературы: 1. Андрианова Т.Г., Римиханов Н.И., Сушкова З.Н « Содержание тяжелых металлов в продуктах страусоводства». - Москва, 2003. с.254 2. Римиханов Н.И « Экспериментальная оценка безопасности продуктов страусоводства». - Санкт- Петербург, 2005. с.129-130 3. Фокина А.С; Римиханов Н.И Содержание тяжелых металлов в продукции страусоводства. Москва, 2007. с.279-281 4. Kita K, Matsunami S, Okumura J. The effect of fasting and refeeding on total messenger ribonucleic acid content in the liver of chicks// Comp. Biochem. Physiol, 1993, 104 p.589-591 БИОЭНЕРГОИНФОРМАЦИОННЫЙ МЕТОД ТЕРАПИИ ПРИ ГАСТРОДОУДЕНИТАХ Лобова Н.В., студ., Соколкова И.В., студ. Научный руководитель доц., канд. вет. наук Крюковская Г.М. Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» Биоэнергоинформационная медицина – это методики исцеления ориентированные на поддержание и активацию процессов жизнедеятельности организма. Она использует терапевтические воздействия для того, чтобы действовать в гармонии с естественными способностями организма к саморегуляции, регенерации и иммуноадаптации организма животного. Выявленные изменения носят характер стимуляции иммунных и репаративных процессов. На базе ветеринарной клинике при МГУПП под наблюдением находилось 35 собак различных пород, возрастная группа от 3 до 7 лет. Были сформированы 2 группы животных: 1-я, где проводилось монофизиотерапевтическое лечение и 2-я с применением только медикаментозного лечения. Все животные прошли полное клиническое обследование, а также лабораторное и специализированное гастроэнтерологическое. Основной целью нашей работы являлось изучение влияния на собак КВЧ-терапии с заболеваниями желудка. В качестве источника КВЧ излучения использовали отечественный лечебный генератор «Явь -1» рабочей частотой 53530 МГц, с длинной волны 5,6 мм. Выходная мощность 25-30 мВт. Поскольку при таком лечении поглощение волн происходит уже в коже, воздействие велось на биологически активные зоны и биологически активные точки. Основные зоны воздействия – на область точек акупунктуры – ТА-9 на сагиттальной линии в центре теменной кости, ТА-61 билатерально, в 13-м межреберье краниально 3-го ребра, на уровне верхнего края плечевого сустава, ТА-83 на медиальной линии в центре пупка, ТА-84 на медиальной сагиттальной линии на 1 ширину ладони каудально ТА-83. Общее количество процедур от 8 до 12. Общее время сеанса 20 – 35 минут. После 1-го – 2-го 64 сеанса КВЧ – терапии первое, что отмечалось в опытной группе стойкое и длительное купирование болевого синдрома. В контрольной группе с 3-го дня лечения. Диспепсический синдром (Отрыжка, тошнота, рвота, метеоризм) компенсировался на 2 – 3 сутки в 1-й группе, во 2-й с 3-5 дня. Морфологические изменения, выявленные контрольной гастроскопией на 8 день лечения указываю, что при комплексной терапии отмечается активизация иммунологического ответа. Важно отметить, что коррекция иммунных реакций под влиянием электромагнитного излучения может носить различный характер (стимуляция или угнетение) в зависимости от того, какой тип влияния обеспечит нормализацию отклоненных параметров гомеостаза. Выявляются коллагенообразование и обратное развитие соединительнотканных образований в подслизистом слое на месте язвенных дефектов. Что проявлялось в мягком рубцевании язвенно-эрозивных повреждений. Полностью исчезают катарально-геморрагические явления. Тогда как в контрольной группе подобные изменения удалось наблюдать не позднее 18 дня, при выборочно проведенного дополнительного эндоскопического исследования. Применение КВЧ - терапии при лечении животных с хроническим гастритом характеризуется высокой клинической эффективностью. Метод применения электромагнитного излучения миллимитрового диапозона прост, не оказывает вредного влияние на организм больных и обслуживающий персонал. КВЧ – терапия может использоваться в качестве лечения гастродоуденитов и имеет ряд положительных сторон. Наряду, с высокой эффективностью к ним можно отнести – отсутствие противопоказаний, аллергических реакций и побочных эффектов. Полиэтиологический эффект, безболезненность, неинвазивность процедур и нередко положительные эмоции у животных. Список литературы: 1. Крюковская Г.М. Морфофункциональные изменения при хроническом гастрите у собак и воздействии ЭМИ КВЧ миллиметрового диапазона // Дисс. … канд. вет. наук. М., 2006. - 185 с. 2. Лабораторная диагностика заболеваний пищеварительной системы: Учебное пособие //Уша Б.В., Елизарова Т.С., Жавнис С.Э., Крюковская Г.М., Цвирко И.П. - М.: МГУПП, 2014. – 110 с. БИОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ ВОСПРОИЗВОДСТВА СТРАУСОВ И ЭФФЕКТИВНЫЕ СПОСОБЫ ИНКУБАЦИИ СТРАУСИНЫХ ЯИЦ Назимова А.В., студ., проф., д-р с.-х. наук Римиханов Н.И. Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» Сушкова З.Н., асп., РГАЗУ У африканских страусов, самых больших современных птиц на Земле, отличить самцов и самок можно как по размерам, так и цвету оперения. Так, взрослый страус-самец может иметь вес в пределах 120-160 кг, в то время как самка весит 100-120 кг при высоте 180-230 см. Взрослого самца легко отличить по черному оперенью, а тело самки покрыто 65 серо-коричневым опереньем. Страус по семейному укладу относится к полигамным животным, и в природе самцы в период размножения часто содержат небольшой гарем, состоящий из главной самки (любимой жены!) и нескольких второстепенных. На страусиных фермах, во время воспроизводства удобней и рациональней содержать птиц, в основном, в соотношении: на 1 самца - 2 самки, возможен и вариант соотношения 1:3. При наличии просторного вольера, птиц можно содержать и группами, состоящими их двух самцов и пяти-семи самок. Половая зрелость у самцов обычно наступает в возрасте 24-30 месяцев, а у самок в 24 месяца. У самца, достигшего половой зрелости, в брачный периода на ногах, клюве и вокруг глаз появляется красный цвет. Репродуктивный сезон у африканского страуса обычно начинается с марта и продолжается по октябрь, но в зависимости от погодных условий может незначительно сдвигаться в ту или иную сторону. Во время брачного сезона самки, содержащиеся в неволе, часто начинают буквально "красоваться" перед любым человеком, приближающегося к ограде вольера. Самец, стараясь привлечь к себе внимания самки, буквально падает на колени, демонстративно размахивает распущенными крыльями, запрокидывает назад на спину голову и трется затылком, поводя голову из стороны в сторону об оперенье спины. Одновременно с этом самец издает громкий звук, отдаленно напоминающий львиный рев. В ответ на это, самка машет крыльями, склоняет голову и щелкает клювом. В завершении брачного ритуала, готовая к спариванию самка, быстро садится на землю с вытянутой шеей. Тогда самец подходит слева и сзади к самке, ставит ей на спину правую ногу, после чего падает на колени и затем происходит их совокупление. Во время спаривания самец часто бьет запрокинутой головой себя по спине, издавая характерный гортанный звук во время эякуляции. Яйценоскость самки страуса за весь сезон размножения составляет от 40 до 80 яиц, при этом она может откладывать яйца каждый 2-й день на протяжении всего сезона. Слелует отметить, что молодые самки в сезон своей первой яйцекладки способны снести на 15-20% меньше яиц, нежели в последующих сезонах. Все дело в том, что в первый год участия в размножении, даже самка достигшая половозрелости, еще продолжает взрослеть и дозревать, поэтому и не способна в полной мере сразу проявить свой репродуктивный потенциал. Максимальной продуктивности самка страуса достигает к третьему сезону яйцекладки, а длительность продуктивного (яйценосного) периода у африканского страуса составляет порядка 30-35 лет из 70-75 лет жизни. Страусиное яйцо весит от 1100 до 1800 г и имеет скорлупу белого цвета, и такое впечатление, что оно сделано из фарфора. Нормальная яйцекладка для естественного насиживания состоит из 12-18 яиц, но даже если их не убирать из гнезда, то самка продолжает откладывать яйца, поэтому их следует постоянно убирать из гнезда, оставляя в нем лишь несколько яиц. Удаленные из гнезда яйца используют для искусственной инкубации. Такая стратегия постоянного изъятия яиц из гнезда стимулирует самку к продолжению яйцекладки, как бы заставляя ее наверстывать потерянное. Яйца необходимо собирать ежедневно во избежание отрицательного воздействия факторов окружающей среды на них, и во избежание повреждения яиц птицами. Резкое похолодание может заставить самки прекратить яйцекладку на некоторое время, после потепления - яйцекладка может возобновиться. Длительность инкубационного периода у страусиных яиц составляет 42-43 дня. Естественная инкубация, практически не практикуется, а искусственная является 66 общепринятой практикой. От успешной инкубации зависит успех продуктивности воспроизводства стаи страусов, поэтому необходимо уделять процессу инкубации яиц большое внимание. Современные страусиные инкубаторы оснащены комплексом электронных приборов, которые позволяют в автоматическом режиме регулировать все необходимые параметры с большой точностью, обеспечивая тем самым, высокую эффективность искусственного инкубирования яиц. При искусственной инкубации страусиных яиц используются инкубаторы, в которых поддерживается оптимальный режим для инкубации страусиных яиц, а это температура 36,0-36,4 °С. Инкубаторы и другое оборудование, применяемое для выращивания страусят, практически, ничем не отличается от такового, применяемого для выращивания любой другой птицы. Искусственная инкубация яиц - это единственный путь для получения высоких результатов в репродуктивном цикле для племенного разведения. Современные страусиные инкубаторы оснащены автоматическими переворотными механизмами, они позволяет с большой точностью регулировать такие важные параметры инкубации яиц как: влажность воздуха, его температуру, воздухообмен в инкубаторе, что в сумме обеспечивает очень эффективное инкубирование страусиных яиц. Несмотря на это, пребывание яиц в инкубаторе необходимо постоянно контролировать. И так как инкубационный период составляет 42 - 43 дня, на уже на 40 - 41 день яйца из основного инкубатора желательно перенести в выводной шкаф, или при его отсутствии можно воспользоваться специально оборудованной комнатой, где должны четко поддерживаться необходимая температура и влажность воздуха. В конце инкубационного периода необходимо внимательно следить за яйцами, чтобы не пропустить момент, когда страусенок, войдя в воздушную камеру, начнет проклевывать скорлупу. Уход заключительный период инкубации заключается в ежедневном просвечивании яиц на предмет обнаружения проникновения страусенка в воздушную оболочку. Заключительный период пребывания страусенка в яйце включает две важные процедуры. Первая - это в проникновении цыпленка в воздушную оболочку яйца, а вторая разбивании скорлупы яйца и выход из нее. При просвечивании яйца видно, проник цыпленок в воздушную оболочку или нет. Если цыпленок не может пробиться в воздушную оболочку, он вскоре задохнется, поэтому просвечивание позволяет увидеть, где находится в данный момент цыпленок. И так как при неправильном положении цыпленка он также может задохнуться, то в этом случае необходимо вмешательство человека. В случае, если цыпленок не может самостоятельно разбить скорлупу в течение 24-36 часов после проникновения в воздушную оболочку, ему также следует помочь. При этом посторонняя помощь может потребоваться ему лишь в некоторых случаях, когда птенец без оказанной помощи со стороны может погибнуть. При этом преждевременно извлекать птенца из скорлупы тоже не следует, так как в пупочной области может развиться инфекция желточного мешка. В крайнем случае, при таком развитии событий, пупочную область птенца необходимо обильно обработать 7%-ным йодом для дезинфекции и предотвращения кровотечения, это сведет риск заражения к минимуму. Бывает и так, что страусенок, войдя в воздушную камеру, не начинает пищать и проклевываться. Тогда, такое яйцо следует оставить в покое еще на сутки, и только по истечению их, если не наблюдается прогресса с вылуплением, нужно маленьким молоточком сделать в скорлупе в районе воздушной камеры, небольшое аккуратное отверстие, размером с горошину. Затем заглянуть и выяснить, в каком положении находится там страусенок. Если 67 клювик его расположен над пальцами ног, то такое положение тела считается правильным, а сам малыш сможет освободиться от скорлупы и помощь ему не требуется. Если положение цыпленка другое, то отверстие слегка увеличивают и осторожно изменяют положение страусенка, расположив голову над конечностями. Вылупившиеся страусята имеют запас пищи в желточном мешке, который перед их появлением из яйца втягивается внутрь брюшной полости. Вылупившихся птенцов желательно посадить на пару часов в клетку с обогревательными лампами (т.н. брудер), где они должны полностью обсохнуть. Молодняк в икубаторах выводится дружно, а средний вес страусят составляет от 900 до 1200 г при росте малыша в 20-25 см. В течение первых 3-5 суток после вылупления птенцы страусов не нуждаются ни в корме, ни и воде, так как в этот период происходит питание их организма остаточным желтком. Птенцы переносят этот период достаточно легко и в это время удобна транспортировка молодняка на большие расстояния. Таким образом, кроме свежести и оплодотворенности яиц необходимыми условиями для инкубации являются правильная транспортировка, хранение, защита от инфекций, а так же своевременное переворачивание, температурный режим, относительная влажность и вентиляция в инкубаторе. Важным и необходимым моментом инкубирования яиц страуса является строгий контроль еженедельной потери веса яиц на протяжении всего времени инкубационного периода. Список литературы: 1. Кожемяка Н.В., Самойлова Л.Ф. Ветеринарная защита при выращивании бройлеров // Ж. Ветеринария № 3, 2003 г. С .10-13 2. Миролюбова М.Г., Никитина В.Я., Ветеринарное акушерство, гинекология и биотехника размножения. - М., Колос, 2000 г. - 481 с. 3. Мухамедшина А.В. Искусственное осеменение сельскохозяйственных животных и птиц //Ж. Ветеринария № 3, 2003 г. С. 14-15. ИЗУЧЕНИЕ ТИТРАЦИИ ДОЗ И ТЕРАПЕВТИЧЕСКОЙ ЭФФЕКТИВНОСТИ ПРИМЕНЕНИЯ ПРЕПАРАТА «АЗИТРОНИТ» ПРИ ОСТРОЙ БРОНХОПНЕВМОНИИ У ТЕЛЯТ Осянина М.Н., асп. Научный руководитель проф., д-р вет. наук, академик РАН Уша Б.В. Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» д-р вет. наук, вед. научн. сотр. Абрамов В.Е. к.б.н., ст. научн. сотр. Балышев А.В. ФГБНУ ВИГИС им. К.И. Скрябина Компанией ООО «НИТА-ФАРМ», г. Саратов был разработан оригинальный антибактериальный препарат широкого спектра действия на основе азитромицина - азалида, являющегося представителем новой подгруппы макролидных антибиотиков. 68 В данной статье приведены результаты исследований эффективности различных доз препарата «Азитронит» и терапевтической эффективности его применения при острой бронхопневмонии телят. Исследования проводились на телятах голштино-фризской породы в хозяйстве ОАО «Тепелево» Нижегородской области Дальнеконстантиновского района и КФК с. Красное Нижегородской области, Арзамасского района. Проведенные исследования показали, что доза 1,0 мл/20 кг массы животного, применяемая трехкратно с интервалом 24 часа, является наиболее оптимальной для лечения острой катаральной бронхопневмонии у телят. В ветеринарии болезни органов дыхания наносят животноводству значительные потери. В зависимости от региона, климатических условий, технологии содержания и кормления животных на долю болезней органов дыхательной системы приходится от 30 до 70% [4]. Летальность и вынужденный убой животных от патологии дыхательной системы составляют от 5 до 90%, среди которых бронхопневмонии занимают одно из ведущих мест [5]. В связи с этим компанией ООО «НИТА-ФАРМ» (г. Саратов) был разработан оригинальный лекарственный препарат для ветеринарного применения «Азитронит», активный в отношении широкого спектра возбудителей бактериальных инфекций, на основе азитромицина – единственного представителя новой подгруппы макролидных антибиотиков азалидов. [3]. Применение разработанного препарата на практике возможно при условии тщательного изучения его фармако-токсикологических свойств и клинической эффективности [1, 2]. Целью работы явилось установление эффективного режима дозирования лекарственного препарата для ветеринарного применения «Азитронит» и изучение его терапевтической эффективности при острой бронхопневмонии телят. Для подбора оптимального режима дозирования Азитронита в первой серии опытов использовали 52 теленка в возрасте от 2 суток до 4 месяцев голштино-фризской породы, которым был поставлен диагноз бронхопневмония. Исследования проводили в ОАО «Тепелево» Нижегородской области Дальнеконстантиновского района и КФК с. Красное Нижегородской области, Арзамасского района. Диагноз на заболевание ставили с учетом эпизоотической обстановки в хозяйстве, данных клинического, патологоанатомического и лабораторного исследований. Отобранных животных по принципу аналогов разделили на контрольную и 4 опытных группы. В 4 опытных группах находилось по 10 телят, в контрольной группе – 12 животных. Каждой опытной группе телят с диагнозом острая катаральная бронхопневмония применяли препарат «Азитронит» внутримышечно, в заднюю область лопатки в следующих дозах: 0,5; 0,8; 1,0; и 1,5 мл/20 кг массы животного. Препарат в дозе 0,5 мл на 20 кг массы животного вводили трехкратно с интервалом 24 часа; в дозах 0,8 и 1,5 мл/20 кг массы животного, дважды, с интервалом 48 часов и в дозе 1,0 мл на 20 кг, дважды, с интервалом 24 часа. Контрольным животным применяли Энромаг 10% для внутримышечного введения согласно инструкции по применению. 69 За животными опытных и контрольной групп вели клиническое наблюдение, учитывая состояние телят, аппетит, сроки выздоровления, количество павших и выздоровевших животных. Результаты исследования показали, что лечение бронхопневмонии телят Энромагом 10% в дозе 0,5 мл/10 кг один раз в сутки в течение 3 – 5 дней способствовало понижению температуры тела до физиологической нормы к концу 4 - началу 5 суток. Дыхание у животных становилось мягче, хрипы практически не прослушивались. На 8 сутки очагов притупления в легких и хрипов у телят не обнаруживали. Процесс выздоровления телят, которых лечили Азитронитом в дозе 0,5 мл/20 кг массы животного, шел медленно. На 7 сутки лечения симптомы бронхопневмонии не исчезли, общее состояние оставалось угнетенным, температура тела и дыхание находились выше нормы. Во избежание осложнения болезни и гибели телят в дальнейшем их лечили по схеме, принятой в хозяйстве. Улучшение общего состояния отмечали на 9 сутки, а клиническое выздоровление телят - на 14-16 сутки. Применение Азитронита в дозах 0,8 и 1,5 мл/20 кг способствовало понижению температуры тела телят до физиологической нормы на 4-5 сутки лечения, дыхание у животных становилось мягче. На 7 сутки хрипов и очагов притупления в легких не обнаруживали. Лечение телят в дозе 1,0 мл/20 кг массы животного снизило температуру тела до физиологической нормы к концу 3-началу 4 суток. У всех животных в этих группах на 4-5 сутки отсутствовали клинические признаки заболевания: истечения из ноздрей, хрипы, очаги притупления в легких, общее состояние приближалось к норме. Как показали результаты опыта по титрации доз, наиболее оптимальным режимом дозирования является 1,0 на 20 кг массы животного дважды с интервалом 24 часа. Список литературы: 1. Беленький М.Д. Элементы количественной оценки фармакологического эффекта // Л.: Госмедиздат. 1963. 2. Козлов Р.С., Веселов А.В. Макролиды и кетолиды. В кн.: Внебольничные инфекции дыхательных путей: диагностика и лечение. М., 2008. С. 35-37. 3. Приказ МЗ СССР № 755 от 12.08.77 г. «Правила проведения работ с использованием экспериментальных животных». 4. Уша Б.В., Беляков И.М., Пушкарев Р.П. Клиническая диагностика внутренних незаразных болезней животных М.: КолосС, 2004. – С. 154-158. 5. Уша Б. В., Беляков И. М. Ветеринарная пропедевтика. М.: КолосС, 2008. – С. 89-90. 70 ИЗУЧЕНИЕ ТЕРАПЕВТИЧЕСКОЙ ЭФФЕКТИВНОСТИ ПРИМЕНЕНИЯ ПРЕПАРАТА «АЗИТРОНИТ» ПРИ БОЛЕЗНЯХ ОРГАНОВ ДЫХАНИЯ У ТЕЛЯТ Осянина М.Н., асп. Проф., д-р вет. наук, академик РАН Уша Б.В. Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» Проф, д-р вет. наук, вед. научн.сотр. Абрамов В.Е. канд. биолог. наук, ст. научн.сотр. Балышев А.В. ФГБНУ ВИГИС им. К.И. Скрябина В данной статье приведены результаты исследований терапевтической эффективности препарата на основе азитромицина - азалида, являющегося представителем новой подгруппы макролидных антибиотиков, разработанного Компанией ООО «НИТА-ФАРМ» (г. Саратов) при болезнях органов дыхания телят. Исследования проводились на телятах голштино-фризской породы в хозяйстве ОАО «Тепелево» Нижегородской области Дальнеконстантиновского района и КФК с. Красное Нижегородской области, Арзамасского района. Проведенные исследования показали, что при подострой и хронической бронхопневмонии телят более эффективно трехкратное введение препарата в дозе 1,0 мл на 20 кг массы животного с интервалом 48 часов, при лечении трахеобронхита и гнойнокатаральной пневмонии, осложненных гастроэнтеритом, более эффективным было трехпятикратное введение препарата с интервалом 24 часа. Терапевтическая эффективность при лечении Азитронитом составила 92,8-100%. В ветеринарной практике болезни органов дыхания негативно влияют на развитие животноводства, тем самым наносят значительный ущерб [6]. Из незаразных заболеваний 35—40% приходится на долю болезней органов пищеварения, 25—35%—органов дыхания и 10—20% — хирургических (травматических) [7]. На территории Российской Федерации компанией ООО «НИТА-ФАРМ» (г. Саратов) был разработан оригинальный лекарственный препарат для ветеринарного применения «Азитронит». Действующим веществом данного препарата является азитромицин, который активен в отношении широкого спектра возбудителей бактериальных инфекций [1, 4, 5]. Применение разработанного препарата на практике возможно при условии тщательного изучения его фармако-токсикологических свойств и клинической эффективности [2, 3]. Целью работы явилось изучение терапевтической эффективности Азитронита при болезнях органов дыхания у телят. Для подтверждения терапевтической эффективности препарата «Азитронит» в дозе 1 мл\20 кг при бронхопневмонии у телят провели серию опытов в хозяйствах Саратовской и Пензенской областей. При оценке результатов лечения оценивали изменение клинического состояния животных, скорость выздоровления, наличие/отсутствие падежа и вынужденно убитых животных. Эффективность лечения оценивали как разницу между выздоровевшими и павшими/выбракованными животными, выраженную в процентах. 