Н+-ПИРОФОСФАТАЗНАЯ И Н+-АТФазная АКТИВНОСТЬ ВАКУОЛЯРНОГО ТИПА КЛЕТОК ПРОРОСТКОВ КУКУРУЗЫ О.В. Танкелюн, Н.В. Шахова Биологический институт С.-Петербургского госуниверситета, Санкт-Петербург, факс (812)427-73-10, e-mail: [email protected] В последние годы появляется все больше данных о том, что протонные насосы вакуолярной мембраны, Н+-АТФаза и Н+-пирофосфатаза, имеют различное физиологическое значение в процессах роста и развития, а также адаптации растений к стрессовым воздействиям [1]. В представленной работе анализировали уровень гидролиза АТФ и пирофосфата (PPi) в содержащих тонопласт препаратах мембран из клеток проростков кукурузы. В опытах использовали побеги 2-дневных проростков, у которых клетки, находятся, главным образом, в фазе деления, отрезки колеоптилей кукурузы 4-дневных проростков кукурузы, состоящие из растягивающихся клеток, а также различные зоны роста корня 3-дневных проростков: 2-миллиметровый кончик корня (зона меристемы и корневой чехлик), последующие 6 мм зоны растяжения, 10 мм зоны корневых волосков. Анализировали уровень NO3- ингибируемой АТФазной активности и KCl-стимулируемой пирофосфатазной активности, так как, по литературным данным [2] и собственным результатам регистрации образования градиента рН на мембранах микросом (по изменению адсорбции акридинового оранжевого), АТФзависимый транспорт Н+ внутриклеточных мембран полностью подавляется нитратом (50 мМ), а PРi-зависимое поглощение Н+ наблюдается только в присутствии ионов К+. В надземной части проростков кукурузы пирофосфатазная активность (в расчете на количество мембранного белка) почти в два раза выше у делящихся клеток, чем у клеток, растущих растяжением (рисунок).В корнях проростков уровень KCl-стимулируемой пирофосфатазной активности постепенно снижался при переходе клеток от деления к растяжению и от растяжения к диффенренцированному состоянию (зона корневых волосков). NO3--ингибируемая АТФазная активность существенно не различалась по величине у клеток в фазе деления и растяже49 мкмоли Pi/(мг белка . ч) ния побегов и корней проростков кукурузы, она показывала тенденцию к росту в зоне дифференцированных клеток корней. 12 Побеги 10 Корни 8 6 4 2 0 а б I а б II а б в I а б в Рис. KCl-стимулируемая пирофосфатазная (I) и NO3--ингибируемая АТФазная (II) активности содержащих тонопласт фракций из клеток проростков кукурузы а – делящиеся клетки 2-дневных побегов и кончиков корней; б – растущие растяжением клетки колеоптилей 4-дневных побегов и зоны растяжения корней, в – дифференцированные клетки зоны корневых волосков Эти данные соответствуют представлению о том , что пирофосфатаза тонопласта является основным протонным насосом вакуолярного тип в делящихся клетках, молодых, развивающихся тканях и органах [3]. Одна из функций пирофосфатазы в быстро растущих тканях состоит в обеспечении направленности реакций в сторону биосинтезов, так как расходуемый ею пирофосфат относится к побочным продуктам многих биосинтетических реакций в растительной клетке. При переходе клеток к росту растяжением возрастает интенсивность дыхания [4], увеличивается содержание АТФ, которое поддерживается на миллимолярном уровне и у дифференцированных клеток. V-АТФазу относят к ферментам, поддерживающим жизнедеятельность клетки в продолжение всего онтогенеза растения [3]. Однако в ситуациях, когда уровень АТФ падает, например в условиях гипоксии и охлаждения, у многих растений вновь возрастает значение Н+-пирофосфатазы [5]. 50 Литература 1. Maeshima M. Vacuolar H+-pyrophosphatase // Biochim. Biophys. Acta. 2000. V. 1465. № 1. P. 37–51. 2. Chanson A., Fishman J., Spear D., Taiz L. Phyrophosphate-driven proton transport by microsomal membranes of corn coleoptiles // Plant Physiol. 1985. V. 79. № 1. P. 159–164. 3. Maeshima M., Nacanishi L., Matsuura-Endo C., Tanaka Y. Proton pumps of the vacuolar membrane in growing plant cells // J. Plant Res. 1996. V. 109. № 1093. P. 119–125. 4. Саламатова Т.С. Физиология растительной клетки. Л.: Изд. ЛГУ, 1983. 232 с. 5. Carystinos G.D., Mac Donald H.R., Monroy A.F., Dhinda R.S., Poole R.J. Vacuolar H+-translocating pyrophosphatase is induced by anoxia or chilling in seedlings of rice // Plant Physiol. 1995. V. 108. № 2. P. 641–649. 51