71 В первом опыте для оценки эффективности лечения подострой бронхопневмонии телят в опыт было подобрано 28 больных животных в возрасте 2-4 мес. 14 больных телят лечили препаратом Энромаг 10% согласно инструкции по применению. Остальным 14 телятам применяли внутримышечно Азитронит в дозе 1,0 мл/20 кг массы тела двухкратно с интервалом 48 часов. Проведенное лечение телят с подострой бронхопневмонией телят препаратом Энрома 10% показало, что животные выздоравливали через 8-10 суток. Из 14 животных, подвергнутых лечению, пало 2 животных. Эффективность лечения составила 85,7%. Лечение телят, больных бронхопневмонией, с применением Азитронита показало, что значительное улучшение клинического состояния наступало на 4-5 сутки лечения. Полное выздоровление животных наступало на 7-8 сутки лечения. Из 14 животных, подвергнутых лечению, пало 1 животное. Эффективность применения Азитронита составила 92,8%. Во втором опыте оценивали эффективность лечения хронической бронхопневмонии телят. В опыт было подобрано 22 больных теленка в возрасте 2-4 мес. 8 больных телят лечили препаратом Энромаг 10% согласно инструкции по применению, остальным 14 телятам применяли внутримышечно Азитронит в дозе 1,0 мл/20 кг массы тела трехкратно с интервалом 48 часов. Проведенное лечение телят с хронической бронхопневмонией Энромагом 10% показало, что животные выздоравливали через 13-15 суток. Из 8 животных, подвергнутых лечению, пал 1 теленок и 1 вынужденно убит. Эффективность лечения составила 75,0%. Лечение телят, больных хронической бронхопневмонией, с применением Азитронита показало, что выздоровление животных наступало на 10-12 сутки лечения. Из 14 животных, подвергнутых лечению, пало 1 животное. Эффективность применения препарата составила 92,8%. В третьем опыте участвовало 40 телят в возрасте 1,5-6 месяцев, которым был поставлен диагноз острый трахеобронхит, осложненный гастроэнтеритом. Контрольную группу телят лечили Флороном 30% в дозе 1 мл на 15 кг массы внутримышечно дважды с интервалом 48 часов. Телятам опытной группы вводили Азитронит в дозе 1 мл на 20 кг массы животного ежедневно в течение 3 дней подряд. Эффективность применения препаратов в этом опыте составила 100%, побочных реакций выявлено не было. 72 Таблица 1. Эффективность применения препарата Азитронит при лечении заболеваний животных бактериальной этиологии Заболевание Коли Схема ПродолжиВыздо- Пало, Эффект честв лечения тельность ровело, в/у ивность, о лечения, голов голов % голов сутки Подострая 14 Энромаг 10%* 8-10 12 2 85,7 бронхопневмония 14 Азитронит ** 7-8 13 1 92,8 8 Энромаг 10% * 13-15 6 2 75,0 Хроническая 14 Азитронит *** 10-12 13 1 92,8 бронхо-пневмония 24 Азитронит ** 4-7 24 0 100 20 Флорон 30%* 5-7 19 1 95 Острый трахео20 Азитронит **** 3-4 20 0 100 бронхит Острый бронхит 20 Азитронит **** 3 20 0 100 20 Азитронит *** 5-6 18 2 90 Гнойно30 Азитронит ***** 5-7 28 2 93,6% катаральная пневмония Схема лечения, применяемая в хозяйстве: ** - Азитронит в дозе 1,0 мл/20 кг массы животного двукратно с интервалом 24 часа; *** - Азитронит в дозе 1,0 мл/20 кг массы животного трехкратно с интервалом 48 часов; **** - Азитронит в дозе 1,0 мл на 20 кг трехкратно с интервалом 24 часа; ***** - Азитронит в дозе 1,0 мл на 20 кг пятикратно с интервалом 24 часа. Эффективность Азитронита оценивали при лечении острого бронхита телят, осложненного гастроэнтеритом. В опыте участвовало 40 животных, половине из которых препарат вводили трехкратно с интервалом 24 часа, а другой половине – трехкратно с интервалом 48 часов. Первая схема введения оказалась более эффективной: улучшение наступало через 12-16 часов, на 3 сутки животные выздоравливали. При введении препарата с интервалом 48 часов положительную динамику также отмечали через 12-16 часов, однако на 2 сутки наступало ухудшение состояния. При продолжении лечения с интервалом 24 часа выздоровление наступало на 6 сутки. При лечении гнойно-катаральной пневмонии и остром трахеобронхита, осложненных гастроэнтеритом, потребовалось увеличить курс лечения Азитронитом до 5 инъекций. В этом случае значительное улучшение состояния наблюдалось на 5 сутки опыта, телята хорошо переносили лечение, побочных реакций не фиксировали. Обобщенные данные по применению препарата Азитронит производства ЗАО «НитаФарм», г. Саратов представлены в таблице 1. Заключение. При исследовании различных доз Азитронита установлено, что доза 1,0 мл/20 кг массы животного, применяемая 2 – 3 кратно с интервалом 24 часа, является 73 наиболее оптимальной для лечения острой катаральной бронхопневмонии, острого бронхита и острого трахебронхита у телят, вызванных возбудителями бактериальной этиологии. При подострой и хронической бронхопневмонии телят рекомендуется трехкратное введение препарата в дозе 1,0 мл на 20 кг массы животного с интервалом 48 часов, а при гнойно-катаральной пневмонии – трех-пяти кратное введение препарата с интервалом 24 часов. Эта доза и схемы применения препарата обеспечивают терапевтический эффект на уровне 92,8-100%. Список литературы: 1. Беленький М.Д. Элементы количественной оценки фармакологического эффекта // Л.: Госмедиздат. 1963. 1. Гоглидзе, К.Н. Этиология респираторных заболеваний телят / К.Н. Гоглидзе// Актуальные проблемы патологии и морфологии животных: Материалы международной научно-производственной конференции.- Воронеж: Научная книга. 2006. С. 240-244. 2. Козлов Р.С., Веселов А.В. Макролиды и кетолиды. В кн.: Внебольничные инфекции дыхательных путей: диагностика и лечение. М., 2008. С. 35-37. 3. Приказ МЗ СССР № 755 от 12.08.77 г. «Правила проведения работ с использованием экспериментальных животных». 4. Treadway G, Pontani D. Paediatric savety of azithromycin: worldwide experience. J Antimicrob Chemother 2006. – Р. 120. 5. Уша Б.В., Беляков И.М., Пушкарев Р.П. Клиническая диагностика внутренних незаразных болезней животных М.: КолосС, 2004. – С. 154-158. 6. Уша Б. В., Беляков И. М. Ветеринарная пропедевтика. М.: КолосС, 2008. – С. 89-90. ИЗУЧЕНИЕ ОСОБЕННОСТЕЙ ИЕРАРХИЧЕСКОГО ПОВЕДЕНИЯ КОШЕК Саплинова М.А., студ. Научный руководитель доц. к.б.н. Сотникова Е.Д. Кафедра клинической ветеринарии ФГАОУ ВПО «РУДН» Проблема исследования поведения домашних кошек в Москве стала актуальнаоколо 10 лет назад что, видимо, связано с повышением культуры содержания кошек. Это подтверждается регулярным появлением на различных интернет-площадках просьб помочь скорректировать поведение кошек, живущих в одной квартире. На русском языке мало данных по фелинологии вообще и психологии и этологии кошек в частности. Данных по иерархическому поведению кошек недостаточно, при этом в основном исследуются процессы научения и игрового поведения. Это делает необходимыми любые исследования поведения домашних кошек, которые могут способствовать появлению фундаментальных работ. Цель исследования: скорректировать поведения прайда кошек путем направленного изменения иерархии. Материалы и методы. В работе за основу было взято два факта: 74 1. Единственные представители семейства кошачьих, живущие группами – львы. Домашние кошки – одиночные хищники. При содержании нескольких кошек в одной квартире искусственно моделируется группа, которую по аналогии будем называть прайдом; 2. У львов очередность подхода к пище зависит от ранга животного, т.е. первыми удовлетворяют свой пищевой инстинкт животные, стоящие на более высоких ступенях иерархической лестницы. Предположим, что существует и обратная связь. Тогда искусственное изменение очередности кормления может привести к изменению структуры прайда. Западные авторы часто считают основной причиной конфликтов между кошками пищевую конкуренцию (Фогл, 2005), однако в других сферах жизнедеятельности прайда и при отсутствии пищевой конкуренции конфликты между кошками постоянно встречаются. На наш взгляд, они имеют, прежде всего, иерархическую и в меньшей степени территориальную основу. Некоторые авторы считают, что после кастрации коты продолжают отстаивать свою территорию, а кошки менее активны, терпимее относятся к другим кошкам и больше тянутся к людям» (Фогл,2005). Однако по наблюдениям автора, даже через много лет после кастрации социальное и территориальное поведение кошек не меняется. Они по-прежнему настороженно относятся к другим животным, с которыми вынужденно контактируют. Животные активно социально взаимодействуют, структура прайда периодически меняется. На изменение структуры прайда могут влиять появление новых животных или людей (Фогл, 2005), старение доминирующей особи, смена сезона и следующие за ней изменения животных (Гауптман, 1977). Для коррекции поведения кошек в литературе предлагают методы обучения, дрессировки, модификации поведения. Подчеркивается важность правильного применения положительного и отрицательного подкрепления и наказания. (Милс, 2005). Предлагается коррекция поведения исключительно методом пищевого вознаграждения, а при конфликтах – разведение животных по разным помещениям и применение аэрозолей с феромонами(Фогл, 2005). По вопросу о наказаниях мнения в литературе расходятся. Одни считают, что наказание должно быть либо очень сильным, вызывающим страх, либо регулярным (Милс, 2005).Другие считают наказание за нечистоплотность неэффективным, и предлагают отвлекать кошку от проявления нечистоплотности, например, громким звуком (Хотвитц, 2005). Однако, у большинства владельцев животных нет возможности круглосуточно наблюдать и корректировать поведение своих питомцев, но можно предположить, что это по силам самим кошкам, постоянно находящимся вместе в одном помещении. Западные авторы в понятие «агрессивное поведение» включают активные игровые формы, хищное, иерархическое поведение, истинно агрессивные реакции и на основании этого рекомендуют определенные мероприятия по пресечению агрессии (Хит, 2005).К сожалению, авторы не углубляются в вопросы иерархического и хищного поведения. По нашему мнению, иерархическое поведение кошек бывает конструктивно, а хищное всегда естественно. Чтобы уточнить нашу точку зрения, определимся в терминах. Агрессивное поведение – разрушительное, деструктивное, ведущее к травмированию других животных или людей. Наказание – любой вид воздействия на животное (возможно, и дистанционный), приводящий к прекращению нежелательного поведения. 75 По нашему мнению, для решения конфликта между кошками или предупреждения проявления животными нежелательного поведения необходимо в первую очередь понимать причины происходящего. Работа проводилась с 2008 по 2015 годы. Объектом исследований послужило сообщество кошек, проживающих в одной квартире и имеющее следующий состав: К1 – кастрированная самка, 2006 г.р., впрайдес2-х летнего возраста, не агрессивна, человекоориентирована, хорошо обучаема, очень чистоплотна. К2 – кастрированная самка, 2008 г.р., в прайде с 3 месяцев, глухая, малоконтактна, агрессивна к кошкам и людям. В связи с глухотой К2 социальные навыки ей прививались αкошкой (подражание). Изначально нечистоплотна. К3 –доминирующий самец, пребывание временное, контактен, неагрессивен, нечистоплотен. К4 – кастрированная самка2009 г.р., контактна, неагрессивна, пребывание временное, чистоплотна. К5 – кастрированная самка, 2011 г.р., в прайде с 1 года, очень контактна, неагрессивна, труслива, обучаема, изначально нечистоплотна. В наблюдаемом прайде конфликты имели в большинстве случаев иерархическую природу. Эмоциональные реакции кошек определялись по методу П. Лейхаузена (Меннинг, 1982) и С. Хит (Хит, 2005). Игру от агрессии отличали по следующим признакам: 1) игра у взрослых животных редко является способом решения конфликта; 2) играющие кошки избегают травмирования друг друга, «проигравшие» не стремятся найти защиту, укрытие, возможна смена ролей «нападающий/обороняющийся», «убегающий/догоняющий». Результаты исследований. Для К1 в конфликтах были наиболее характерны реакции, которые и по Лейхаузену, и по Хит трактуются как «спокойная уверенность», для К2 – «агрессия», для К5 – «страх».Таким образом, наиболее спокойная, уравновешенная кошка изначально доминировала в прайде. Роль ω(омега)-животного в естественных условиях принадлежит наименее агрессивной и наиболее трусливой особи. Но особенности эмоциональных реакций К2 (чрезмерная агрессия) делают такую иерархию нежелательной: К2 в такой ситуации будет опасна и для α- и для ω-животного. Если же ω-роль будет принадлежать К2, то α-кошка будет защищена своим местом в иерархии и, одновременно, может защитить β-кошку (К5) от необоснованной, чрезмерной агрессии К2. За время наблюдения проявлялось два типа нежелательного поведения: агрессивная борьба за доминирование со стороны К2 и игнорирование лотка для туалета со стороны К3 и К5. Нечистоплотность не характерна для хищных. Животное, не соблюдающее правила гигиены, может спровоцировать конфликт (Дьюсбери, 1981). Это естественное неприятие было усилено одновременным положительным наказанием всех кошек и положительным подкреплением при использовании лотка. После второго наказания α-особь взяла функции контроля за гигиеной на себя. Она прерывала акт нежелательного поведения других кошек, за что получала положительное подкрепление. Регулярность и неотвратимость наказания привели к быстрому формированию у других кошек правильного поведения. Нечистоплотное животное кормили последним. Изменение очередности кормления позволило значительно снизить частоту проявления агрессии К2 (перевод со 2-й на ω-позицию). Среди плюсов такого подхода – факт неотвратимости наказания за нежелательное 76 поведение вне зависимости от того, наблюдают ли его владельцы. Сложность в реализации подхода состоит в неустойчивости иерархической структуры прайда. За 6 лет наблюдения зафиксировано 13 случаев изменения структуры прайда, из них 5 – попытки изменения иерархии в прайде «снизу», 3 – связаны с появлением новых животных, 2 – убытие животных, 3 – изменения структуры прайда «сверху» для коррекции нежелательного поведения. Данные наблюдений позволяют сделать следующие выводы: 1. Новое или вернувшееся после длительного отсутствия животное вне зависимости от пола всегда становилось последним в иерархии, что может быть связано с принципом территориальности. В ситуации «взрослое животное – котенок» это правило, естественно, не работает. 2. Убытие недоминирующего животного не влияло на структуру прайда. 3. Убытие доминирующего животного приводило к иерархической борьбе между оставшимися членами прайда. 4. Изменение очередности кормления животных быстро (в течение суток) приводило к изменению иерархической структуры прайда. 5. Кошка, переходившая последнюю ступень иерархии, не проявляла нежелательного поведения, борьбы за лидерство, и могла бороться только за следующую ступень в иерархии. 6. Внешние факторы, связанные с людьми или переездом всего прайда, на иерархию не влияли. Пока нельзя дать окончательный ответ, способность α-кошки корректировать нежелательное поведение других животных – это общая чертадоминирующей особипрайда или особенность характера конкретного животного. Чтобы подтвердить это и доказать эффективность метода коррекции иерархической структуры прайда, нужно продолжать эксперименты на других группах животных. ЭНДОСКОПИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ ЖЕЛУДКА СОБАК Соколкова И.В., студ., Лобова Н.В., студ. Научный руководитель доц., канд. вет. наук Крюковская Г.М. Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» В работах ряда исследователей отмечается, что в настоящее время происходят определенные изменения клинической картины и течения хронического гастрита и язвенной болезни. Современный патоморфоз заболеваний органов пищеварения, вероятно, во многом определяется изменениями экологических условий и применением новых лекарственных препаратов. В связи с этим нам представляется необходимым всестороннее изучение патоморфологических изменений слизистой желудка при патологических процессах. Исследования проводились на базе ветеринарной клинике при МГУПП на кафедре ветеринарной медицины. Группа состояла из 35 собак различных пород, с клиническими признаками гастрита в возрасте от 3 до 7 лет. Эндоскопическое исследование выполняли с 77 использованием приборов GF-B3 и GIF-B3 («Olympus», Япония). Зонд фиброскопа проводился до привратника с последующим введением в луковицу двенадцатиперстной кишки. Параллельно производили панорамный и прицельный осмотр всех отделов. В 3 наблюдениях выявленные изменения желудка соответствовали визуальным признакам поверхностного гастрита. В этих случаях наблюдали изменения в виде гиперемии, рыхлости и отека ткани, нередко отмечали увеличение количества слизи в желудке, что придавало своеобразный блеск слизистой оболочке. У части больных экссудативно-эритематозные явления были очаговыми, проявляясь в виде ограниченных участков, пятен и полос, слизистая оболочка выглядела «пестрой», при этом чаще поражался центральный отдел желудка. В других случаях гиперемия слизистой оболочки была значительной и выражена диффузно, распространяясь на дистальный и проксимальный отделы желудка. Рельеф поверхности желудка не претерпевал существенных изменений. Желудочные складки ровные, гладкие и эластичные, активно участвовали в проведении перистальтических волн; в отдельных случаях они были несколько огрублены вследствие значительного отека ткани. Атрофические явления в желудке при визуальной ревизии органа обнаружены в 32 случаях. У части больных выявлялась очаговая атрофия слизистой оболочки, проявлявшаяся слегка западающими округлыми участками истончения с измененной бледной окраской, что придавало поверхности желудка своеобразный мелкопятнистый вид. У значительного числа пациентов атрофия слизистой оболочки желудка имела диффузный характер. Наблюдали сглаженность желудочных складок на всем их протяжении, слизистая оболочка заметно истончена во всех отделах желудка, на фоне тусклой белесоватой поверхности местами проступал нежный рисунок сосудов подслизистого слоя. В некоторых случаях атрофические изменения в антральном отделе желудка распространялись диффузно, тогда как в проксимальном направлении атрофия слизистой оболочки проявлялась локально, в большей степени на передней стенке и малой кривизне желудка. Смешанные формы поражения желудочной стенки были отмечены в 21 случаях. При этом у 14 собак атрофические изменения слизистой оболочки развивались на фоне резко выраженных экссудативно-эритематозных повреждений ткани. У 7 животных атрофия слизистой оболочки сочеталась с явлениями ее очаговой гиперплазии, выражающейся в появлении ограниченных участков утолщения или мелкоузелковых разрастаний. У 7 пациентов эндоскопическое исследование показало наличие гипертрофических изменений в желудке. При этом у 6 наблюдаемых макроскопическая картина характеризовалась наличием грубых, деформированных складок, придающих поверхности органа своеобразный бугристый вид. В 4 случаях определялась характерная зернистость слизистой оболочки в виде множества небольших возвышений, создающих неровность рельефа ткани. Такие изменения имели место в различных участках желудка, но чаще в центральном отделе. Наличие эрозий установлено в 29 наблюдения, при этом регистрировали выраженные эритематозные изменения слизистой оболочки, изредка образование эрозий происходило на фоне атрофического процесса в желудке. Макроскопически плоские эрозии были обнаружены у 15 пациентов и представляли собой множественные поверхностные повреждения слизистой оболочки размером 0,2 - 0,3 см, иногда покрытые налетом фибрина, с узким ободком краевой гиперемии. У 14 животных имелись приподнятые эрозии желудка в виде одиночных или множественных, расположенных цепочками набуханий размером 0,3-0,5см, в центре которых определялся кратерообразный участок некроза. Эрозивные повреждения локализовались, как правило, в пилороантральной зоне желудка (21 случай), изредка они встречались в области тела или в кардиальном отделе. У 21 пациента были обнаружены полипы желудка. Макроскопически они выглядели как одиночные образования округлой или 78 полушаровидной формы, размером 0,5 - 1см. У 12 животных полипы располагались в области тела желудка, у 6 были обнаружены полипы в пилороантральной зоне и в 3 случаях имелись полипы кардия. При этом формирование полипов происходило на фоне атрофических изменений слизистой оболочки желудка. Патологическое состояние желудка в некоторых наблюдениях сочеталось с изменениями в дистальном отделе пищевода. Так, явления эзофагита при эндоскопии обнаружены у 4 пациентов. У 2-х из этих больных определялись признаки желудочно-пищеводного рефлюкса. Недостаточность нижнего пищеводного сфинктера определялась у 9 пациентов. Таким образом, анализ данных эндоскопического исследования показал, что чаще у собак наблюдается хронический гастрит, сопровождающийся значительным разнообразием структурно-функциональных изменений регистрируемых на макроскопическом уровне. Список литературы: 1. Крюковская Г.М. Морфофункциональные изменения при хроническом гастрите у собак и воздействии ЭМИ КВЧ миллиметрового диапазона // Дисс. … канд. вет. наук. М., 2006. - 185 с. 2. Лабораторная диагностика заболеваний пищеварительной системы: Учебное пособие //Уша Б.В., Елизарова Т.С., Жавнис С.Э., Крюковская Г.М., Цвирко И.П. - М.: МГУПП, 2014. – 110 с. 3. Уша Б.В., Щербаков Г.Г. и др. Внутренние болезни животных. Санкт-Петербург, изд-во «Лань». – 58 п.л. ПРИМЕНЕНИЕ ИЗЛУЧЕНИЙ КРАЙНЕ ВЫСОКИХ ЧАСТОТ ПРИ ЛЕЧЕНИИ ДОМАШНИХ ЖИВОТНЫХ Соколкова И.В., студ. Научный руководитель доц., канд. вет. наук Крюковская Г.М. Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» Боюнчан Н.Р., научн. сотр. ФГБУ НИИ ОПП РАН КВЧ-терапию следует рассматривать как разновидность активационной терапии, которую можно применять самостоятельно, либо в комплексе с другими методами. Оптимальные режимы воздействия на организмы волн, генерируемые КВЧ-сигналы, приводят в действие механизмы, исправляющие нарушения, воздействующие извне на больной организм. В зависимости от частоты КВЧ-сигналы ускоряют биохимические реакции, влияя на ферментативную активность. Излучаясь во внешнее по отношения к клетке пространство, КВЧ-сигналы позволяют установить, усилить или ослабить межклеточную связь и взаимодействие: они влияют на дифференцировку клеток. Каждому нарушению функционирования соответствует генерация клетками организма КВЧсигналов на ―своих‖ частотах (обычно их называют резонансными), способствующих устранению нарушения. Соответственно и помощь организму при использовании КВЧвоздействий от внешних источников должна быть связана с увеличением интенсивности сигналов, генерируемых на этих частотах, до величины, достаточной для эффективного 79 управления восстановительными процессами. Происходит мобилизация собственных резервных сил организма на борьбу с нарушениями. В клинической практике чаще всего приходится иметь дело с ситуациями, когда резервные возможности организма еще полностью не исчерпаны, но их мобилизация самим организмом по тем или иным причинам происходит неудовлетворительно. В данном случае речь может идти об иммунной системе. Влияние КВЧ-излучений на организм, как известно, сводится как раз к воздействию на клетки и организацию клеточных систем, что позволило рассмотреть такое влияние как инструмент для восстановления гомеостаза. Зависимость биологического эффекта от частоты когерентного КВЧ-излучения, действующего на организм, носит остро резонансный характер, т. е. отклик на воздействие имеет место в узких полосах частот (обычно~10^-3-10^4 средней частоты). Основным средством распространения в организме на дальние дистанции информации, связанной с возбужденными КВЧ-колебаниями, является, нервная система. Очень важным является тот факт, что ЭМИ практически не имеет противопоказаний для применения в клинической практике. Решение о способе применения ЭМИ (самостоятельно или в комплексе с другими методами лечения) принимается врачом, исходя из целесообразности назначения активационной терапии в виде основного или вспомогательного метода лечения. На базе ветеринарной клиники, нами были проведены терапевтические сеансы мелких домашних животных аппаратом КВЧ-терапии ―Явь-1‖. Оптимальные режимы воздействия на организмы волн, генерируемых установками ―Явь-1‖ (выбор рабочей волны 5,6 мм или 7,1 мм), определялись состоянием животного. Низкоинтенсивное электромагнитное излучение миллиметрового диапазона оказывает положительное влияние на клиническое состояние собак с сердечно-сосудистыми заболеваниями, что сопровождается благоприятными изменениями центральной, церебральной гемодинамики и биоэлектрической активности головного мозга. Установлено достоверное снижение частоты сердечных сокращений. Излучение способствует возрастанию силы сокращений миокарда наряду с уменьшением сопротивления кровотоку. Улучшает показатели микроциркуляции, преимущественно за счет улучшения изменения трофики сосудов, стимулирует сократительную деятельность миокарда. Стабильность кроветворной системы при использовании КВЧ-излучения обеспечивается как выбросом резервной крови из депо, так и активизацией костного мозга. Также проводились физиотерапевтические сеансы в хирургической практике. Для активизации процессов регенерации после оперативных вмешательств, а также с целью предупреждения осложнений (расхождение швов, нагноений). Были отмечены положительные результаты в случаях при осложнениях, связанных с пониженной активностью репродуктивных процессов регенерации (медленное заживление раны, нагноение раны и т.д.). В первую фазу, когда наиболее выражены процессы альтерации тканей, эффект КВЧ проявляется в уменьшении интенсивности некролиза, перифокальных реакций. Характерно, что при воздействии КВЧ рубцы не бывают грубыми, не отмечается келоидизации. Эпителизация начинается также быстрее, равномерно с краев, что приводит к концентрическому стягиванию краев раны и формированию полноценного дермального регенерата. В итоге под воздействием КВЧ наступает заживление раны оптимальным путем, что приводит к сокращению сроков заживления. При гнойной хирургической патологии миллиметровое излучение выступает в качестве вспомогательного метода лечения, дополняя хирургические и другие проводимые в таких случаях мероприятия. КВЧ80 терапия, являясь исключительно эффективным методом лечения, не может удовлетвориться использованием одного инструмента, какими бы хорошими характеристиками он ни обладал. Но с учетом сказанного относительно резервных возможностей организма по мере неизбежного общего ослабления последнего лечебные воздействия на него должны быть все более слабыми и постепенными. Попытки форсированной КВЧ-мобилизации организма при отсутствии в нем необходимых для этого возможностей ничего, кроме вреда, принести не могут. Актуальной является отработка методов лечения, включающих в себя: выбор оптимального времени облучения животного; режим облучения; продолжительность курса лечения; индивидуальный подбор длины волны облучения или сочетаний длин волн; выбор места воздействия; сочетаемость КВЧ-терапии с медикаментозными средствами. Список литературы: 1. Крюковская Г.М. Морфофункциональные изменения при хроническом гастрите у собак и воздействии ЭМИ КВЧ миллиметрового диапазона // Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата ветеринарных наук. – М.: МГУПБ 2006. АММИВИТ В КОРМЛЕНИИ РАНООТБИТЫХ ТОНКОРУННЫХ ЯГНЯТ Сушкова З.Н.асп. научный руководитель проф., д.в.н. Камалов Р.А. д.в.н. РГАЗУ, Булуктаева О.А.асп. проф., д-р с.-х. наук Римиханов Н.И. Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» Сохранность народившихся ягнят обеспечивается выращиванием их под матерями, а потерявших своих матерей, - путем содержания на кормах стартерах с добавками БАВ или заменителях овечьего молока (ЗОМ). Суть всех методов заключается в том, чтобы обеспечить молодняк энергией, питательными и биологически активными веществами в доступной форме и в достаточном количестве для нормального роста и развития растущего организма. Ранний отъем является одним из методов интенсификации овцеводства. В условиях дойки овец трудно обойтись без раннего отъема ягнят. Кроме того, в мясо-шерстном овцеводстве он позволяет уплотнять ягнения, получать больше ягнят, интенсивнее их выращивать и в результате значительно увеличить производство баранины и повысить рентабельность отрасли. Однако в горно-отгонном овцеводстве выращивание ягнят на ЗОМ не всегда эффективно, из-за трудностей в соблюдении зооветеринарных требований, повышения затрат, связанных с приобретением ЗОМ, технологического оборудования, ветпрепаратов и привлечения дополнительной рабочей силы. При полной отбивке ягнят от матерей, что является основным требованием при выращивании на ЗОМе, у последних значительно снижается стимул к поддержанию 81 лактационной доминанты. Поэтому в своих исследованиях мы испытали отбивку ягнят частичную и с месячного возраста. Кормление ягнят осуществлялось растительными кормами и комбикормами стартерного типа, приготовленными по разработанным нами рецептам с высокой энергетической и протеиновой питательностью. Сбалансирование рационов молодняка по комплексу биологически активных веществ и минеральным элементам обеспечивали введением в комбикорма аммивита – натурального комплекса легкоусвояемых биологически активных веществ, получаемых из дрожжей – сахаромицетов виноградного сусла. Научно-хозяйственный опыт провели в агрофирме «Чох» Гунибского района Республика Дагестан на 80 ягнятах дагестанской горной породы зимнего ягнения. По принципу аналогов из них сформировали четыре подопытные группы по 20 голов в каждой. Для содержания отобранного поголовья ягнят оборудовали кошару-тепляк и оборудовали его кормушками для концентрированных кормов, сена, силоса и водопойными корытами, разделили на четыре равные по площади оцарки. В каждом оцарке имелись отдельные двери для впуска ягнят к маткам, и этим была обеспечена возможность проводить их групповое кормление. В холодное время и в первые дни опыта ягнят в оцарках обогревали инфракрасными лампами-облучателями ОВИ-1. В молозивный период (первые 3 -4дня) маток с ягнятами содержали в тепляке. В последующем овцематок разместили отдельно от ягнят под навесом. Раздельное содержание животных способствовало улучшению микроклимата в тепляке и положительно влияло на рост и развитие ягнят. Исследования кормов и молока проводили по общепринятым методам зоотехнического анализа. Ягнят взвешивали в день рождения и ежемесячно в период до отбивки. В месячном и 4-месячном возрасте у них измеряли промеры статей тела: высоту в холке, косую длину туловища, обхват груди, ширину груди, глубину груди и обхват пясти. Поедаемость кормов молодняком устанавливали путем учета заданных кормов и их остатков, количество молока, потребленного (высосанного) ягненком - путем взвешивания животных до и после сосания матки. В первый месяц жизни, начиная со второй декады, проводили приучение ягнят к поеданию сена и комбикорма. Для интенсивного приучения ягнят поеданию этих кормов, в сутки 4-5 раз в небольших количествах задали в ясли люцерновое сено и примерно столько же раз подсыпали в кормушки комбикорма. Количество подпусков ягнят на подсос к матерям постепенно сокращали. В начале лактации ягнят на подсос подпускали к матерям 4-3 раза, а в конце – два - один раз в день. Ягнята контрольной группы находились от рождения до отбивки на подсосе и получали комбикорм, изготовленный по стандартному рецепту. Ягнята подопытной II группы - первый месяц были на подсосе и получали комбикорм такой же, как I группы, а с месячного возраста получали молоко, остающееся в вымени матери после ее дойки (частичная отбивка). Ягнята подопытной III группы - первый месяц были на подсосе, с месячного возраста частичная отбивка, получали комбикорм-стартер № 1, изготовленный по нашему рецепту. Ягнята подопытной IV группы - в первый месяц на подсосе, с месячного возраста частичная отбивка, получали комбикорм-стартер № 2 (табл. 1). 82 Таблица 1 - Рецепты комбикормов стартерного типа для ягнят Ингредиенты, % по массе Стандарт (контроль) Рецепт 1 Рецепт 2 Зерно кукурузы 35,0 15,0 20,0 Зерно ячменя 30,0 15,0 15,0 Зерно овес 11,5 12,0 Отруби пшеничные 12,0 10,0 10,0 Соль (мелкий помол из зерен сои термической обработки) 5,0 15,0 12,0 Жмых подсолнечниковый 5,0 5,0 7,5 Витаминная травяная мука 9,5 5,0 7,5 Премикс ПО-1 0,5 0,5 0,5 Костная мука 1,0 1,0 1,0 Мел кормовой 1,0 1,0 1,0 Соль поваренная 1,0 1,0 1,0 В 1 кг корма содержалось: Обменной энергии, МДж 10,12 10,76 11,44 Сухого вещества, г 836,0 841,0 856,1 Сырой протеин, г 136,2 195,6 189,9 Кальция, г 3,91 4,97 4,27 Фосфора, г 4,24 5,73 5,72 Серы, г 1,51 1,76 1,62 Каротина, мг 24,28 12,15 12,12 Результаты учета кормов, потребленных ягнятами подопытных групп за молочный период (период подсоса) - первый месяц жизни и в период выращивания на обычных кормах (2-4 месяца) нами были проанализированы. Эти данные свидетельствуют о том, что в первый месяц жизни ягнята всех групп получали питательные вещества в основном за счет материнского молока; животные I группы высасывали за сутки 922,5 г молока, что меньше, чем во П, III и IV группах соответственно на 15,9%, 27,0 и 37,0%. За этот период в потреблении комбикорма и сена существенных различий между ягнятами подопытных групп не наблюдалось. В целом, из-за более высокой молочности матерей за период подсоса уровень кормления ягнят II, III и IV групп был соответственно выше контроля, в среднем на 10,9%, 19,6 и 23,9%. В количестве корма, потребляемого ягнятами в период доения их матерей столь значительной разницы, какая наблюдалась в первый месяц не отмечено. Анализ фактического потребления кормов животными в период выращивания от 2 до 4-месячного возраста свидетельствует о том, что ягнята контрольной группы получили соответственно на 15,8,13,2 и 10,5% больше питательных веществ, чем животные II, III и IV групп. Очевидно, более высокий уровень потребления питательных веществ ягнятами контроля связан с содержанием их под матерями на подсосе. Этими животными высосано в 3,5-3,7 раза больше молока, чем их сверстниками из опытных групп. Однако необходимо отметить, что различия в потреблении энергии и питательных веществ у ягнят в контроле и в III и IV опытных группах за весь период выращивания (со дня рождения и до 4-месячного возраста) практически сгладились. Ягнята контрольной группы за весь период подсоса (4 месяца) потребили 81,9 корм.ед., 76,52 кг сухого вещества, 12,34 кг 83 переваримого протеина; II опытной - 72,8,72,01 и 10,95; Ш - 75,8,73,7 и 13,08 и IV опытной 78,2 корм.ед., 74,8 кг сухого вещества и 13,27 кг переваримого протеина. Отмеченная нивелировка, очевидно, обеспечена за счет более высокой молочности матерей ягнят Ш и IV опытных групп в подсосный период (первый месяц лактации) и скармливанием молодняку ранней отбивки комбикормов- стартеров, изготовленных по разработанным нами рецептам. В процессе выращивания ягнят поддойных групп наблюдались также различные эестерьерные различия между животными, но они оказались статистически недостоверными (Р0,05). Таким образом, наиболее полноценное развитие получили ягнята, находящиеся на подсосе под матерями получавшие стандартный комбикорм, что связано с более высоким потреблением материнского молока. У животных этой группы также наблюдается наилучшее переваривание корма. Поэтому, если ставится цель наиболее быстрого получения полноценно-развитого потомства, то рекомендуется их кормление осуществлять на подсосе под матерями и в рацион молодняка добавлять стандартные комбикорма. В этом случае ягнята получают наиболее питательный и сбалансированный рацион, а овцематок можно доить с месячного возраста их ягнят. 1. Список литературы: 2. Gibney M.L., Wallker D.M. New prospects for the sheep industry with sheep milk replaser for lambs. – AGR Newsbell. Neth., 1973, №10, p.1-3. 3. Киличов Т.Р. Наш опыт приготовления и скармливания гранулированных кормов // Овцеводство. – 1976 - №3. – с.28. 4. Даниленко И.А., Ткачева Н.Н. Выращивание мясошерстного молодняка на разных рационах // Овцеводство. – 1971. - №4. – с.25-26. ФИЗИОЛОГИЧЕСКИЙ СТАТУС МИНЕРАЛЬНОГО ОБМЕНА ЯГНЯТ ПРИ ИСПОЛЬЗОВАНИИ В ИХ КОРМЛЕНИИ АММИВИТА Сушкова З.Н., асп. Научный руководитель проф., д.в.н. Камалов Р.А. РГАЗУ Булуктаева О.А., асп. Проф., д-р с.-х. наук Римиханов Н.И. Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» В своих исследованиях мы изучали баланс кальция и фосфора в условиях выращивания молодняка овец по различным схемам кормления при включении в состав кормосмесей - аммивита. Слово аммивит является аббревиатурой названий основных компонентов белка и натурального комплекса биологически активных веществаминокислот, минеральных веществ и витаминов. Аммивит - кормовая добавка, получаемая из дрожжей, сахаромицетов виноградного сусла. В составе аммивита наряду с другими жизненно важными веществами содержатся 7 макроэлементов и 12 микроэлементов. В научно-хозяйственном опыте, проведенном на ягнятах тонкорунной мясо- шерстной 84 дагестанской горной породы зимнего ягнения в агрофирме «Чох» Гунибского района в Республике Дагестан, разница в кормлении ягнят контрольной и опытных групп состояла в том, ягнята контрольной группы находились на традиционном, хозяйственном рационе- от рождения до отбивки они были на подсосе под матерями и получали комбикорм, изготовленный по стандартному рецепту. Животные 2 группы –первый месяц были на подсосе и получали комбикорм, приготовленный по стандартному рецепту, а с месячного возраста их маток доили, и ягнята получали молоко остающееся в вымени матери после ее дойки. Молодняк 3 группы первый месяц был на подсосе, после частичной отбивки и поддоя маток, они получали молоко остающееся в вымени матерей и комбикорм стартерного типа с добавление в среднесуточный рацион 5 г. аммивита; ягнята 4 группы в первый месяц были на подсосе под матерями, с месячного возраста молодняк получал молоко матери остающееся в ее вымени после дойки и комбикорм стартерного типа с кормовой добавкой аммивита, в количестве 10 г.на голову в сутки. На фоне научно хозяйственного опыта, после 50 дней дифференцированного кормления молодняка, были проведены физиологические, (балансовые), опыты на подопытных животных по общепринятой методике. Результаты этих исследований приведены в табл.1. Уровень потребления кальция и фосфора с кормами в опытах соответствовал существующим нормам кормления молодняка мясо-шерстных овец. Как свидетельствуют данные табл.1, соотношение кальция и фосфора в рационах животных колебалось в пределах 1,91-1,79:1,0. Таблица 1.Баланс и использование молодняком овец минеральных веществ Группа Принято с Выделено, г Отложено в Усвоено в % кормом,г теле, г от принятого с калом с мочой Баланс и использование кальция I 5,98 3,36 0,07 2,55 42,64 II 6,02 3,67 0,06 2,29 38,03 III 6,24 3,72 0,08 2,44 39,10 IV 6,16 3,68 0,08 2,40 38,99 Баланс и использование фосфор I 3,12 1,65 0,02 1,45 46,47 II 3,24 1,88 0,02 1,34 41,35 III 3,48 2,01 0,03 1,44 41,37 IV 3,31 1,86 0,03 1,42 42,90 Баланс минеральных веществ в организме молодняка во всех группах был положительным. Из анализа данных табл. 1 следует, что содержание ягнят на материнском молоке в сочетании с обычными кормами способствует более высокому усвоению как кальция, так и фосфора. Так, молодняком I опытной группы усвоено их 42,64-46,47% от принятого количества, а ягнятами II опытной группы - на 4,61-5,12% ниже. Животные III и IV опытных групп по обмену минеральных веществ занимали промежуточное положение между ягнятами контрольной и II опытной группы. Взвешивание ягнят в конце каждого периода выращивания позволило выявить влияние, оказываемое на их рост и развитие изучаемого фактора кормления. 85 В возрасте 1 мес. средняя масса тела ягнят I группы составила 9,57 кг. Масса тела их сверстников из II, III и IV опытных групп была соответственно на 7,5, 11,9 и 14,1% больше, чем в I группе. Наиболее высокий среднесуточный прирост массы тела за этот период наблюдался у ягнят III и IV опытных групп - 219,6-225,8 г, что на 23,3-26,7% было выше, чем в контроле. Очевидно, более высокая живая масса ягнят II, Ш и IV опытных групп и более высокий среднесуточный прирост массы тела у этих животных в месячном возрасте обусловлены повышенной молочностью их матерей. По данным Х.Е.Кесаева, И.М.Магомедова, А.И.Николаева, ИВ.Барабанщикова, В.Ф.Пак и др. исследователей, существует высокая положительная связь между молочностью овцематок и приростом массы тела ягнят в первый месяц жизни. В 4-месячном возрасте, наоборот, животные контрольной группы имели наиболее высокую живую массу - 24,8 кг, а ягнята III и IV опытных групп соответственно 22,3 и 22,1 кг или на 7,7-8,4% ниже, чем во II опытной группе. Достоверно меньшую, чем контрольные животные, на 3,88 кг или 15,6% (Р< 0,05) живую массу к отбивке имели ягнята второй группы. Среднесуточный прирост за период выращивания (со 2 по 4-й месяц жизни) наиболее высоким был у ягнят контрольной группы - 171 г, что было выше, чем у ягнят П, Ш и IV опытных групп соответственно на 29,9, 20,3 и 22,7%. Среднесуточный прирост массы тела животных подопытных групп за весь период опыта (от рождения до 4-мес. возраста) составил в контрольной группе 172,9 во II - 140,1, в III и IV опытных группах - 156,8 и 156,6 г соответственно. Анализируя данные, приведенные в табл.1, можно отметить, что уровень прироста массы тела ягнят подопытных групп, в период после молочного выращивания (со 2 по 4-й месяц жизни) значительно ниже, чем в первый месяц. Очевидно, это связано с тем, что молодняк меньше получал материнского молока в связи с дойкой маток. Аналогичные данные получены и в исследованиях М.И. Абулашвили. В процессе выращивания между ягнятами подопытных групп наблюдались также различные экстерьерные различия. В месячном возрасте основные промеры тела ягнят Ш и IV опытных групп были выше, чем у их сверстников из контрольной группы: по высоте в холке соответственно на 8,9 и 6,6%, по косой длине туловища - на 3,5 и 3,8%, по ширине груди - 4,32 и 6,48%, по глубине груди - на 2,70 и 3,78% и по обхвату пясти на 6,8 и 8,2%. Отмеченные различия по величине промеров тела между ягнятами подопытных групп к 4-месячному возрасту уменьшились и были несущественными. Это, по всей вероятности, объясняется выравниванием поступления питательных веществ в организм ягнят в связи с переводом их на кормление вволю обычными кормами. Различия, которые отмечаются между контрольной и опытными группами оказались статистически недостоверными (Р>0,05). Мясную продуктивность баранчиков подопытных групп изучали в конце опытов по результатам контрольного убоя (по 3 гол.из каждой группы) на Хасавюртовском мясокомбинате. Учитывали съемную и продуктивную массу ягнят, массу парной и охлажденной туши, массу внутреннего жира. 86 По убойной массе животные контрольной группы превосходили ягнят П, Ш и IV опытных групп соответственно на 23,6, 10,3 и 10,8%. Разница по убойной массе достоверна (Р<0,05). Следует отметить, что данные убойного выхода молодняка сравниваемых групп близки между собой - 48,8-48,3%. В результате обвалки туш наименьший выход (75,25%) и наименьшее количество мякоти (6,96 кг) были получены от животных II опытной группы, а наибольший выход (76,94%) и наибольшее количество мякоти (8,71 кг) - от животных контрольной группы. По выходу мякоти и по ее количеству разница между животными I и III-IVгрупп составила соответственно 0,9-1,1% и 0,72-0,86 кг (Р>0,05). Таким образом, наилучшее усвоение кальция и фосфора наблюдается у ягнят, находящихся на молочном подсосе и получающих стандартный комбикорм. Однако в месячном возрасте масса тела ягнят контрольной группы была ниже, массы ягнят из опытных групп. Также, в опытных группах, наблюдался более высокий среднесуточный прирост. Очевидно, это связано с повышенной молочностью их матерей. В 4-месячном возрасте наблюдались противоположные явления, что объясняется доением их матерей и отчуждением молока в их рационе. Следовательно, содержание ягнят на материнском молоке в сочетании в их кормлением сеном, силосом, комбикормом с добавками 5 и 10 г/сутки на голову амивита, способствуют более высокому усвоению минеральных веществ, в том числе кальция и фосфора, а также более высокому уровню продуктивности молодняка тонкорунных мясо – шерстных овец. Список литературы: 1. Hudson A.Q. Nutrition and management of early weaned lambs. – Sheep. Jodt. Koiser, 1970, vol.50, 9, p. 23-28. 2. Абулашвили М.И. Влияние дойки на продуктивные качества тушинских маток и их приплод //Автореф. дис...канд. с/х.н., Дубровицы, 1978,-17 с. 3. Попов Н.Ф. Важные исследования особенностей пищеварения и обмена веществ у жвачных // Животноводство. – 1960. №3. – с.24-29. 4. Ахмедов Э.Н., Баймурзаев А., Ферзалиев Т. и др. Химический состав и питательная ценность кормов в Дагестанской АССР / Рекомендации. – Махачкала, 1986. – 22 с. 87 КОМПЛЕКСНАЯ И ЭНЕРГЕТИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА КОРМОВ ЧУВАШСКОЙ РЕСПУБЛИКИ Сушкова З.Р. асп., РГАЗУ Ананьев Л.Ю., асп. Проф., д-р с.х. наук Римиханов Н.И., доц., канд. биолог. наук Боев В.И., Кафедра « Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» В настоящее время в кормлении животных используют более 500 различных кормов и кормовых добавок. Основные требования, предъявленные к отдельным кормовым средствам, установлены государственными и отраслевыми стандартами. Наряду со стандартизацией кормов проводят оценку их технологических, энергетических и комплексных питательных свойств. В связи с переходом на оценку питательности кормов и рационов по обменной энергии, нами была проведена работа по оценке энергетической питательности кормов республики Чувашия в обменной энергии (МДЖ ОЭ). Для расчетов брали данные химического состава кормов, наиболее типичных для региона, из справочных источников республиканской агрохимлаборатории, а также коэффициентов перевариваемости из справочника «Корма СССР», под редакцией проф. М.Ф.Томме (1961). Расчеты энергетической питательности кормов проводили с использованием уровней регрессий по отдельным видам животных («Новое в кормлении животных», М. 2012 г. Под редакцией акад. В.И. Фисинина, В.В. Калашникова). Согласно этой методики нами были использованы следующие уравнения регрессий: а) Для крупного рогатого скота ОЭ = 17.46пп + 31.23пж+13.65пк+14.78пБЭВ; б) Для овец и коз ОЭ = 17.71пп+ 37.89пж+13,44пк+14.78пБЭВ в) Для свиней ОЭ = 20.85пп+36.63пЖ+ 14.27пк+16,95пБЭВ г) для лошадей ОЭ = 19.64пп+35.43пж+15.95пк+19.95пБЭВ Полученные результаты по оценке обменной энергии кормов района представлены нами в табл. №1. 88 Таблица 1 - Энергетическая ценность кормов Чувашии Кукуруза зеленая Суданка Тимофеевка Клевер Люпин чувашский Люцерна Подсолнечник Ботва топинамбура Морковь кормовая (Куркунская) Пырей Рожь (цвет.) Хмель Овес Картофель ЭКЕ МДж ОЭ Лошади ЭКЕ МДж ОЭ ЭКЕ МДж ОЭ ЭКЕ МДж ОЭ Название корма Энергетическая ценность 1 кг корма для: КРС Овцы Свиньи К/Е 11,8 16,3 19,5 22 1,24 1,77 2,67 2,34 0,12 0,18 0,27 0,23 1,26 1,79 2,69 2,38 0,13 0,18 0,27 0,24 1,40 2,00 2,98 2,66 0,14 0,20 0,30 0,27 1,38 1,97 2,98 2,59 0,14 0,20 0,30 0,26 12,7 1,37 0,14 1,38 0,14 1,56 0,16 1,51 0,15 18,2 14,5 2,25 1,63 0,22 0,16 2,27 1,65 0,23 0,17 2,56 1,84 0,26 0,18 2,49 1,82 0,25 0,18 13,5 1,45 0,14 1,47 0,15 1,65 0,16 1,59 0,16 12,5 1,31 0,13 1,31 0,13 1,50 0,15 1,42 0,14 27,5 22,7 42,3 98,3 27,5 3,41 1,99 4,71 3,13 2,64 0,34 0,20 0,47 0,31 0,26 3,45 2,02 4,92 3,37 2,65 0,35 0,20 0,49 0,34 0,26 3,85 2,25 5,40 3,63 3,03 0,38 0,23 0,54 0,36 0,30 3,78 2,22 5,21 3,52 2,86 0,38 0,22 0,52 0,35 0,29 Изучение анализа кормов региона было проведено лишь после рассмотрения особенностей его географического положения, водных ресурсов, климата. Наибольшие площади в республике занимают зерновые и кормовые культуры, их удельный вес составляет 42,3% и 45,7% соответственно. Из зерновых культур в республике выращивают: яровую и озимую пшеницу, овес, рожь. В центральных и юго-восточных районах республики возделываются зерновые, картофель, овощи и кормовые культуры. Наши исследования показали (табл. №1), что наибольшую энергетическую ценность имеют бобовые кормовые культуры и зернофураж. Таким образом, проведенная работа свидетельствует, что наиболее широкое распространение в республике Чувашия имеют бобовые кормовые культуры, такие как, клевер и люцерна, их энергетическая питательность составила, соответственно ( для крупного рогатого скота 2,34 и 2,25 мДж, что является характерным для кормовых культур возделываемых в средней полосе РФ. 89 ПОВЕРХНОСТНАЯ ПИОДЕРМА МЕЛКИХ ДОМАШНИХ ЖИВОТНЫХ. ЦИТОЛОГИЧЕСКАЯ ДИАГНОСТИКА ПОВЕРХНОСТНОЙ ПИОДЕРМЫ Тарасова Л.С., асп. Научный руководитель проф., д-р вет. наук, академик РАН Уша Б.В. Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» Пиодерма – это гнойное поражение кожи бактериальной природы. По классификации пиодерма может быть поверхностной, которая вовлекает только поверхностные слои кожи – (эпидермис и/или волосяные фоликулы – «фолликулит») или глубокой, которая вовлекает глубокие слои кожи. Поверхностная пиодерма - наиболее распространенный класс бактериальных инфекций у мелких домашних животных. Поверхностная пиодерма чрезвычайно часто встречается у собак и немного реже у кошек. Вероятная причина тому кроется в более высокой общей заболеваемости собак болезнями, предрасполагающими к росту бактериальных штаммов. Повреждения локализованы в эпидерме и волосяных фолликулах. Клинические проявления могут быть различными. У пациентов наблюдаются следующие серьезные поражения: папулы, пустулы, корки, воротнички, гиперпигментированные пятна. Этиология. В большинстве случаев причиной развития поверхностной пиодермы является нарушение обменных процессов в коже. В некоторых случаях заболевание возникает после купания животного в грязной воде; у рабочих собак, вынужденных передвигаться по местности, заросшей колючей или жесткой густой растительностью; иногда — после стрижки или тримминга, если произошло заражение эктопаразитами. Чаще всего пиодерма является вторичным заболеванием. Первичными могут быть: паразитарное заболевание кожи (демодекоз, дерматофитоз), аллергия (пищевая аллергия, атопия), некоторые внутренние болезни и нарушения в волосяных фолликулах. В 90 % случаев пиодермии у животных причиной заболевания служат бактерии рода Staphylococcus, в том числе Staphylococcus pseudointermedius (ранее известный как S. intermedius), S. schleiferi и S. aureus. Несколько реже заболевание вызывают бактерии родов Streptococcus и Enterococcus, а также Pseudomonas aeruginosa, Proteus mirabilis, E. coli, Enterobacter и в атипичных случаях — Actinomyces, Nocardia и Mycobacterium. Патогенез. У бактерий есть несколько различных путей, через которые они проникают в кожу: • прямое попадание через волосяные фолликулы • проникновение через межфолликулярный эпидермис • фокально проникают в более глубокие слои кожи • систематически, через кровь или лимфатические сосуды. Предрасполагающие факторы. Список предрасполагающих факторов к поверхностному бактериальной фолликулиту длинный и включает в себя: • индивидуальная предрасположенность пород; • индивидуальная резистентность животного; 90 • поражения волосяных фолликул (воспаление, обструкция, атрофия, дисплазия, дистрофия); • дефекты кератинового слоя (себорея); • аллергический дерматит (особенно атопия); • гипотиреоз; • гиперадренокортицизм; • плохой уход за животным; • эктопаразиты; • демодекоз; • другие иммунодепрессивные заболевания. Клинические симптомы. Признак поверхностного фолликулита - поражение волосяных фолликул. Классический фолликулит начинается как эритематозная папула. Затем идет формирование пустулы с гноем, типично ассоциированными с волосяными фолликулами. Когда пустула разрывается, на поверхность выходит белковый экссудат с клеточными элементами, подсыхая он образует корку различной толщины над пораженными волосяными фолликулами. После удаления корок остаются эпидермальные воротнички, которые могут сливаться в масштабные поражения. Заключительный этап фолликулярного повреждения - гиперпигментированные пятна – это круглая область на месте корки и воротничка. Процесс сопровождается облысением и зудом разной выраженности. Местами локализации, как правило, будут являться подмышечные впадины, бедра, паховая область, задние конечности и спина. Предполагаемое время прогрессирования повреждений от папулы до пятен составляет 10 - 14 дней. Диагноз. Минимальные диагностические тесты на большую часть поверхностных пиодерм должны включать соскобы кожи (глубокие и поверхностные), цитологию кожи и биопсию кожи. Дифференциальный диагноз включает любые другие заболевания, которые имеют причастность к воспалительным заболеваниям фолликулов. Наиболее распространенными является демодекоз (при котором папулы не образуются, наиболее удобный метод дифференциальной диагностики — микроскопическое исследование кожных соскобов), дерматофитоз, дерматит, вызванный грибами рода Malassezia (диагностируются при цитологии кожи и выявлении участков роста колоний грибковых микроорганизмов), листовидная пузырчатка (и редкие иммунообусловленные заболевания), мультиформная эрритема, актинодерматоз, эпителитрофическая Т-клеточная лимфома, цинк – зависимый дерматоз, дерматофилез (эти заболевании можно идентифицировать с помощью патогистологического анализа кожных биоптатов). Цитология. Обнаружение кокков из поражений кожи при помощи цитологии является весомым диагностическим тестом и настоятельно рекомендуется для правильной диагностики. Необходимо использовать соответствующие методики, как для взятия образцов, так и для исследования их. Цитология необходима в следующих ситуациях: (1) имеются типичные поражения; или (2) типичные поражения (пустулы) не представлены или незначительно выражены; или (3) выполнен посев на среду для выявления бактерий. Это выполняется со следующей целью - если имеется положительная цитология и отрицательные данные культурирования, то необходимо повторить культурирование, прежде чем ставить диагноз стерильного пустулезного заболевания. 91 Наличии кокковых бактерий в цитологических образцах, взятых из типичных поражений, с высокой степенью вероятности говорит о бактериальной инфекции; когда они ассоциируются с воспалительными клетками и внутриклеточными кокками из неповрежденных пустул, инфекция считается доказанной. Отсутствие или незначительное количество бактерий и отсутствие воспалительных клеток или внутриклеточных кокков не исключает наличие бактериальной инфекции. Воспалительные клетки и фагоцитоз могут отсутствовать у животных с лежащим в основе иммуносупрессивным заболеванием или у животных, которых лечили иммуносупрессивными препаратами, такими как глюкокортикостероиды. Лечение. Большая часть штаммов Staphylococcus pseudointermedius устойчива к пенициллину, ампициллину и тетрациклину. В общем случае показано проведение системной антимикробной терапии, которую рекомендуется дополнить применением поверхностных противомикробных препаратов в виде специальных шампуней (обычно содержащих перекись бензоила или хлоргексидин). Курс противомикробной терапии продолжается до полного исчезновения кожных проявлений заболевания и дополнительно 7 дней. Обычно весь курс терапии поверхностной пиодермы занимает 3 недели, хотя в некоторых случаях лечение продолжается 6 недель. Самые лучшие результаты дает применение таких противомикробных препаратов, как клиндамицин, линкомицин, оксациллин, цефалексин, сульфаниламиды, потенцированные триметопримом, амоксициллин, потенцированный клавулоновой кислотой, а также энро- или марбофлоксацин. Список литературы: 1. Уша Б.В., Беляков И.М., Пушкарев Р.П. Клиническая диагностика внутренних незаразных болезней животных. — М.: Колос, 2003. 2. Уша Б.В., Щербаков Г.Г. и др. Внутренние болезни животных. Санкт-Петербург, изд-во «Лань». – 58 п.л. ИССЛЕДОВАНИЕ ГЕМАТОЛОГИЧЕСКИХ И БИОХИМИЧЕСКИХ ПОКАЗАТЕЛЕЙ ПРИ БОЛЕЗНЯХ ОРГАНОВ ПИЩЕВАРЕНИЯ ЖИВОТНЫХ Толмачева Г.С., асп. Научный руководитель проф., д-р вет. наук Ленченко Е.М. Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» При воздействии ряда экологических, техногенных факторов, а также бесконтрольном применение антибактериальных препаратов отмечается довольно широкое распространение дисбактериозов кишечника животных [5]. Установлено, что увеличенное поступление грамотрицательных бактерий, главным образом, токсигенных энтеробактерий из кишечника в воротную вену, затем системный кровоток приводит к снижению общей резистентности организма и развитию патологических процессов. Наблюдается связь между развитием дисбактериозов кишечника и состоянием иммунитета к эндотоксину грамотрицательных 92 бактерий путем определения соотношений между численностью токсигенных эшерихий и напряженностью антиэндотоксинового иммунитета при экспериментальном и спонтанном заражении [8,9,10]. Цель работы – изучить динамику гематологических и морфологических показателей при изменении видового состава микроорганизмов микробиоценозов кишечника животных с синдромом желудочно-кишечных болезней Объектом исследования явились кролики породы «Chinchilla» живой массой 2,5-3 кг (n=20), крысы стока «Wistar» живой массой 100-130 г (n=30), у всех контрольных и опытных животных брали кровь для гематологических исследований. Перед проведением опытов животных по принципу аналогов разделили на 4 группы: 1 и 3 группы (опыт) – кролики и крысы с синдромом желудочно-кишечных болезней; 2 и 4 группа (контроль) – клинически здоровые животные, соответственно. Динамику изменений гематологических и биохимических показателей крови и сыворотки крови животных определяли на анализаторе крови «ABACUSJUNIORVET, DIATRON» (Австрия), «BioChemFC-360» (США). Для определения антилизоцимной активности сыворотки крови в опыте использовали суточную культуру Micrococcuslysodeicticus, для определения бактерицидной активности – Е.сoli. (Дорофейчук В.Г.,1983). Для гистохимических исследований срезы окрашивали: для общих целей гематоксилином и эозином; на соединительную и мышечную ткани – по Ван Гизону, по Маллори; на фибрин – по Шуенинову; на жир – суданом-3; на микроорганизмы – по Крантцу, в соответствии с методическими рекомендациями «Основы гистологии с гистологической техникой» (М., 1971),«Гистохимия иммунокомпетентных органов и цитохимический анализ крови» (Краснодар, 2000). Для выявления изменений экологического равновесия в микробиоценозах кишечника учитывали КОЕ микроорганизмов (lg/г) в определенном объеме (0,1 мл) разведения feces животных [2]. Результаты экспериментальных данных обрабатывали методом статистического анализа с использованием критерия достоверности по Стьюденту, результаты считали достоверными при р≤0,05. Клинические признаки животных с синдромом желудочно-кишечных болезней (опыт) характеризовались угнетением общего состояния и отсутствием реакции на внешние раздражители. Слизистые оболочки ротовой полости имели бледно-розовый цвет с синеватым оттенком. Шерстный покров взъерошенный, сухой, в области промежности и хвоста запачкан жидкими каловыми массами. Дефекация учащена, каловые массы жидкие, серовато-желтые, с примесью пузырьков газа и слизи. При несбалансированном кормлении животных, нарушался процесс переваривания и усвоения углеводов и клетчатки, остатки корма сбраживались, кишечник наполнялся газами и расширялся, увеличивалась нагрузка на печень, изменялся состав желчи, снижалась выработка поджелудочной железой ферментов. С целью определения степени усвоения компонентов корма, в различных отделах желудочно-кишечного трактапроводили микроскопическое исследование feces, что позволяло детально изучить содержимое кишечника, степень усвоения компонентов корма в желудочно-кишечном тракте, состояние гепатобилиарной системы, обнаружить эндопаразитов, визуально оценить состояние микрофлоры кишечника. Всего готовили пять препаратов: нативный препарат – для исследования остатков непереваренной белковой пищи (мышечные волокна, соединительная ткань), остатков непереваренной углеводной пищи (переваренная и непереваренная клетчатка), наличия воспалительных элементов (слизи и заключенных в ней лейкоцитов, эритроцитов, цилиндрического эпителия); обзора элементов 93 жирового обмена (остатки непереваренных и расщепленных жиров – выявление капель, игл, глыбок); препарат с глицерином – на наличие цист простейших и яиц гельминтов; препарат с раствором Люголя – с целью выявления нерасщепленных или частично расщепленных – амилодекстрина, эритродекстрина, вне- и внутриклеточного крахмала и ацидофильной флоры; препарат с метиленовой синькой – для дифференциации нейтрального жира и капель жирных кислот; препарат с уксусной кислотой – для выявления игл и глыбок солей жирных кислот. При микроскопическом исследовании feces животных 3 группы (опыт) на фоне большого количества мелкозернистой массы feces, встречались непереваренные фрагменты мышечной ткани с выраженной исчерченностью, единичные лишенные исчерченности мышечные волокна и небольшое количество солей жирных кислот (мыл), наблюдались мелкие бесцветные капли жира, расщепленный крахмал. На препарате с суданомIII обнаруживались капли нейтрального жира, кристаллы жирных кислот в виде тонких игл. При исследовании 4 группы (контроль) обнаруживались единичные переваренные мышечные волокна, непереваренные – отсутствовали. При количественном учете бактерий в микробиоценозах кишечника животных с синдромом желудочно-кишечных болезней (опыт) количество лактобактерий составляло 5,70±0,54-7,70±0,22 КОЕ lg/г, рост бифидумбактерий наблюдался в разведении 10–9, тогда как у животных (контроль) количество лактобактерий составляло 9,5±0,14-10,6±0,25 КОЕ lg/г, рост бифидумбактерий наблюдался в разведении 10–8. Количество энтеробактерий составило 18,94+0,36 КОЕ lg/г – опыт, 17,2+0,6 КОЕ lg/г – контроль. Основную долю микроорганизмов в микробиоценозах кишечникаживотных с синдромом желудочнокишечных болезней составляли грамотрицательные бактерии семейства Enterobacteriaceae: Escherichiacoli, Proteus и Citrobacter, Klebsiella, Enterobacter, Morganella. Грамположительные факультативно-анаэробные микроорганизмы представлены бактериями рода Staphiloccocus, Streptococcus, Enterococcus. Отсутствие у животных в первые недели жизни полноценного кишечного микробиоценоза, способного обеспечить колонизационную резистентность кишечника, создаѐт условия для возникновения массовых желудочно-кишечных болезней. При контакте новорожденных животных с патогенной микрофлорой в первые дни жизни развивается дисбактериоз, клинически проявляющийся диареей, как следствие различного механизма действия и реализации патогенных свойств микроорганизмами за счет способности к адгезии на эпителии соответствующих экологических ниш, инвазии, способности противостоять фагоцитозу и продукции токсинов.Инвазивные энтеробактерии проникают в эпителиальные клетки, повреждают их, размножаются, индуцируют воспаление и изъязвление слизистой оболочки. Фактором патогенности энтерогеморрагических штаммов E. coli, является способность продуцировать веротоксины, оказывающие цитопатическое действие, характеризующееся вакуолизацией цитоплазмы и кариопикнозом пораженных клеток. При исследовании динамики клинико-морфологических и иммунологических показателей кроликов с синдромом желудочно-кишечных болезней наблюдалось понижение гемоглобина (98,05±0,17 г/л), количества эозинофилов, сегментоядерных нейтрофилов (19,03+0,16 %), общего белка (45,00±0,15 г/л), глюкозы (4,00±0,17 моль/л) и щелочной фосфатазы (5,01±0,12 ед/л); повышением гематокрита (54,09±0,17%), количества лейкоцитов (11,70±0,18 тыс/мкл), базофилов (3,0±0,3 %), палочкоядерных нейтрофилов (2,05±0,18 %), лимфоцитов (69,00±0,16 %), моноцитов (7,07±0,16 %), общего билирубина (16,20±0,16 94 мкмоль/л), аспартатаминотрансферазы (156,00±0,17 ед/л),аланинаминотрансферазы (113,00±0,16 ед/л) и лактатдегидрогеназы (145,00±0,17 ед/л), мочевины (9,20±0,17 моль/л), креатинина (153,80±0,17 мкмоль/л), альбумина (53,80±0,16 г/л), α-амилазы (325,00±0,17ед/л). В зависимости от степени проявления клинических признаков наблюдалось изменение показателей водно-электролитного обмена (калий – 12,0±0,34 моль/л; натрий – 138±1,13 моль/л). При определении активности лизоцима сыворотки крови турбодиметрическим методом в присутствии культуры микроорганизмов Micrococcuslysodeicticus происходило разрушение и просветление исходной бактериальной взвеси, лизоцимная активность сыворотки крови животных составляла 13,6±0,6 % (опыт) и 18,2±0,4 % (контроль). При определении бактерицидной активности сыворотки крови при токсемии уровень бактерицидной активности характеризовался низкой степенью задержки роста Е.сoli в МПБ: 75,0 % (опыт), 83,5 % (контроль). При определении показателей фагоцитарной активности клеток крови активность фагоцитоза и индекс фагоцитоза клеток крови кроликов: 59,22±1,23 и 5,44±0,85 %, соответственно; наблюдалось снижение уровня иммуноглобулинов класса G (7,62±0,33 мг/мл) и повышение уровня С-реактивного белка (9,33±0,33 мг/мл). При гистологическом исследовании желудочно-кишечного тракта эпителиальный слой слизистой оболочки тонкого и толстого отделов кишечника характеризовался следующими нарушениями: слизистая дистрофия, некробиоз и частичная десквамация эпителия; просвет крипт кишечника был сужен вследствие слизистой дистрофии и увеличения числа бокаловидных клеток. В рыхлой волокнистой соединительной ткани подслизистого слоя слизистой оболочки тонкого и толстого отделов кишечника наблюдались разволокнение коллагеновых волокон и инфильтрация клеточных элементов. Болезни кишечника характеризуются дисбактериозом и серьѐзными нарушениями всасывания. Одновременно нарушаются процессы переваривания и усвоения углеводов. Непереваримая клетчатка не расщепляется в кишечнике и выделяется в количестве равном поступившему, переваримая клетчатка не обнаруживается, зерна крахмала не обнаруживают или находят единичные в поле зрения. Причиной появления в feces жировых включений может быть отсутствие или недостаточное поступление желчи в кишечник, недостаточность или отсутствие липолитических ферментов в поджелудочной железе, нарушение всасывания в тонком отделе кишечника. Нарушение переваривания и всасывания жира можно предположить при обнаружении значительного количества нейтрального жира и продуктов его расщепления. При затруднении переваривания клетчатки (анацидное состояние и пр.) обнаруживаются скопления групп округлых клеток с тонкой оболочкой. Зерна крахмала различной степени расщепления обнаруживают при гиперацидных состояниях при заболеваниях тонкого или толстого отделов кишечника, желудка, поджелудочной железы. Наличие большого количества кишечного эпителия свидетельствует о воспалительном процессе слизистой оболочки кишечника, скопление лейкоцитов – при катаральных состояниях, язвенном процессе в толстом отделе кишечника, эозинофилы – при амебиазе, неспецифическом язвенном колите и других болезнях, неизмененные эритроциты – при кровотечениях из толстого отдела кишечника. У животных с синдромом желудочно-кишечных болезней происходят количественные и качественные изменения микрофлоры кишечника, характерные для дисбактериоза, то есть наблюдается увеличение числа аэробных и факультативноанаэробных микроорганизмов, в том числе патогенных бактерий Е. coli, в то же время уменьшается число бифидумбактерий и лактобактерий, обеспечивающих колонизационную 95 резистентность (предотвращение заселения кишечника патогенными и потенциальнопатогенными микроорганизмами). При желудочно-кишечных инфекциях, клинически проявляющиеся диареей и дегидратацией, наблюдались нарушения водно-электролитного обмена и кислотно-щелочного состояния, отмечалось повышение общего числа лейкоцитов, гематокрита, фагоцитарная активность клеток крови, индекс фагоцитоза и общая окислительно-восстановительная способность лейкоцитов крови снижались. Список литературы: 1. Аминова Г.Г. Современные данные о морфофункциональных особенностях лимфоидных фолликулов / Г. Г. Аминова //Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. – 1979.– Т. 76. – В.1– С.60-68. 2. Биргер М.О. Справочник по микробиологическим и вирусологическим методам исследования. 3-е изд. – М.: Медицина, 1982. – 464с. 3. Карабанова Л. В. Морфологические показатели крови молодняка кроликов разных пород как фактор физиологического состояния / Л. В. Карабанова, А. П. Ефремов, А. С. Кнауб, А. С. Нариц // Вестник омского государственного аграрного университета. – 2014.– №4(16). – С.31-33. 4. Ковалева Л. А. Возрастные и локальные изменения архитектоники лимфатического русла тощей и подвздошной кишки кролика / Л. А. Ковалева, А. В. Борисов //Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. – 1978.– Т. 4. – В.1– С.47-52. 5. Кочурко Л.И. Показатели иммунитета к эндотоксину грамотрицательных бактерий при кишечном дисбактериозе. / Л.И. Кочурко, В.Г. Лиходед, Е.А. Лобова// Микробиология. – 1998.– №5. – С.25-27. 6. Сидорчук А. А. Инфекционные болезни лабораторных животных / А.А. Сидорчук, С. П.Глушко // СПб. : Лань, 2009. – 144 с. 7. Скородумов Д.И. Микробиологическая диагностика бактериальных болезней животных / Д.И. Скородумов, В.В. Субботин, М.А. Сидоров, Т.С. Костенко. – М.: ИзографЪ, 2005. – 653 с. 8. Тришина Н.В. Связь между развитием дисбактериоза кишечника и состоянием антиэндотоксинового иммунитета: дис. канд. мед.наук / Н.В. Тришина. – М., 2003. – 92с. 9. Fabiola Gutierrez-Orozco, Jennifer M. Thomas-Ahner, Jeffrey D. Galley, Michael T. Bailey, Steven K. Clinton, Gregory B. Lesinski, Mark L. Failla Intestinal Microbial Dysbiosis and Colonic Epithelial Cell Hyperproliferation by Dietary α-Mangostinis Independent of Mouse Strain. Nutrients – 2015. – №7. – P. 764-784 10. Kirsty Brown, Daniella DeCoffe, Erin Molcan, Deanna L. Gibson Diet-Induced Dysbiosis of the Intestinal Microbiota and the Effects on Immunity and Disease. Nutrients – 2012. – №4. – P. 1095-1119 96 ОСОБЕННОСТИ ЛЕЧЕНИЯ ХЛАМИДИЙНОЙ ИНФЕКЦИИ У ПОПУГАЕВ Троицкая Т.Э., студ. Научный руководитель доц., к.б.н. Сотникова Е.Д. Кафедра клинической ветеринарии ФГАОУ ВПО «РУДН» Птица нередко попадает в нашу страну нелегальным путем, в том числе иинфицированная орнитозом. При этом количество птиц, не имеющих соответствующих документов, владельцы которых обращаются за ветеринарной помощью к специалистам клиник, колеблется от 67 до 79%. В зоомагазинах, зоосалонах, рынках идругих учреждениях, торгующих декоративными и экзотическими птицами, «обезличенные» представители орнитофауны составляют от 35 до 65%. При перемещении и во время продажи птиц часто нарушаются ветеринарно-санитарные правила транспортировки и содержания, карантинные мероприятия, что приводит к распространению заразных заболеваний, в том числе и хламидийной природы4. По данным проведенного мониторинга выявлено, что при обращении за помощью в ветеринарные клиники владельцев экзотической птицы, при клиническом осмотре у 30,4% попугаев регистрируются клинические признаки, которые характерны для хламидийной инфекции (патология желудочно-кишечного тракта, органов дыхания, центральной нервной системы, воспалительные процессы в области глаз и др.), при этом у 10,1% подозрительных по заболеванию и 3,1% от всех поступивших на прием в ветеринарные клиники птиц, при исследовании в Реакции иммунофлюоресценции (РИФ) выявляют антиген хламидий4. Орнитоз (Пситтакоз) — одно из самых распространенных инфекционных заболеваний, встречающихся у птиц в настоящее время, которое является абсолютным зоонозом, т. е. инфекция передается человеку от птиц. У попугаев заболевание протекает в латентной, острой и хронической форме. Болезнь быстро прогрессирует и птица обычно погибает без лечения в течение трех-шести дней после появления первых симптомов. При хроническом течении заболевание, которое может продолжаться от нескольких месяцев до нескольких лет, отмечаются: частые респираторные заболевания, чихание, отеки соединительной оболочки глаз, слезотечение и др.1, 3, 6, 7.В промышленных условиях при уточненном диагнозе орнитоз, заболевшая птица подлежит уничтожению. Для домашней экзотической птицы возможность лечения определяется желанием и возможностями ее владельца. Не смотря на достаточно серьезный диагноз, необходимость длительного лечения и тщательного ухода за больной птицей с соблюдением всех мер предосторожности, подавляющее большинство владельцев не готово усыпить своего питомца, вследствие привязанности к птице, морально-этических соображений и достаточно высокой стоимости птиц. Поэтому изыскание методов эффективного лечения орнитоза птиц является актуальным вопросом. Цель исследования: разработать комплексную схему лечения острой формы орнитоза у попугаев с использованием препарата «Темперин». Материалы и методы. Исследование проводилось в период с 2000 по 2015 год. Объектом исследования послужило 15 птиц семейства попугаевых - Венесуэльский амазон (лат. Amazona amazonica) с острой формой орнитоза. 97 При обращении владельцев птиц проводилось комплексное обследование попугаев с использование необходимого диагностического оборудования: осмотр, пальпация, термометрия, аускультация, рентгенография грудной клетки, взятие проб фекалий для исследования. Диагноз ставился на основании клинических симптомов заболевания и лабораторной диагностики фекалий с использованием метода Полимеразной цепной реакции (ПЦР)2, 5. Все манипуляции с птицей и ее окружением проводились с соблюдением всех мер безопасности для человека: изоляция больной птицы, использование масок и перчаток во время лечения и ухода за птицей, тщательная чистка и дезинфекция клетки, оборудования, помета птиц с использованием дезинфицирующи храстворов(«Глютекс», «Виродез», «F10scd»и др.). В работе использовалась разработанная нами схема лечения, с использованием препарата «Темперин», который состоит из комплекса гомеопатических веществ: Cantharis, AcidumPhosphorika, Cinclussuis. Фармакологические свойства препарата, обусловлены входящими в него компонентами: интенсификация метаболизма и выделения тепла в организме, нормализация процессов терморегуляции, снижение ацидоза, усиление потребления кислорода тканями, противосудорожное действие. Результаты исследований. При обследовании у птиц наблюдалась следующаяклиническая картина заболевания: угнетенное состояние, отсутствие аппетита, риниты - слизистые или гнойные выделения из носовых ходов, конъюнктивиты – слезотечение, гнойные выделения из глаз, взъерошенность перьевого покрова, его загрязнение выделениями, кахексия - вес тела от 200 до 350 грамм (норма 400-500 грамм),при пальпации определялсяострый край килевой кости, гипотермия - температуры тела 38,0-39,9С (норма 40-42С), диарея, полиурия, пневмонии - хрипы в легких. По нашим наблюдениям, снижение температуры тела у попугаев ниже 38С и применение антибиотика при температуре ниже 40Св 99% случаев приводит к летальному исходу. По нашему мнению это связано с тем, что острая форма орнитоза протекает с гипотермией, прогрессирующим истощением и нарастающей интоксикацией организма, а введѐнный антибиотик облает многочисленными побочными действиями, которые приводят к усугублению состояния организма птицы. Поэтому, для достижения желаемого результата и выздоровления птицы, прежде всего, необходимо проводить меры для повышения температуры тела, снятия интоксикации, нормализации водно-солевого баланса истимуляции защитных систем организма. Для этого в первые несколько дней до применения антибиотиков птицам вводили следующие препараты: 1. «Темперин», внутрь в дозе: на 1 птицу 20 гранул препарата в сутки растворяли в 50 мл воды и наливали в поилку или, при невозможности птицы самостоятельно подходить к поилке, 20 гранул растворяли в 5 мл воды и выпаивали из одноразового шприца в течение суток. Продолжительность применения препарата от 3-х суток до 3-х недель до достижения стойкой нормализации температуры тела птицы. Одновременно, для поднятия температуры тела птицы, создавались комфортные условия содержания - 28-30С, для этого над клеткой ставилась лампа с инфракрасным излучением. 2. Раствор Рингера-Локка, 5% раствор глюкозы и препарат «Гамавит» (комплекс витаминов и аминокислоты) в расчете на массу тела птицы, подкожно до восстановления 98 аппетита 1-2 раза в сутки, в зависимости от степени тяжести состояния. Далее осуществляли полноценное кормление, а при отказе от еды - искусственное вскармливание через зонд. Далее, после достижения нижней границы нормы температуры тела птицы (1-3 дня), начинали применять: 3. Антибиотик тетрациклинового ряда – доксициклин в расчете на массу тела птицы, продолжительность лечения - 6 недель. Применение препарата сочетали с введением кальция, т.к. антибиотик связывается с этим минералом, что может привести к его дефициту в организме. 4. Симптоматическое лечение: ингаляции, промывание носовых ходов и глаз антисептическими растворами (Мирамистин),в дальнейшем- восстановление микрофлоры кишечника с использованием про-и пребиотиков, нормализация кальциевого обмена и применение гепатопротекторов. После проведенного лечения проводили трехкратный контроль на орнитоз смешанных проб фекалий в ПЦР через неделю, месяц и три месяца после антибиотикотерапии, При такой тактике эффективность лечения составила 60% (9 птиц из 15 выздоровело). Выздоровление птицы наступало в течение трех месяцев от начала терапии. Выводы 1. При обследовании состояния птицы обязательно должна проводиться термометрия, т.к. острая форма орнитоза сопровождается гипотермией (38,0-39,9С). 2. Антибиотикотерапию необходимо начинать при достижении нормальной температуры тела(40-42С) для предотвращения летального исхода. 3. Разработана комплексная схема лечения острой формы орнитоза у попугаев с использованием препарата «Темперин», антибиотика тетрациклинового ряда и симптоматического лечения. 4. При использовании препарата «Темперин» температура тела птицы нормализуется в течение 1-3 дней. 5. При использовании разработанной нами комплексной схемы лечения орнитоза эффективность (выздоровление птицы) достигает 60%. 6. Эффективность лечения зависит от времени обращения за помощью и, соответственно, тяжести состояния птицы, наилучший результат выявлен при начале терапии в течение первых трех суток от появления клинической картины заболевания. Список литературы: 1. Ватсон Б. Попугаи / Пер. с англ. О.В. Ивановой, И.Г. Лебедевой. // М.: ООО ТД «Издательство Мир книги». 2007. – 256 с. 2. Вафин Р.Р.Молекулярно-генетический анализ хламидий:Дис. ... докт. биол. наук: 03.00.07. - Казань, 2009. – 290 с. 3. Данченко Г.Н., Рождественская Т.Н. Орнитоз – хламидийная инфекция птиц. СПб..: [б. и.], 2008. - 90 с. 4. Кострова А.В.Хламидиоз сельскохозяйственных и декоративных птиц:Дис. ... канд. ветеринар.наук: 06.02.02, 06.02.01. - Казань, 2011. - 162 с. 5. Обухов И.Л.,Груздев К.Н., Панин А.Н.Использование полимеразной цепной реакции в практических ветеринарных лабораториях / Ветеринария. 1997. - № 2. - С.24-27. 99 6. Andersen A.A., Vanrompay D. Avian chlamydiosis / Edited by Y.M. Saif. In Diseases of Poultry, 11th edition. — Iowa State Press, Ames, Iowa, 2003. - P. 863-878. 7. Grimes J.E., Wyrick P.B.Clamydialis (ornithosis.) n: Calnek B.W. Deseases of poultry, 9 th Ed. 1991 -p.331-325. МЕТОДЫ ПО ИЗУЧЕНИЮ ТОПОГРАФИЧЕСКОЙ АНАТОМИИ ЛИМФАТИЧЕСКИХ УЗЛОВ И ЭФФЕРЕНТНЫХ СОСУДОВ ГОЛОВЫ У СВИНЬИ академик РАН, проф., д.в.н,Уша Б.В. проф., д.в.н. Концевая С.Ю. доц.,к.в.н. Луцай В.И., асп. Ананьев Л.Ю. Исследование топографической анатомии лимфатических узлов и эфферентных сосудов осуществляли при помощи диоптрографии по М.В. Плахотину и масштабным фотографированием, также использовали массу D. Gerofa для выявления лимфатических сосудов. К регионарным лимфатическим узлам слизистой оболочки носовой полости свиньи относятся околоушные, подчелюстные, заглоточные медиальные. Околоушные лимфатические узлы: имеют овальную или вытянутую форму. С каждой стороны отмечено 1-3 лимфатических узла. Из 24-х препаратов в 5-ти было обнаружено более 3-х лимфатических узлов. Отдельные лимфатические узлы соединяются в пакет. Топографически они расположены позади нижней челюсти, вентрально от основания ушной раковины и окружены мощной жировой прослойкой. Задний край лимфатических узлов прикрывает верхняя часть околоушной слюнной железы. Передняя часть – жировая клетчатка. Из-под средней одной трети узла на поверхность большого жевательного мускула выходит дорсальный щечный и вентральная ветвь поверхностного височного нерва. С возрастом пакет лимфатических узлов увеличивается, а их количество уменьшается. Промеры околоушных лимфатических узлов приведены в таблице №1. Таблица 1. Средние показатели размеров околоушных лимфатических узлов у свиней разных возрастных групп № Кол-во Возрастные группы п/п животных от 1 до 21 дн. от 3 до 4 мес. от 7 до 12 мес. 24 длина ширина длина ширина длина ширина 1 15,2 8 26 12,5 45,7 16,9 2 15,8 8,2 26 12,0 45,4 18,5 3 18,8 8,9 27,8 12,8 48,2 17,5 4 16,4 9,5 28,5 13,4 49,5 19,2 5 15,2 9,8 29,1 13,5 50,0 19,0 6 18,4 10 28,2 14,0 51,0 15,8 7 19,0 10,2 25,9 14,1 44,8 19,0 8 19,0 8,5 26,5 12,9 47,5 16,5 Статистические показатели М 16,97 9,14 27,25 13,15 47,76 17,80 0,56 0,30 0,45 0,25 0,82 0,46 м 100 Отток лимфы из околоушного лимфатического узла осуществляется по 4-6 эфферентным лимфатических сосудам в заглоточные латеральные лимфатические узлы. Проекция околоушного лимфатического узла устанавливается двумя линиями: первая – вертикальная, проведенная от середины основания ушной раковины касательно вентрального угла нижней челюсти; вторая перпендикулярная к первой, проведенная от внутреннего угла рта к середине расстояния первой. Описываемый лимфатический узел является регионарным для поверхностных и глубоких лимфатических сосудов от преддверия слизистой оболочки носовой полости. Подчелюстные лимфатические узлы: расположены в межчелюстном пространстве на уровне угла нижней челюсти или на 1-2 см позади его. Узлы объединены в один пакет и имеют овальную или овально-вытяную форму. Снизу к пакету прилегают наружная челюстная вена, вентральный щечный нерв и проток околоушной слюнной железы. В фасциальных листках, окружающих эти сосуды расположены афферентные и эфферентные лимфатические сосуды описанного выше узла. Сверху подчелюстной лимфатический узел прикрывает околоушная слюнная железа. Размеры подчелюстных лимфатических узлов приведены в таблице №2. Таблица 2. Средние показатели размеров подчелюстных лимфатических узлов у свиней разных возрастных групп. № Кол-во Возрастные группы п/п животных от 1 до 21 дн. от 3 до 4 мес. от 7 до 12 мес. 24 длина ширина длина ширина длина ширина 1 12,2 5,8 24,0 15,0 32,3 18,2 2 12,8 6,2 24,3 15,0 36,1 18,0 3 13,1 6,5 25,8 16,9 32,0 18,1 4 11,9 6,0 27,1 17,5 35,8 20,5 5 12,5 7,8 26,2 18,0 36,0 21,8 6 13,0 7,2 23,9 16,9 34,2 22,1 7 12,0 8,0 27,0 17,2 33,0 22,0 8 12,7 8,0 27,0 18,0 34,8 20,8 Статистические показатели М 12,52 6,93 25,66 16,81 34,28 20,19 0,17 0,32 0,49 0,42 0,59 0,64 м Эфферентные лимфатические сосуды в количестве 3-5 выходят из каудального края узла, сопровождая язычно-лицевую вену и вливаясь в добавочный подчелюстной лимфатический узел. В 2-х случаях эфферентные лимфатические сосуды, минуя добавочный подчелюстной лимфатический узел, вливаются в вентральный шейный лимфатический узел. Проекция подчелюстного лимфатического узла находится на середине расстояния между сосудистой вырезкой и углом нижней челюсти. Описываемый лимфатический узел является регионарным для глубоких лимфатических сосудов слизистой оболочки носовой полости, идущих от носочелюстной вырезки. Медиальный заглоточный узел: (1-2) овальной или округлой формы, расположен на 12 см сзади и незначительно выше конца яремного отростка затылочной кости, дорсолатерально от глотки, дорсально от внутренней яремной вены. Размеры медиального заглоточного лимфатического узла приведены в таблице №3. 101 Таблица 3. Средние показатели размеров медиальных лимфатических узлов у свиней разных возрастных групп. № Кол-во Возрастные группы п/п животных от 1 до 21 дн. от 3 до 4 мес. от 7 до 12 мес. 24 длина ширина длина ширина длина ширина 1 8,2 3,7 17,1 13,8 25,6 16,0 2 8,0 4,0 17,8 16,2 25,0 16,8 3 8,5 4,5 17,0 14,2 25,4 18,2 4 9,7 4,1 17,6 14,0 26,7 18,5 5 9,8 5,0 18,7 13,5 28,9 17,4 6 10 5,2 19,1 16,8 27,4 17,9 7 10,1 3,9 19,0 15,7 25,1 19,0 8 7,8 4,9 19,5 15,5 24,8 19,0 Статистические показатели М 0,01 4,41 18,23 14,80 26,11 17,85 0,34 0,20 0,34 0,42 0,51 0,39 м Эфферентные лимфатические сосуды в количестве 2-3 направляются каудально и впадают в начальную часть трахеального протока. В одном случае из 4-х исследуемых препаратов, эфферентные лимфатические сосуды впадают в краниальные глубокие шейные лимфатические узлы. Проекция медиального заглоточного лимфатического узла устанавливается двумя линиями: первая – вертикальная, проведенная на 2-3 см от основания ушной раковины, и вторая – перпендикулярная к первой, проведенная от угла ротовой полости до их пересечения. Описываемый лимфатический узел является регионарным для экстраорганных лимфатических сосудов, идущих от задней трети слизистой оболочки носовой полости. Список литературы: 1. Панченков Р.Т., Выренков Ю.Е., Ярема И.В., Щербаков Э.Г.: Эндолимфатическая антибиотикотерапия. – Москва.-Медицина.- 1984. – С. 112. 2. Бородин Ю.И., Сапин М.Р., Этинген Л.Е. Общая анатомия лимфатической системы.- Новосибирск.-Наука, Сиб.отд-е.- 1990.- С. 243. 3. Слесаренко Н.А., Ветошкина Г.А. «Интегрирующие системы: сердечно-сосудистая, эндокринная и нервная». –Учебное пособие. – М.2012 – С. 124. 102 ЭЛАСТОГРАФИЯ КАК МЕТОД РАННЕЙ ДИАГНОСТИКИ ЗАБОЛЕВАНИЙ ПЕЧЕНИ Проф., д-р вет. наук, академик РАН Уша Б.В. Коротеева М.А., асп. Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» Несмотря на значительные успехи в изучении гепатопатий у собак, комплексный подход к диагностике данной патологии и поиск новых диагностических методов, которые позволяют провести раннюю прижизненную диагностику гепатопатий, по-прежнему сохраняет свою актуальность. Проблемам диагностики нарушений функции печени уделяется в ветеринарной практике огромное значение. При клиническом исследовании нарушения морфофункционального состояния печени различной степени тяжести выявляются у собак до 80% случаев. Печень необходима для полноценного функционирования организма. Она принимает участие во всех биохимических процессах, поддерживает гомеостаз в организме. В настоящее время существует масса методов функциональной диагностики, биохимических и энзимологических исследований при заболеваниях печени. Но наиболее эффективны среди всех являются визуализирующие методы исследования. Их можно использовать для подтверждения поражения печени на основании результатов биохимического исследования крови. Так, УЗИ печени — безопасный, доступный, недорогой и широко распространенный метод диагностики. Выполняя УЗИ, получают информацию об анатомичесиких особенностях строения печени и рядом расположенных органов. Чувствительность УЗИ и достоверность колеблется в пределах от 50 до 100%. Но при УЗИ нет возможности оценить эластические свойства тканей, т.е. те свойства, которые исследуются при пальпации. Эхогенность, оценивающаяся при УЗИ, и эластичность тканей — это некоррелирующие между собой показатели, в основе своей имеющие различное происхождение. Нередко можно наблюдать картину более плотной консистенции в сочетании со сниженной эхогенностью. И все-таки, несмотря на усовершенствованное безупречное качество изображения в сочетании с дуплексными методиками современные УЗ-аппараты не позволяют проводить точную и доступную диагностику фиброзных изменений печени на доцирротических стадиях заболевания. При компьютерной томографии можно заподозрить жировые изменения в печени (цирроз, последние стадии гепатоза) и подтвердить свои предположения лабораторными методами. Считается, что изменения эхогенности печени обладает средней чувствительностью. По данным КТ или МРТ можно подозревать выраженный цирроз печени, основываясь на оценке поверхности органа, нарушении плотности печени. Но все же основная задача визуализирующего обследования — исключение у пациентов другой патологии, способной вызвать отклонения в биохимических печеночных пробах (новообразования, воспалительные процессы, желчно-каменная болезнь и др.). Эти факты и стали стимулом для внедрения в ветеринарную практику недорогого и эффективного неинвазивного инструментального метода диагностики, коим и является 103 транзисторная эластография, позволяющая визуализировать разницу в эластичности исследуемой ткани. Один из новых многообещающих методов диагностики фиброза печени, с успехом применяемых в медицине, является эластография печени, оценивающая эластичность печени. Транзисторная эластография (фиброскан) — новая многообещающая методика для оценки степени эластичности подлежащих тканей органа. Датчик, прислоненный к брюшной стенке, передает низкочастотные колебания. Колебания индуцируют возникновение низкочастотной поперечной упругой волны, которая распространяется в более плотной ткани. По нашим данным, показанием к применению ультразвуковой эластографии может служить наличие диффузных заболеваний печени различной этиологии. Эластография печени проводилась на аппарате «ФиброСкан» (Echosens, Франция) в положении животного лежа на спине с максимальным отведением правой конечности. Точное позиционирование датчика проводилось с помощью окна ультразвуковой визуализации. Для обследования выбирается участок печени однородной структуры без сосудистых структур диаметром более 5 мм. Зона фокусировки датчика — от 25 до 65 мм от поверхности кожи. После правильной установки датчика проводится измерение, по результатам которого программой вычисляется результирующая величина эластичности печени. Среднее время обследования одного пациента составляет не более 5 — 6 минут. Данный метод не требует дополнительной подготовки пациента. При эластографическом исследовании возможны оценка и графическое отображение механических характеристик, таких как напряжение (давление), деформация ткани, модуль эластичности. Эластографические показатели отражают выраженность степени фиброза печени, однако для повышения диагностической ценности неинвазивных методов предствляется целесообразным их комбинированное использование для повышения чувствительности и специфичности. Эластография позволяет с наибольшей вероятностью отличить выраженный фиброз печени от его отсутствия или минимальной степени выраженности. Считаем, что данный метод найдет свое широкое применение в ветеринарной практике. Список литературы: 1. Борсуков А.В., Крюковский С.Б., Покусаева В.Т. и др. Эластография в клинической гепатологии (частные вопросы). — Смоленск: «Смоленская городская типография», 2011. 5. Уша Б.В. Ветеринарная гепатология. — М.: Колос, 1979. 6. Уша Б.В., Беляков И.М. Болезни печени собак, М.: ПАЛЬМА пресс, 2002. 7. Уша Б.В., Беляков И.М., Пушкарев Р.П. Клиническая диагностика внутренних незаразных болезней животных. — М.: Колос, 2003. 8. Клиническое обследование животных: Монография /Уша Б.В., Шабунин С.В., Жавнис С.Э. //Germany – LAP LAMBERT Fcfdemic Publishing GmbH &Co Cg /2013/- 22,5 п.л. 9. Уша Б.В. Внутренние болезни животных: Учебник – КолосС, 2010.- 19,5 п.л. 104 БИОХИМИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ ПОКАЗАТЕЛЕЙ СЫВОРОТКИ КРОВИ ПРИ РАЗЛИЧНЫХ СПОСОБАХ ФИКСАЦИИ РЕБЕР ГРУДНОЙ КЛЕТКИ академик РАН, проф., д.в.н. Уша Б.В. проф., д.в.н. Концевая С.Ю. доц.,к.в.н. Луцай В.И. асп. Ананьев Л.Ю. Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» Для оценки морфофункциональных изменений в организме животных при репозиции ребер различными способами мы исследовали биохимические параметры сыворотки крови. Исследования уровня общего белка и белковых фракций сыворотки крови до операции показали, что у всех животных показатели находятся в границах физиологической нормы для животных данного вида и возраста и их колебания незначительны. После проведения экспериментального оперативного вмешательства отмечали, что, хотя содержание общего белка и его фракций достоверно не отличалось от нормы, наблюдались колебания этих показателей в зависимости от способа фиксации ребер. На 7-е сутки после операции нами достоверно установлено незначительное увеличение содержание общего белка в сыворотке крови у животных, которым проводили остеосинтез с помощью лигатуры и серкляжного шва. Уровень общего белка в первой и второй опытной группе был выше на 1,35 и 1,31% по сравнению с таковым в дооперационном периоде. У коз с фиксацией ребра с помощью скоб уровень общего белка на 7-е сутки после операции был ниже на 1,81% по сравнению с дооперационным. Также на 7-е сутки после операции у всех опытных групп отмечено снижение уровня альбуминов в сыворотке крови. У коз первой опытной группы с фиксацией ребер на лигатуру содержание альбуминов ниже дооперационного уровня - на 17,51%, второй опытной группы с фиксацией ребер серкляжным швом -на 10,26%, третьей опытной группы с фиксацией ребер скобами –на 6,43% Уровень глобулинов в сыворотке кровина 7-е сутки после операции повышался у всех трех групп. . У коз первой опытной группы с фиксацией ребер на лигатуру содержание глобулинов выше дооперационного уровня - на 25,83%, второй опытной группы с фиксацией ребер серкляжным швом -на 14,04%, третьей опытной группы с фиксацией ребер скобами –на 12,06%. По мнению многих авторов, колебания содержания общего белка в сыворотке крови при различных патологиях не являются постоянным признаком. Более стабильные изменения наблюдаются в протеинограмме. Влияние баланса между белковыми фракциями сыворотки крови имеют большое диагностическое значения при оценке процессов происходящих при остеогенезе. При проведении остеосинтеза ребер мы отмечали достоверное снижение количества альбуминов и повышение глобулинов на 7-е сутки после операции. Мы также предполагаем, что низкий показатель соотношения альбумины/глобулины характеризует состояние синтеза белков печенью и снижение ее функциональной активности, то есть при остеосинтезе ребер в процесс вовлекаются и другие системы организма. Изменение содержания общего белка и 105 белковых фракций и уровня ферментов в сыворотке коз при разных способах остеосинтеза ребер показано в таб.1, 2. При определении биохимических показателей, характеризующих состояние обмена веществ в организме коз – активности аспартат и аланин-аминотрансфераз, играющих важную роль в процессе переаминирования аминокислот, нами было выявлено повышение активности ферментов у животных. Аспартатаминотрансфераза (АсАТ) является растворимым цитозольным ферментом, который присутствует в митохондриях клеток в более высокой концентрации, чем аланинаминотрансфераза (АлАТ)ю Таблица 1. - Изменение содержания общего белка и белковых фракций в сыворотке коз при разных способах о стеосинтеза ребер на 7-е сутки по слеоперации Показатель Норма Исходные После проведения остеосинтеза с помощью данные различных материалов. лигатуры, (n=5) серкляжного скоб (n=5) шва (n=5) Общий 61,0 –75,0 66,30 ± 2,82 белок, г/л Альбумин, 23,0-36,0 35,01± 1,63 г/л Глобулин, 27,0 –44,0 25,70±2,65 г/л Альбумин/г 1,2 – 1,8 1,64±0,03 лобулин Примечание:**p<0,001;*p<0,05 На 7 сутки после операции 67,20 ±3,61 65,10 ±2,75 67,17±3,17 29,90 ±1,89** 30,80±3,90* 34,37±3,34 32,34±4,51** 29,31±2,99* 28,80±1,01 1,04±0,01* 1,24±0,05 1,33±0,03 Таблица 2. - Изменение уровня ферментов в сыворотке крови коз после проведения остеосинтеза ребер на 7-е сутки после операции Показатель Норма Исходные После проведения остеосинтеза с помощью данные лигатуры, (n=5) серкляжного скоб (n=5) шва ( n=5) На 7 сутки после операции АсАТ, ИЕ/л 15,0 – 52,0 63,18 ± 0,60 360,50 ± 290,01±11,71* 165,0±6,25** 10,68** * АлАТ, ИЕ/л 66,0 – 230,0 23,06 ± 0,44 52,57 ± 1,48** 46,30±1,58** 44,06±1,24** Коэф-т 3,2± 0,05 2,73± 0,03 6,86 ± 0,06** 6,26 ± 1,4** 3,74±0,07* Ритиса Щелочная 79,0 – 265,0 264,17 ±3,76 1420,50 ± 1080,11±45,01 583,43±19,17 фосфатаза, 3,32** ** ** ИЕ/л ЛДГ, ИЕ/л 20,0 – 50,0 99,34 ± 8,99 673,34 ± 4,36** 509±8,66** 320±5,44* ГГТ, ИЕ/л КФК, ИЕ/л 16,0 – 148,0 35,3±0,60 61,0 – 283,0 115,07±1,85 Холестерин, 1,7 – 3,5 1,97 ± 0,24 моль/л Примечание:**p<0,001;*p<0,05 42,83±0,69* 738,12± 29,55** 2,9 ± 0,05* 106 45,91±0,69 476,26±8,10** 2,14 ±0,04* 40,12±0,73 257,09±4,37* * 2,12±0,04 Концентрация АсАТ в сыворотке крови коз в послеоперационный период значительно ( в 5,71 и 4,59 раза) повышалась при лигатурном и серкляжном соединении ребер- до 360,50 и 290,00 ИЕ/л норма 63,18 ±0.60ИЕ/л, что превышало диапазон референтных значений. При фиксации на скобы АсАТ также увеличивалась но умеренно –в 2,6 раза. На 7-е сутки операции отмечали резкое увеличение уровня щелочной фосфатазы в сыворотке крови коз после операции. При этом резкое увеличение щелочной фосфотазы было отмечено у коз первой опытной группы с фиксацией ребер на лигатуру – в 5,37 раза у коз второй группы с фиксацией ребер с помощью серкляжного шва- в 4,08 раза и коз третьей опытной группы –в 2,21 раза. Определение щелочной фосфатазы является традиционным лабораторным методом в оценке репаративного остеогенеза, поскольку щелочная фосфатаза содержится в печени, костях, плаценте, кишечнике лейкоцитах, но при этом более 80% фермента содержится в печени и костях. Список литературы: 1. Дерхо М.А. Особенности реакции красной крови при травмах трубчатых костей/М.А. Дерхо., С.Ю. Концевая// Ветиринарная клиника-2004. -№1 –С. 18-20. 2. Концевая С.Ю. Алгоритмы лабораторного контроля остеосинтеза /С.Ю.Концевая., М.А. Дерхо., В.И. Луцай //Учебное пособие рекомендовано УМО вузов России по образованию в области технологии сырья и продуктов животного происхождения М., - МГУПБ. - 2011. – 94 с. 3. Луцай В.И. Динамика лейкограмы коз при различных способах фиксации поврежденного реберного каркаса/ А.А. Вишневский., В.И. Луцай // Тезисы международной хирургической конференции. Ульяновск 2011г. 4. Луцай В.И., Матвеева М.В., Крюковская Г.М. Фагоцитарная активность нейтрофилов при транспортном стрессе у коз// Ветеринарная практика – М., 2010 (2) с. 3034. КОРРЕКЦИЯ ГЕПАТОЗА У НОРОК ПРИ ПОМОЩИ ЭНТЕРОСОРБЕНТА ПОЛИФЕПАН Харламов В.К., канд. вет. наук Институт звероводства и кролиководства Научный консультант проф., д-р вет. наук, академик РАН Уша Б.В. В отечественном звероводстве большое внимание уделяется разведению норок. Скармливание недоброкачественных, прогорклых кормов, содержащих недоокисленные жиры, кормов с продуктами гниения белка, токсинами патогенных грибов, дефицит витаминов и источников полноценного белка приводит к нарушению обменных процессов в организме животных, в частности, к развитию гепатозов. Гепатоз является одной из самых распространенных патологий в звероводстве всех стран. В России до 90 % падежа зверей 107 происходит от незаразных болезней, среди которых самыми значительными являются болезни печени [1, 4]. Гепатоз норок причиняет зверохозяйствам огромный экономический ущерб, который складывается из падежа норок, прохолостания самок, снижения половой активности самцов в период гона, нарушения процесса мехообразования, снижения качества и недополучения пушнины [3]. Поэтому проблема гепатоза норок является весьма актуальной. Очевидна также актуальность изыскания новых путей нормализации обмена веществ пушных зверей в условиях недостаточности кормовой базы [1 – 5, 6]. Цель работы – изучение морфофункциональных показателей обмена веществ при гепатозе норок, а также поиск нового эффективного препарата для профилактики и лечения гепатоза норок. На базе одного из звероводческих хозяйств РФ изучены морфофункциональные изменения в печени норок при современном типе кормления. Испытан энтеросорбент полифепан с целью лечения и профилактики гепатоза у норок. Распространенность гепатоза в зверохозяйстве в сравнении с другими незаразными болезнями норок изучали по ветеринарной документации зверохозяйства за 2009-2011 гг. Заболеваемость норок гепатозом колебалась в пределах 19-20 % от общего количества больных с неинфекционной этиологией. В зверохозяйстве на поголовье 40 норок (10 щенков клинически здоровых, 10 с клиническими признаками гепатоза, 10 взрослых самок клинически здоровых и 10 с клиническими признаками гепатоза) были изучены морфологические и биохимические показатели крови различных возрастных групп клинически здоровых и больных гепатозом норок. В опыте по определению оптимальной терапевтической дозы препарата использовали 80 норок: 40 самок в возрасте 4-х месяцев, 40 взрослых самок. По 10 гол. самок каждого возраста оставили в контроле, остальные получали полифепан в дозе 2,0; 3,0; 4,0 г – молодняк и 4,0; 6,0; 8,0 г – взрослые. Первоначальная доза определялась из расчета 2,0 г на 1 кг живой массы (доза, принятая в медицинской и ветеринарной практике). Препарат давали с кормом курсом по 10 дней двухкратно с интервалом 7 дней. Перед опытом и через 30 дней после окончания курса лечения у норок брали кровь. В результате изучения морфологических и биохимических показателей крови у клинически здоровых норок было установлено, что у них наблюдалось нарушение обмена веществ в виде гипогликемии 2,81±0,75 (Р<0,01) у щенков и 1,73 ммоль/л (Р<0,01) у взрослых норок при норме 6,5-9,2 ммоль/л; гипопротеинемии (43,68±0,83 – 44,8±0,9 г/л (Р<0,01) при норме 50,00 – 64,00 г/л), гиперхолестеринемии (9,95±1,39 –9,91±1,01 ммоль/л (Р<0,01) при норме 3,70 – 7,02 ммоль\л). При изучении морфологических и биохимических показателей крови у щенков в возрасте 4 мес. и взрослых норок 2-ой группы при гепатозе установили, что уровень гемоглобина был низким (98,07±40,0 – 98,02±0,22 г/л (Р<0,01) при норме 150,0 – 175,0 г/л), количество эритроцитов находилось на нижней границе физиологической нормы для данного вида животных (8,01±0,09 (Р<0,01) щенков и 7,80±0,02 10 12/л (Р<0,01) у взрослых самок). Содержание общего белка (41,25±0,83 – 44,01±0,9 г/л (Р<0,001) при норме 50,00 – 64,00 г/л) и глюкозы (2,31±0,75 – 2,21±0,01 ммоль/л (Р<0,01) при норме 6,5 – 9,2 ммоль/л) было ниже физиологической нормы. Коэффицитент де Ритиса 1,3 – 1,4 при норме 2,8 и выше. Было установлено увеличение активности щелочной фосфатазы и 108 аланинаминотрансферазы и снижение каталитической концентрации лактатдегидрогеназы по сравнению с физиологической нормой для данного вида животных. С целью определения оптимальной терапевтической дозы препарата полифепан для норок молодым и взрослым самкам 2-й группы давали в порошковом виде с кормом двухкратно курсом 10 дней с интервалом 7 дней. Полифепан давали молодым самкам в дозе 2, 3, 4 г; взрослым – 4, 6, 8 г, контрольные молодые и взрослые самки полифепан не получали. Полифепан давали без добавления других лекарственных средств, применяемых при гепатопатологии. Было установлено, что у молодых норок, получавших полифепан в ходе эксперимента, гематологические показатели значительно изменялись. Наилучший терапевтический эффект был получен у норок, получавших полифепан в дозах 3,0 и 4,0 г в день, что составляет приблизительно 2,5-3,0 г на 1 кг живой массы тела. Количество эритроцитов повысилось соответственно на 13 и 15 %, гемоглобина на 16,9 – 13,7 %, количество лейкоцитов снизилось на 12,5 – 11,8 %, уровень общего белка повысился на 3,2 и 7,5 %, количество глюкозы увеличилось на 40 – 20 %. Уровень холестерина и мочевины достиг границ физиологической нормы для данного вида животных. У контрольных норок, не получавших полифепан, показатели крови остались на уровне начала эксперимента (рис. 1). У взрослых самок также получены положительные результаты. Наилучший эффект был получен у самок, получавших полифепан по 6,0 и 8,0 г в день, что составило приблизительно 2,5 – 3,0 г на 1 кг живой массы. Содержание эритроцитов в сыворотке крови повысилось соответственно на 1,1 – 0,9 %, гемоглобина на 9,0 – 7,5 %, количество лейкоцитов понизилось на 23,0 – 22,2 %, содержание глюкозы увеличилось в 1,5 раза. Количество мочевины и холестерина достигло уровня физиологической нормы. 44,54 45 43,31 44 42,62 43 42 41 40,93 40,75 41,28 41,28 41,21 1 день опыта 30 день опыта 40 39 38 1 2 3 4 Рис. 1. Динамика изменения содержания общего белка в сыворотке крови молодых самок: 1 – контрольная группа; 2 – опытная, получавшая 2 г полифепана; 3 – 3 г; 4 – 4 г У контрольных животных, не получавших полифепан, все показатели оставались приблизительно на исходном уровне (рис. 2), а у животных, получавших 2,0 г для молодых и 4,0 г для взрослых норок изменение показателей было незначительным. За рекомендуемую дозу полифепана порошковой консистенции была принята суточная доза 3,0 г для молодых и 6,0 г для взрослых норок, т.е. приблизительно 2,5 г на 1 кг живой массы. 109 60 50 40,67 41,87 52,90 52,31 49,25 48,63 38,88 40 35,82 1 день опыта 30 день опыта 30 20 10 0 1 2 3 4 Рис. 2. Динамика изменения содержания общего белка в сыворотке крови молодых самок: 1 – контрольная группа; 2 – опытная, получавшая 4 г полифепана; 3 – 6 г; 4 – 8 г Установлено, что гематологическими и биохимическими признаками гепатоза у норок являются снижение количества эритроцитов, гемоглобина, уровня глюкозы и содержания общего белка в сыворотке крови, увеличение количества лимфоцитов и лейкоцитов, увеличение активности печеночных трансфераз, холестеринемия, билирубинемия. Применение препарата полифепан у больных гематозом молодых и взрослых норок способствовало значительному улучшению морфологических и биохимических показателей крови. Оптимальная терапевтическая доза полифепана для норок составляет 2,5 г на 1 кг живой массы. Список литературы: 1. Берестов В.А. Звероводство. – СПб: «Лань», 2002. 77 с. 2. Дашукаева К.Г., Зибров Я.А. Воспроизводительная способность пушных зверей при разведении их в неволе и ее коррекция с использованием биологически активных препаратов // Проблемы акушерско-гинекологической патологии и воспроизводства сельскохозяйственных животных: Матер. Межунар. конф. – Казань. 2003. С. 117 – 121. 3. Илюха В.А. Проблемы звероводов в Финляндии // Кролиководство и звероводство. 2001. № 3. С. 29. 4. Квартникова Е.Г. Заболевания неинфекционной этиологии // Кролиководство и звероводство, 2001. № 5. С. 22, 23. 5. Слугин В.С. О профилактике незаразных болезней пушных зверей // Кролиководство и звероводство. 2004. № 4. С. 26 – 29. 6. Уша Б.В. Разработка методов и средств для лечения печеночной недостаточности у животных /Уша Б.В., Смирнов А.М. и др. //Ветеринария и кормление. – 2011. - № 5. – С. 2526 110 МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ БАБЕЗИОЗА СОБАК Шабулдо А. И., асп. кафедра «Ветеринарная медицина», ФГБОУ ВПО «МГУПП» Для диагностики бабезиоза собак применяют методы клинической и лабораторной диагностики, с учетом данных анамнеза со слов владельца и обнаружения на теле собаки клещей. Методы клинической диагностики (осмотр, пальпация, перкуссия, аускультация) дают представление о состоянии функциональных систем организма. При бабезиозе будет наблюдаться потеря аппетита, учащение работы сердечно-сосудистой и дыхательной систем, желтушность слизистых оболочек и кожи. Вышеописанные классические симптомы бабезиоза могут не наблюдаться вообще, а также возможно наличие признаков, нехарактерных для классического бабезиоза: отсутствие повышения температуры тела, аппетит в норме, моча нормального цвета. Единственными признаками могут быть вялость, отказ от корма, рвота, постепенно прогрессирующая бледность или цианотичность слизистых оболочек, мышечная слабость, при отсутствии яркой клинической картины. Все это связано с увеличением числа случаев атипичного проявления бабезиоза собак. После переболевания животное является бабезионосителем. Методы клинической диагностики не позволяют точно диагностировать бабезиоз и выявить бабезионосителей. Поэтому для точной постановки диагноза на бабезиоз и выявления бабезионосителей в основном применяют методы лабораторной диагностики, к которым относятся: общий клинический и биохимический анализ крови, метод световой и темнопольной микроскопии мазков крови, ПЦР, серологические методы (ИФА, ELISA, РДСК, РНГА). Общий клинический анализ крови. Клинический анализ крови проводят на гематологических анализаторах (автоматические счетчики, основанные на кондуктометрическом методе) или ручным способом (камера Горяева) с целью подсчета клеток крови (лейкоциты, эритроциты, тромбоциты), а также оценки их размеров, структуры и цитохимических характеристик клеток, концентрации гемоглобина. Помимо количественных характеристик, общий анализ крови дает оценку и качественному составу клеток при помощи исследования мазка периферической крови при тысячекратном увеличении под микроскопом. Основная задача микроскопии мазка крови – подсчет лейкоцитарной формулы, т.е. разделение лейкоцитов на популяции (нейтрофилы, эозинофилы, базофилы, моноциты, лимфоциты), оценка их степени зрелости и состояния клеток. Помимо лейкоцитарной формулы, оценивается и состояние эритроцитов (размеры, форма, наличие ядерных форм, насыщенность гемоглобином, наличие различных включений, в том числе паразитарного происхождения и пр.), а также качество тромбоцитов. Токсическое действие бабезий на организм собак сопровождается эритроцитопенией, снижением гемоглобина, лимфоцитозом, эозинофилией, увеличением числа палочкоядерных нейтрофилов [1]. Биохимический анализ крови. Биохимический анализ крови отражает функциональное состояние различных органов и систем организма животного. При биохимическом анализе крови исследуются ферменты (АСТ, АЛТ, щелочная фосфатаза, 111 липаза, амилаза и др.), белки, небелковые азотистые компоненты (мочевина, креатинин), пигменты (билирубин), показатели углеводного (глюкоза, фруктозамин), липидного (триглицериды, холестерин) и водно-солевого обменов (натрий, калий, хлор, кальций, магний, фосфор и др.). Для выполнения биохимического анализа используются специальные автоматические биохимические анализаторы, принцип работы которых основан на различных методах исследования, главным образом оптических (спектрофотомерия, флюорометрия и др.) Также широко применяют электрофорез (для определения белков), различные виды хроматографии, ионо-специфическую потенциометрию (для исследования уровня электролитов), иммуноферментный анализ и др. При бабезиозе собак происходит снижение количества общего белка. Происходит значительное понижение β-глобулинов, содержание ɣ-глобулинов увеличивается, αглобулины остаются в норме. При бабезиозе собак происходит гемолиз эритроцитов, что приводит к увеличению в крови количества непрямого билирубина. Прямой билирубин появляется в крови при вовлечении в патологический процесс клеток печени. Уровень глюкозы лежит в пределах нормы, содержание железа значительно снижается [2]. Активность аланинаминотрансферазы (АЛТ) находится в пределах нормы, а активность аспартатаминотрансферазы (АСТ) немного превышает. В начале заболевания изменения активности щелочной фосфатазы не наблюдается. С дальнейшим развитием болезни активность щелочной фосфатазы меняется. Лактатдегидрогеназа (ЛДГ) по своей активности превышает норму [2]. Метод световой микроскопии мазков крови. Данный метод является основным методом постановки диагноза на бабезиоз. Для осуществления этого метода необходимо взять у животного периферическую кровь из кровеносных сосудов уха, приготовить мазок крови, окрасить мазок по методу Романовского-Гимза и исследовать его под световым микроскопом, под увеличением объектива ×90, предварительно нанеся на мазок иммерсионную жидкость. На основании этого метода можно выявить паразитемию и поставить окончательный диагноз на бабезиоз собак, путем обнаружения диагностической формы Babesia canis в мазках крови как внутри, так и вне эритроцитов, а также внутри макрофагов, пожирающих пораженные эритроциты вместе с бабезиями внутри них. В мазках крови паразит имеет округлую, амебовидную, грушевидную, анаплазмоидную, веретеновидную или овальную форму. При окрашивании мазков крови по Романовскому-Гимза, цитоплазма паразита окрашена в дымчато-голубой, а ядро в краснофиолетовый цвет; эритроциты бледно-красного цвета. Диагностически ценная форма бабезиоза собак следующая: в центре эритроцита два грушевидных паразита, соединенных под острым углом тонкими концами, размер паразита больше или равен радиусу эритроцита [1]. По результатам световой микроскопии мазков крови можно судить о тяжести течения заболевания, исходя из степени пораженности эритроцитов, анемии и моноцитоза. Плюсом метода также является быстрота выполнения исследования. Недостатками метода световой микроскопии являются: низкая чувствительность и специфичность метода (предел чувствительности световой микроскопии 0,001 % зараженных паразитами эритроцитов); точность постановки диагноза на бабезиоз зависит от качества выполнения техники приготовления мазков крови для проведения микроскопии. В противном случае за 112 возбудителя можно принять включения в эритроцитах другой природы (тельца Жоли, крепкую редкую базофильную зернистость) и просто артефакты – последствия неправильного приготовления мазков крови, связанные с обезжириванием предметных стекол, фиксацией и окрашиванием мазков (наслоение тромбоцита на эритроцит, плохая фиксация или наличие «пузырьков» внутри эритроцитов после окраски мазков, попадание на поверхность эритроцитов и предметное стекло мелких кусочков краски); невысокая степень воспроизводимости; трудность постановки диагноза у собак с неочевидными или хроническими инвазиями; невозможно убедительно идентифицировать различные виды бабезий. Метод темнопольной микроскопии мазков крови. Данный метод позволяет определить состояние клеток крови, патологические изменения состава крови. Для диагностики бабезиоза, как и при световой микроскопии исследуют мазки крови. По сравнению с методом световой микроскопии, метод темнопольной микроскопии более быстрый в выполнении, так как позволяет исследовать неокрашенные мазки крови. ПЦР. Используется для исследования бабезиоза собак начиная с 1998 года. Этот метод отличается от других методов диагностики бабезиоза высокой степенью чувствительности и специфичности. С помощью ПЦР можно обнаружить паразитов при паразитемии 50 бабезий в 1 мл крови или 9 паразитов в 1 мкл крови. Также ПЦР-диагностика выявляет хронические и начальные формы течения бабезиоза с обнаружением даже незначительного количества ДНК паразита. ПЦР позволяет контролировать эффективность терапии. Единственный минус – более долгое исполнение по сравнению с микроскопией (в течение 12 часов). Серологические методы исследования. Эти методы используются в основном для определения уровня антител к возбудителю. У собак присутствуют в крови антитела на возбудителя независимо от того в какой зоне они живут (в эндемической зоне или нет), но у больных собак титр антител будет значительно выше. ИФА является сравнительно дорогим методом, имеет низкую чувствительность и осложняется перекрестной реактивностью между видами Babesia spp. и другими микроорганизмами типа Apicomplexa. РДСК и РНГА являются надежными диагностическими тестами при бабезиозе и бабезионосительстве собак. В период бабезионосительства титр антител колеблется в пределах от 1:20 – 1:40 в РДСК и 1:2001:400 в РНГА. Список литературы: 1) Белименко В.В., Заблоцкий В.Т., Саруханян А.Р., Христиановский П.И. Бабезиоз собак. Российский ветеринарный журнал. Мелкие домашние и дикие животные, 2012; N 2. – С. 42 – 46; 2) Кошелева М.И. Бабезиоз собак в условиях Московской области (эпизоотология, иммунитет, терапия): автореф. дис. канд. вет. наук. – М., 2006. – 16 с.; 3) Пожарова Н. Н. Пироплазмоз собак (эпизоотологическая ситуация, некоторые аспекты патогенеза, лечение и профилактика): Автореф. дис. на соис. учен. степ. канд. вет. наук. – Ставрополь, 2005. – 23 с. 113 ИЗУЧЕНИЕ МОРФОЛОГИИ ЭРИТРОЦИТОВ ПРИ АЛЛЕРГИЧЕСКОМ БЛОШИНОМ ДЕРМАТИТЕ У СОБАК МЕТОДОМ СВЕТОВОЙ МИКРОСКОПИИ Шаповалова А.А., асп. доц., канд. вет. наук Сысоева Н.Ю., доц., канд. вет. наук Крюковская Г.М., зав. лаб. Верховская Г.Л. Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» Болезни кожи – одна из самых распространенных патологий собак, дифференциальная диагностика которых представляет определенные трудности. По данным различных авторов, более 25% случаев обращений владельцев собак к ветеринарным специалистам связано с заболеванием кожи, а ее состояние во многих случаях является показателем общего здоровья животного. Особенно часто болезни кожи отмечают у городских популяций собак, так как они подвергаются интенсивному воздействию "повреждающих" факторов, среди которых обилие стрессов, постоянно ухудшающаяся экологическая обстановка, ненормативное кормление сухими и другими концентрированными кормами. В связи с увеличением в последнее время темпов и объема разведения различных пород собак, зачастую абсолютно бесконтрольного, сопряженного с ввозом из-за рубежа производителей, имеющих паразитарные заболевания кожи, а также представителей новых пород собак, ситуация с дерматитами паразитарного происхождения резко обострилась [1, 2]. Частой причиной кожных заболеваний у собак является паразитирование блох. Питаясь кровью животного, блоха выделяет в дерму слюну, которая препятствует свертыванию крови. Эта слюна содержит не менее 15 биологически активных веществ, которые могут оказывать раздражающее или аллергизирующее действие. До 80% всех аллергических дерматитов у собак, как установлено, связано с блохами. Паразитируя на животных, блохи наносят болезненные уколы, в результате образуются папулы, развивается дерматит, часто сопровождающийся секундарной инфекцией [3]. Аллергические реакции на блошиную слюну могут протекать в форме гиперчувствительности немедленного или замедленного типа. Обычно преобладают реакции замедленного типа, протекающие хронически и внешне проявляющиеся алопецией, лихенификацией, гиперпигментацией, а также в виде зудящих фиброзных узлов с преимущественным расположением на спине, пояснично-крестцовой области, на каудомедиальной поверхности бедер, на животе. Практически не встречается такого рода изменений на ушных раковинах, морде, стопах. Острые поражения, протекающие по типу гиперчувствительности немедленного типа, проявляются внешне эритемой с покрытыми корочками папулами, картиной эрозивного мокнущего дерматита. Клинические проявления аллергического блошиного дерматита зависят как от количества паразитирующих блох, так и от наличия или отсутствия у животного гиперчувствительности к блошиной слюне. Кожа не предрасположенной к аллергии собаки может вообще не реагировать на блошиные укусы, однако это не означает, что на них не 114 реагирует организм: 72 женские особи блох в день вместе «выпивают» 1 мл крови, при этом у собак, особенно мелких пород, развивается хроническая постгеморрагическая анемия. Аллергический блошиный дерматит у собак усугубляется еще и тем, что животные интенсивно расчесывают поврежденные участки кожи и нередко заносят в ранки грибковую или бактериальную инфекцию. Что же касается симптомов, то сначала на коже появляются покраснения и отечность. Контактный дерматит сопровождается сильным зудом и жжением, что сказывается на поведении животного — например, кошки и собаки нередко начинают чесаться и кусать себя за хвост или лапу. Постепенно в месте поражения можно увидеть довольно большие облысевшие участки кожи, покрытые мелкими язвочками или корочками. Патогенез дерматитов паразитарной этиологии у собак изучен не полностью, поэтому диагностика кожных заболеваний представляет определенные трудности в связи со значительным сходством внешних проявлений, отсутствием комплексного подхода и диагностических алгоритмов. Сбор анамнеза жизни и болезни, а также простое физикальное обследование животного, хотя и остаются необходимым и важным моментом диагностики, однако для диагностики дерматитов явно недостаточны. Поэтому исследования, направленные на комплексное изучение патогенеза дерматитов паразитарной этиологии и особенности их проявления в зависимости от возбудителя являются актуальными [4]. Клетки крови, будучи важнейшими компонентами внутренней среды организма, чутко реагируют на различные физиологические и патологические процессы в организме, что позволяет использовать их в качестве дифференциально-диагностического теста при самых разнообразных нозологических формах. Ни в одной другой ткани состояние клеточной поверхности не ответственно в такой степени за развертывание ряда явлений, происходящих в организме, как в норме, так и при патологических состояниях [4]. Механизм возникновения нарушений морфологии эритроцитов при дерматитах паразитарной этиологии у собак изучен недостаточно и раскрытие его имеет существенное значение для целенаправленной патогенетической терапии больных животных. Изменения морфологии эритроцитов и проявляются уменьшением размеров, изменением формы эритроцитов, интенсивности и характера их окрашивания, появлением патологических включений. Важнейшим признаком патологического состояния эритроцитов является пойкилоцитоз — изменения различной степени выраженности формы эритроцитов, которая становится отличной от дисковидной – эхиноциты, овалоциты, шизоциты, сфероциты и др. Целью наших исследований было изучить морфологические изменения эритроцитов крови собак при аллергическом блошином дерматите собак. Работу выполняли на базе кафедры «Ветеринарная медицина» Института ветеринарной экспертизы и санитарии ФГБОУ ВПО «МГУПП» и ветеринарной клиники г. Москвы. Было исследовано 97 собак разных возрастных групп и пород с кожной патологией, хозяева которых обратились в клинику с жалобами на состояние животных. Всем животным проводили общепринятые клинические исследования, обращая особое внимание на состояние кожного покрова. Особое внимание уделяли наличию признаков зуда, его интенсивности, времени появления и характеру экссудатов, наличия местной температуры. При наличии кожных манифестаций проводили микроскопическое исследование кожи методом глубоких соскобов и приготовления мазков отпечатков. Глубокие соскобы с площади около 4 см2 брали с 5 участков тела каждого животного до появления сочащейся из капилляров крови. С пораженных участков кожи брали 2-3 мазкаотпечатка, которые затем окрашивали азуром и эозином. Диагностическое значение имеет 115 обнаружение в них значительного количества эозинофильных лейкоцитов - маркеров аллергических реакций. Оценку мазка проводили путем подсчитывания количества поверхностных клеток эпителия, глубоких клеток эпителия, нейтрофилов, а также наличия бактерий и грибов в 10 полях зрения с последующим их подсчетом по полям зрения. Исследования проводили под иммерсией светового микроскопа (объектив х90, окуляр х10). Окончательный диагноз ставили по результатам исследования соскобов и мазков отпечатков. У 17 (17,52 %) собак в возрасте 2-3 лет при клиническом осмотре отмечали выпадение шерсти, зуд у основания хвоста, в области поясницы и спины. Отмечалось шелушение кожи, образование ранок в результате расчесов и покрытых тонкими, легко отторгающимися корочками-чешуйками. Собаки были свободными от гельминтозной инвазии, не имели признаков инфекционных заболеваний, а также патологии дыхательной системы. Температура тела имела предельные колебания и составляла 37,5-38,5 oC, что находится на верхней границе физиологической нормы для данного вида животных. Частота пульса составила 80-100 ударов в минуту, частота дыхания – 15-23 дыханий в 1 минуту. Видимые слизистые оболочки бледно-розовые. Лимфатические узлы не увеличены. Результаты микроскопии мазков отпечатков из поверхностных пораженных участков кожи выявило у 3 собак в возрасте 2-3 лет наличие перивазальных эозинофильных клеточных инфильтратов, которые в отдельных случаях образовывали довольно крупные очаги. Клеточный инфильтрат включал также значительное количество тканевых базофилов, большинство из которых имели нечеткие контуры, а их цитоплазма не содержала специфических гранул (рис.1). Рис. 1. Эозинофилы и нейтрофилы в цитологическом препарате кожи собаки при аллергическом блошином дерматите (ув. 400х) Появление эозинофилов, маркеров аллергических реакций, в мазках с поверхности кожи собаки предполагает аллергический дерматит, в том числе и паразитарной этиологии. Метод световой микроскопии нативных мазков крови позволяет оценить состояние эритроцитов: форму, размер, их взаимодействие, расположение в плазме крови, агрегацию (склеивание в столбики), сладж (образование сплошного склеивания), ведущее к кислородному голоданию, качественный состав крови, состояние обмена веществ и гормональный дисбаланс и другие показатели состояния организма. Каплю крови под покровным стеклом изучают сначала обзорно под малым увеличением, затем анализируют строение клеток крови и содержимое плазмы (под большим увеличением). Исследование нативных препаратов крови сразу после забора крови из вены Сафена проводили на микроскопе Leica DM 1000 не позднее, чем через 10-15 минут (после этого времени в исследуемой крови происходят необратимые изменения) с использованием увеличения 1000. 116 При проведении световой микроскопии нативных мазков собак выявлено, что большинство эритроцитов имеет форму дискоцитов. Такая форма эритроцитов обеспечивает наиболее адекватное обеспечение тканей кислородом и во многом определяет эффективность протекания физиологических процессов [5]. В крови собак, у которых диагностировали аллергический блошиный дерматит, отмечали появление деформированных эритроцитов. Доля эхиноцитов составила (10 полей зрения в каждой пробе, %) в среднем в 6,21±0,05 %. Отмечали появление единичных кодоцитов в 10 полях зрения мазка (рис.2). Результаты наших исследований позволили установить, что при аллергическом блошином дерматите наблюдаются изменения морфологии эритроцитов, характеризующиеся появлением деформированных форм. Изменения структуры эритроцита могут происходить под действием эндогенных или экзогенных факторов, влияющих на гемопоэз или непосредственно на мембрану эритроцитов [4]. Пойкилоцитоз, по данным [5], можно рассматривать как универсальные биохимические и морфологические изменения в составе крови при эндо- и экзогенных интоксикациях. Полученные нами результаты еще раз подтверждают мнение многих авторов, что дерматиты паразитарной этиологии вызывают вторичную системную и органную патологию, вовлекая в патологический процесс различные органы. Рис. 2. Эхиноциты и кодоциты в нативном мазке крови собаки в возрасте 3 лет с аллергическим блошиным дерматитом. Световая микроскопия Таким образом, обнаруженные изменения морфологии эритроцитов существенно дополняют клиническую картину, позволяют косвенно судить о характере патологического процесса при аллергическом блошином дерматите паразитарной этиологии и могут служить дополнительным методом оценки состояния организма. Список литературы: 1. Василевич Ф.И., Ларионов С.В. Демодекоз животных.- М.: Изд-во ИМА-пресс, 2001, 138-145 с. 2. Медведева М.А. Иммунологическое обоснование патогенеза и лечения демодекоза собак /М.А.Медведева //Ветеринарная клиника, 2004.-№ 1,2.-С. 6-7, 22-24. 3. Патерсон С. Кожные болезни собак /Патерсон Сью //М.: Аквариум ЛТД, 2000. С.5-8. 4. Луцай В.И. Изменение морфологии эритроцитов коз после торакального вмешательства на реберном каркасе. В.И. Луцай, Г.М. Крюковская, М.В. Матвеева, Т.О. Марюшина // Ветеринарная практика. - 2011. — N° 3 (54). - С. 20-25. 117 5. Скопичев В.Г., Смирнова О.О. Изменение морфологических и биохимических показателей крови при детоксикации с применением локальной компрессии //Ветеринарная практика. - № 3 (46). – 2009. – С. 35-39 ВНУТРИВЕННАЯ ЭКСКРЕТОРНАЯ УРОГРАФИЯ У КОШЕК Шведова Д.И., асп. Научный руководитель: академик РАН, проф., д-р в.н. Уша Б.В. Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» В последние годы заболевания почек, мочевого пузыря и уретры у кошек встречаются все чаще. По статистическим данным данная патология составляет 40% из всех внутренних незаразных болезней. Наиболее подвержены кастрированные коты с плохо сбалансированным питанием, кошки с нарушением обмена веществ, с патологией развития мочевой системы и возрастные животные старше 6 лет. В связи с анатомическим строением мочевой системы кошек общепринятые методы диагностики не всегда бывают эффективными для постановки точного диагноза. Наряду с общеизвестными методами диагностики, такими как: анализ мочи и крови, пальпация, данные анамнеза, ультразвуковое и рентгенологическое исследование, предлагается относительно новый метод диагностикиметод внутривенной экскреторной урографии. Нередко на обзорных ренгенологических снимках затруднительно определить размер, форму, структуру и расположение почек, мочеточника. Более рационально применять рентгеноконтрастные исследования, в результате которых можно качественно определить внутреннюю структуру почек, функциональное состояние почек по степени и скорости выведения контрастного вещества, функциональное строение мочеточника, так же определить наличие камней, новообразований и патологий развития мочевой системы. Экскреторная урография - наиболее эффективный метод контрастного исследования почек и мочеточников. Животному вводят ионогенные водорастворимые препараты йоталамата и диатризоата, которые содержат йод, в качестве рентгеноконтрастных веществ. Особое внимание следует уделять животным с патологией сердечно-сосудистой системы, для которых необходимо использовать неионогенные рентгеноконтрастные вещества также на основе йода (например йопамидол). Перед проведением исследования животное должно получить достаточное количество воды. Также перед исследованием рекомендовано проведение клизмы для выведения скопившихся каловых масс из кишечника, которые могут закрывать изображение мочевого пузыря, почки или мочеточники. Внутривенная урография должна проводится только под общим наркозом. После введения ренгеноконтрастных веществ, выведение их происходит непосредственно через почки, мочеточники верхних отделов и мочевой пузырь. Исследование проводят на уровне мощности рентгеновского аппарата 40-60Кв. Необходимо учитывать, что изменение напряжения на 4-6 Кв в меньшую или большую сторону будет уменьшать или увеличивать экспозицию снимка в два раза. 118 Для исследования животное кладется в боковое положение, краниальный край латерального снимка должен находиться посредине между дорсальной частью последнего ребра и мечевидным отростком грудины. Каудальный край должен включать седалищный бугор и основание хвоста. Ренгенологическое исследование производят посредством серии снимков с небольшим временным интервалом между ними. Выполняется серия снимков на 4-8 минуте, на 13-15 минуте, на 20-25 минуте, а в случае замедления выведения контрастного вещества делают дополнительные рентгенологические снимки на 40 и 60 минуте. При гидронефрозе , для определение лоханочно-чашечной системы урографию делают спустя 1-2 часа после окончания поступления контрастного вещества. Для получения более точного рисунка лоханочно-чашечной системы при гидронефротической трансформации применяют непрерывную урографию, которая заключается в повторном введении контрастного вещества через 20-40 минут после окончания поступления первой дозы в организм. Вторичное введение дозы препарата безопасно для животного. Данный метод исследований легок в использовании и практически общедоступен, в дальнейшем может стать ведущим и обязательным методом диагностики заболеваний мочевой системы. МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ ТОКСОПЛОЗМОЗА И ПРОБЛЕМЫ БЕЗОПАСНОСТИ Шипицина А.А. студ., Доц., канд. вет. наук Сысоева Н.Ю., зав. лаб. Верховская Г.Л. Кафедра «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО «МГУПП» Токсоплазмоз – повсеместно распространенное паразитарное заболевание плотоядных, сельскохозяйственных животных и человека. Возбудителем токсоплазмоза является T. gondii – внутриклеточный паразит, относящийся к типу простейших. Считается, что в среднем около трети населения всего Земного шара заражено токсоплазмами. В США инфицировано от 5 до 30% лиц в возрасте 10-19 лет и от 10 до 67% лиц старше 50 лет. В странах СНГ инфицировано около 30% населения, в Санкт-Петербурге около 25 %. В Москве инфицированность населения токсоплазмозом составляет 26%. а общее число инфицированных в мире составляет не менее 500 млн., что сопоставимо с общим числом лиц инфицированных вирусом гепатита В. Воротами инфекции чаще служат органы пищеварения, хотя известны случаи заражения высоковирулентными штаммами токсоплазм при повреждении кожи. Внедрение возбудителя происходит в нижних отделах тонкого кишечника, затем с током лимфы токсоплазмы достигают регионарных (мезентериальных) лимфатических узлов. Здесь развиваются воспалительные изменения с формированием инфекционных гранулем, напоминающих по клеточному составу туберкулезные или бруцеллезные гранулемы. Мезентериальные лимфатические узлы значительно увеличиваются. Затем токсоплазмы попадают в кровь, разносятся по всему организму и фиксируются в различных органах и 119 тканях (печень, селезенка, лимфатические узлы, нервная система, глаза, миокард, скелетные мышцы). В этих органах образуются скопления паразитов в виде цист, которые могут сохраняться в организме десятки лет и даже пожизненно. В местах фиксации возникают воспалительные очаги, а в некоторых органах (нервная система, скелетные мышцы) - очажки некроза, в которых затем откладываются соли кальция и образуются кальцинаты. Токсоплазмоз относится к зоонозам с природной очаговостью. Окончательным хозяином являются домашние кошки и некоторые дикие представители семейства кошачьих (рысь, пума, оцелот, бенгальский кот, ягуар и др.). Ооцисты, выделяющиеся с их испражнениями, могут приводить к инфицированию как человека, так и многих других животных (свыше 200 видов), которые служат промежуточными хозяевами. Спорулированные ооцисты обладают высокой инвазионной способностью и могут длительное время сохраняться во внешней среде (до двух лет). По данным американских исследователей, в США более 30% кошек инфицированы токсоплазмозом. В России подобных масштабных исследований не проводилось. На территории города Москвы обитает огромное количество мелких домашних животных, при этом с каждым годом увеличивается численность бродячих собак и кошек. Поэтому назрела острая необходимость изучения эпизоотологической ситуации по паразитарным болезням мелких домашних животных и их роли в распространении паразитов в окружающей среде мегаполиса, а также возможной передачи возбудителя жителям города. Первичное заражение токсоплазмозом здоровых животных обычно сопровождается незначительными симптомами. Это могут быть покраснение глаз, небольшие выделения из носа, кратковременный понос. Кошка может слегка похудеть, временно потерять аппетит. Затем, при переходе токсоплазмоза кошки в хроническую стадию, эти симптомы исчезают. Между тем, в этот незаметный период циркуляция токсоплазм по организму все же происходит, и животные могут стать источником заражения для человека. При наиболее частой латентной форме токсоплазмоза симптомы заболевания отсутствуют или настолько незначительны, что хозяева не придают им значения. При подостром токсоплазмозе у кошек после инкубационного периода развиваются повышение температуры тела, поражение органов дыхания в виде покашливания и чихания или тяжелого учащенного дыхания, покраснение глаз и появление из них гнойных выделений. Острый токсоплазмоз кошек протекает с теми же симптомами, только ярко выраженными. В этот период развития токсоплазмоза у кошки человек может заразиться от больного животного. Необходимо отметить, что хронический токсоплазмоз кошки не заразен для хозяев. Однако нужно помнить, что при каждом новом заражении кошки токсоплазмами, которое может произойти, если кошка периодически получает сырое мясо или заражается через цисты других кошек, животное может быть заразно для человека в течение трех недель. В организме собак (и других животных, а также человека) процесс развития токсоплазмоза проходит немного иначе. Собаки могут проглотить цисты токсоплазм, если они что-то едят с земли, а также через зараженное токсоплазмами мясо. Токсоплазмоз собак во многом сходен с течением этого заболевания у кошек. Длительность инкубационного периода примерно такая же — от нескольких дней до шести недель. Как и у кошек, у собак тяжелое течение токсоплазмоза наблюдается редко. В период развития клинических проявлений собаки могут быть заразны для хозяев. Собаки могут заразить человека при облизывании. Через здоровую кожу токсоплазмы не проникают в организм человека, а вот через царапины или слизистые оболочки глаза, рта или носа 120 проникают вполне легко. Собаки, если они во время прогулки валяются на земле, могут набрать цисты токсоплазм на шерсть. Затем эти цисты принести на себе домой. Дальнейший возможный путь этих цист — прямиком в организм человека через домашнюю пыль или руки, загрязненные ими при поглаживании животного. Основные источники заражения людей те же, что и животных — загрязненная цистами токсоплазм земля, уличная пыль, а также содержащее цисты токсоплазм мясо, которое не прошло достаточную термическую обработку. В этом отношении шашлык, который недостаточно долго прогревается при приготовлении, опаснее, чем домашняя кошка. Дети могут заражаться при игре в песочнице. Токсоплазмоз человека протекает принципиально сходно с токсоплазмозом собак. Обычно первичное заражение маскируется под вирусное простудное заболевание. Затем токсоплазмоз переходит в хроническую латентную стадию. Особенно опасно заражение токсоплазмозом женщины во время беременности или непосредственно перед зачатием. Такое заражение может привести к поражению токсоплазмами плода и рождению ребенка с тяжелой врожденной патологией. Сейчас всем беременным женщинам врачи рекомендуют сделать анализ на токсоплазмоз. Важной задачей в борьбе с токсоплазмозной инвазией является активное выявление больных животных как источников инвазии. Клинические проявления токсоплазмоза у животных весьма разнообразны и недостаточно специфичны. Поэтому поставить диагноз по клиническим признакам невозможно. Общими признаками являются лихорадочное состояние при остром течении, диарея, нарушения со стороны нервной системы, патология беременности. В зависимости от локализации паразита могут проявляться различные формы токсоплазмоза: генерализованная (36%), легочная (26%), кишечная (16%), неврологическая (7%), неонатальная (9%), печеночная (2%), кожная (2%), сердечная (1%) и панкреатическая (1%) (Dwight D. Bowman В., 2002). При латентном течении болезни, когда клинические признаки нерезко выражены, диагноз может быть поставлен только на основании лабораторных методов исследования. Наиболее ценным в диагностике токсоплазмоза считается паразитологический метод исследования. Для диагностики токсоплазмоза у кошек используют методы Фюллеборна и Дарлинга, однако получаемые при этом отрицательные результаты не во всех случаях позволяют исключить наличие токсоплазмоза. Диагностическая ценность метода биопроб снижается из-за штаммовых различий токсоплазм. Поэтому в лабораторной диагностике токсоплазмоза ведущее место занимают серологические методы. Наиболее употребительны реакция связывания комплемента и реакция Себина-Фельдмана. В настоящее время токсоплазмоз животных диагностируется с применением серологического метода РСК с токсоплазмозным антигеном. Другие методы менее точны, поскольку в период развития ранних клинических проявлений токсоплазмоза копрологический анализ фекалий на цисты токсоплазм еще не может показать заражения, а у собак, например, цисты в кишечнике вообще не формируются. В последние годы широкое распространение получили реакция иммунофлюоресценции, реакция энзим-меченых антител и полимеразная цепная реакция. Реакция энзим-меченых антител или ELISA превосходит по чувствительности классические серологические тесты, удобна в применении, не дает перекрестных реакций и может с успехом использоваться в серодиагностике токсоплазмоза. В настоящее время многие ветеринарные клиники г. Москвы используют тест-систему «ТОКС» для диагностики токсоплазмоза животных методом полимеразной цепной реакции. 121 Высокая специфичность и чувствительность иммунологических методов, возможность массового применения создают условия для широкого использования их в целях диагностики токсоплазмоза и решения вопросов эпизоотологии и эпидемиологии данного паразитарного заболевания. Для предупреждения заражения токсоплазмозом необходимо соблюдать меры личной профилактики: избегать контактов с бродячими животными, особенно кошками, тщательно мыть руки после работы с землей, так как зараженные кошки загрязняют почву ооцистами токсоплазм, тщательно мыть овощи и фрукты, не пробовать на вкус мясной фарш. Домашних кошек необходимо регулярно обследовать на токсоплазмоз. Главным источником заражения человека токсоплазмозом являются кошачьи фекалии, поэтому убирать кошачьи туалеты необходимо ежедневно и в резиновых перчатках. Ооцисты возбудителя могут попадать на шерсть животного, поэтому нельзя допускать кошек на обеденный стол, постель, после общения с животным необходимо сразу мыть руки теплой водой с мылом. Следить за чистотой шерсти животного. Особую опасность токсоплазмоз представляет для беременных женщин, так как трофозоиты токсоплазм проникают через плацентарный барьер и поражают нервную систему плода, вызывая прерывание беременности, уродства, вплоть до летального исхода. Болезнь протекает остро и вызывает осложнения, а в некоторых случаях заканчивается смертельным исходом, особенно при сниженном иммунном статусе (например, у больных СПИДом). При токсоплазмозе у человека могут наблюдаться серьезные поражения центральной нервной системы, а при вскрытии в головном мозге находят большое количество тканевых цист. Последние исследования смитают влияние Toxoplasma gondii на суицидальное поведение людей. Распространенность токсоплазмоза в России среди жителей в возрасте от 20 до 40 лет составляет по различным данным от 8-10% до 23% . Несмотря на предпринимаемые меры по диагностике, лечению и профилактике токсоплазмоза среди населения Российской Федерации, число заболевших людей из года в год сильно варьирует без однозначной тенденции к снижению. Например, в Тюменской области с 1999 года по 2002 показатели заболеваемости токсоплазмозом увеличились с 0,08 на 100 тыс. до 26,4 на 100 тыс. В 2007 году в этой области не было зарегистрировано ни одного случая заболевания, а в 2008 и 2009 году показатель заболеваемости был 12,2 и 5,67 соответственно. Однако Министерство Здравоохранения Российской Федерации не включает токсоплазмоз в ежегодный отчет о заболеваемости населения инфекционными и паразитарными болезнями, поэтому систематические ежегодные данные привести не удается. Данные по распространенности токсоплазмоза среди домашних и сельскохозяйственных животных менее достоверны. Эта болезнь не входит в перечень заболеваний, представляющих наибольшую угрозу для животноводства и птицеводства, составленный информационно-аналитическим центром Россельхознадзора, поэтому открытого доступа к ежегодным отчетам не предоставляется. В Москве и Московской области в 2011 году по данным серологических исследований положительная реакция на токсоплазмоз обнаружена у 15% крупного рогатого скота, 17% овец, 40% свиней, 8% лошадей, 40% собак, 33% кошек. При копрологичесой проверке выявлено 7% кошек, выделяющих ооцисты. В 2009 году эти показатели составляли: для крупного рогатого скота – 21%, для свиней – 31%, для овец 23%. Для домашних животных 122 достоверной информации за этот период нет. При этом существуют данные, что около 1540% мяса крупного рогатого скота, свиней, овец, кроликов, выпускаемого в реализацию, заражено тканевыми цистами Toxoplasma gondii. Из-за нехватки статистических данных и систем контроля за зараженными продуктивными и домашними животными, сложно объективно оценивать зависимость заболеваемости животных и людей токсоплазмозом. Однако по данным С.Н. Олейникова (2011) около 87% людей (особенно женщин), положительно реагирующих на токсоплазмоз в РСК и внутриклеточной аллергической пробе, имели контакт с животными (кошки, собаки, кролики, свиньи и др.), 72% употребляли в пищу недостаточно термически обработанные продукты животного происхождения. Заражение людей токсоплазмозом возможно алиментарным, аэрогенным, контактным, трансплацентарным и трансмиссивным путями. Чаще всего человек заражается при общении с кошками, которые являются основным источником инвазии. Ооцисты могут попасть в организм человека и с немытыми овощами, фруктами, зеленью. Контактным путем часто заражаются токсоплазмозом ветеринарные врачи, работники боен, мясокомбинатов, продавцы мяса. Несмотря на широкую распространенность токсоплазмоза среди животных и людей и многочисленные способы заражения, меры профилактики для этого заболевания достаточно просты. Для предупреждения заражения токсоплазмозом необходимо соблюдать меры личной профилактики: избегать контактов с бродячими животными, особенно кошками, тщательно мыть руки после работы с землей, так как зараженные кошки загрязняют почву ооцистами токсоплазм, тщательно мыть овощи, фрукты и зелень, не пробовать на вкус мясной фарш. Домашних кошек необходимо регулярно обследовать на токсоплазмоз. При работе с сельскохозяйственными животными животными или с мясной продукцией также следует соблюдать общие меры безопасности и правила личной гигиены. Необходимо регулярно проводить иммунологические и серологические обследования на токсоплазмоз тех животных, с которыми человек постоянно взаимодействует в быту и на производстве. Важно предотвращать контакт насекомых-синантропов с пищевыми продуктами, так как эти насекомые, например, комнатная муха (Musca domestica), могут на конечностях переносить ооцисты Toxoplasma gondii. В настоящее время не существует вакцин против токсоплазмоза с доказанной эффективностью, как для людей, так и для животных. Поэтому соблюдение мер профилактики, а также своевременная диагностика и лечение – это наиболее эффективные способы снижения заболеваемости этим зоонозом. Для эффективной борьбы с токсоплазмозом необходимо комплексная ветеринарно-санитарная программа, направленная на профилактику заражения человека, животных и контаминации окружающей среды возбудителем. Большую роль в этой программе должно сыграть информирование населения о правилах личной гигиены при общении с животными. Таким образом, для борьбы с токсоплазмозом в условиях мегаполиса, необходимо разработать комплексную ветеринарно-санитарную программу, направленную на профилактику заражения животных, человека и контаминации окружающей среды возбудителями инвазий. Большую роль в этой программе должно сыграть информирование населения об элементарных санитарных правилах при общении с животными. 123 Список литературы: 1. Олейников С.Н. Ветеринарно-санитарные аспекты заболеваемости животных токсоплазмозом //Сб. мат-лов первой Международной юбилейной конференции «Актуальные проблемы инфектологии и паразитологии». Томск, 2-5 апреля 2001 г. С. 136 2. Среда мегаполиса Москвы и проблемы паразитарного загрязнения //Мед. паразитология и паразитарные болезни /М.Д. Сонин и [др]. 1995. № 3. С. 3-1 3. Dwight Bowman В. D. Feline clinical parasitology. 2002. P. 137 ВЕТЕРИНАРНО-САНИТАРНАЯ ОЦЕНКА ПРЕСНОВОДНОЙ РЫБЫ ПРИ ГЕЛЬМИНТОЗАХ ФГБОУ ВПО «МГУПП», ИВЭСиЭ В настоящее время в потреблении рыбы в России есть большой процент импорта. Поэтому перед государством стоят четкие задачи, которые необходимо реализовать для развития рыбной отрасли. Основное, на наш взгляд, – это увеличение вылова пресноводной рыбы на внутреннем рынке за счет зарыбления внутренних водоемов. Во внутренних водоемах 82,6% улова рыбы и добычи приходится на пресноводные водоемы. Основные виды гельминтов, не опасные для человека, поражающие пресноводную рыбу, обитающую во внутренних водоемах как естественного, так и искусственного происхождения, относятся к классу Trematoda, , для которых рыбы являются дополнительным хозяином в биологическом цикле их развития. Большинство видов гельминтов характеризуется достаточно широкой специфичностью и могут использовать для своего развития разные виды рыб. Однако в подавляющем большинстве случаев - это разные представители семейства карповых и окуневых. Как показал анализ данных, зараженность пресноводной рыбы (карпа, сазана, красноперки, леща и др.) метацеркариями трематод в отдельных рыбоводческих водоемах различных регионов страны может достигать 100 %. Эпизоотология и патогенез при этих заболеваниях изучены достаточно полно, однако сведения о влиянии гельминтов на качественные показатели мяса рыб представлены недостаточно. Нами был изучен химический состав рыбы семейства карповых, пораженных метацеркариями трематод, относящихся к семейству Diplostomidae, по ГОСТ 7636-85. Проведение бактериоскопии поверхностных и глубоких мышц проводили согласно «Правилам ветеринарно-санитарной экспертизы пресноводной рыбы и раков». . Среди пораженных диплостоматозом рыб семейства карповых наибольшая экстенсивность инвазии установлена у красноперки (41,37 %). Интенсивность инвазии колебалась от 5-10 до 25-35 черных пятен различного диаметра, расположенных на хвостовых плавниках, спине, жабрах и характеризовалась нами как слабая и средняя степень инвазии (рис. 1). Химический состав рыбы зависит от вида, пола, возраста, физиологического состояния, времени лова, места обитания, условий среды. Белки в мясе большинства видов рыб составляют 14-22%. В состав мяса рыбы входят главным образом простые полноценные белки: актин, миозин, актомиозин, миоген, глобулин, миоальбумин. В небольших количествах содержатся сложные белки, в том числе 124 глюкопротеиды, которые при гидролизе отщепляют глюкозу, придавая мясу рыбы сладковатый вкус. Белки соединительной ткани (преобладает коллаген) составляют не более 3 % общего количества белков мяса рыбы (в мясе животных - до 20%). Этим обусловлены полноценный состав и высокая усвояемость белков рыбы. Рис.1. Красноперка, пораженная постодиплостоматозом Жир рыбы имеет жидкую консистенцию, так как в его составе преобладают (до 84%) непредельные жирные кислоты. Содержание жира в рыбе подвергнуто большим колебаниям - от 0,1 (в треске) до 54 % (в угре). Жир рыбы имеет высокую усвояемость (96-97 %). В его состав входят ценные биологически активные вещества: жирорастворимые витамины (A, D), а также фосфатиды, линолевая, линоленовая и арахидоновая кислоты. В жире рыб преобладают высоконепредельные жирные кислоты, поэтому он при хранении легко окисляется и прогоркает, резко снижая качество рыбных товаров. Углеводы содержатся в тканях рыбы в небольшом количестве (0,05-0,85 %). Они представлены гликогеном и продуктами его расщепления - глюкозой, мальтозой и декстринами. Углеводы играют определенную роль в формировании цвета, вкуса и запаха рыбных товаров. Одной из причин потемнения мяса рыбы при обработке (сушке, вялении и др.) является образование темноокрашенных меланоидинов в результате реакции углеводов и азотистых соединений. Экстрактивные азотистые вещества в свежем мясе большинства рыб содержатся в количестве 1,5-4,0%. При хранении их содержание возрастает, некоторые распадаются с образованием ядовитых веществ, приводят к снижению качества и порче рыбы. По концентрации летучих азотистых оснований устанавливается степень свежести рыбы. Витамины в тканях и органах рыб распределены неравномерно. Витамины А и D сосредоточены преимущественно в печени. Печень трески, макруруса, акулы и других рыб используется как сырье для получения медицинского жира. В мясе и других органах рыбы также содержатся витамины Е, К, Н, РР, группы В и др. Паразитирование личинок гельминтов в рыбе влияет на качественные показатели химического состава мяса. Результаты исследования мяса больных и здоровых рыб приведены в табл. 1. 125 Показатели Влага Общий белок Жир Зола Таблица 1- Общий химический состав мышечной ткани рыбы, % Здоровая рыба Пораженная рыба Слабая ИИ инвазии Средняя ИИ инвазии 70,80±0,36 73,26±1,13 75,29±1,47 19,69±0,78 18,06±0,74 17,38±0,88 5,93±0,31 4,19±0,31 3,15±0,16 1,002±0,047 0,944±0,03 0,846±0,01 Как видно из данных, представленных в таблице, количество влаги в мясе рыб, пораженной метацеркариями постодиплостомоза, увеличено при слабой ИИ на 3,47, при средней – на 6,34 %. Содержание белка снижено на 8,27 и 11,73 % соответственно. Количество жира и минеральных веществ уменьшено относительно рыбы, не инвазированной метацеркариями постодиплостомоза. По-видимому, чем выше интенсивность инвазии, тем больше содержание воды в мясе рыб и тем меньше белка, жира, золы. Данные статистически достоверны, что свидетельствует о снижении питательной ценности пораженной рыбы. При бактериологическом исследовании мазков-отпечатков с различной интенсивностью инвазии, окрашенных по Граму, установлено, что в мазках из поверхностных слоев у неинвазированной рыбы и со слабой степенью инвазии находили 1-3 кокков и 5-8 палочек в поле зрения микроскопа, препарат плохо окрашен, на стекле нет остатков разложившейся ткани.В мазках-отпечатках из поверхностных мышц рыбы с ИИ 25-35 экз. личинок в поле зрения отмечали от 10 до 20 кокков, и 1-12 палочек в поле зрения. В мазках из глубоких слоев мышц рыбы неинвазированной и слабой степенью инвазии микроорганизмы обнаружены не были. В мазках из глубоких слоев мышц рыбы с ИИ 25-35 экз. личинок обнаруживали грамотрицательные палочки, без спор и капсул, расположенные одиночно в количестве до 6 в поле зрения; грамположительные кокки, расположенные попарно, до 10 в поле зрения. Увеличение общей микробной обсемененности при постодиплостоматозе можно, объяснить, по-видимому, проникновением их вместе с личинками через кожный покров, их миграции и ослаблением в связи с этим общей резистентности организма рыб. Полученные нами данные показывают, что инвазированная метацеркариями трематод семейства Diplostomidae имеет пониженную пищевую ценность и повышенную бактериальную обсемененность, что должно учитываться при ее реализации в торговой сети. 126 Для заметок 127 МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ федеральное государственное образовательное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования «МОСКОВСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ ПИЩЕВЫХ ПРОИЗВОДСТВ» Научная конференция «Разработка инновационных инструментальных методов исследования внутренних болезней животных» Сборник материалов конференций в 15 частях Часть II Ответственный редактор Стахи Т.А. Подписано в печать 25.04.15. Формат 60×90 1/16. Печ. л.19,3. Тираж 500 экз. Изд. № 1. Заказ 15 125080, г.Москва, Волоколамское ш., д. 11 Web: www.mgupp.ru
