На правах рукописи ЗУБКОВ Евгений Андреевич ЭФФЕКТ ХРОНИЧЕСКОГО ВВЕДЕНИЯ ТИРОКСИНА НА ПОВЕДЕНИЕ, 5-НТ1А и 5-НТ2А РЕЦЕПТОРЫ МОЗГА У МЫШЕЙ, РАЗЛИЧАЮЩИХСЯ ПО ГЕНЕТИЧЕСКИ ДЕТЕРМИНИРОВАННОЙ ПРЕДРАСПОЛОЖЕННОСТИ К КАТАЛЕПСИИ 03.00.13 ФИЗИОЛОГИЯ Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук Новосибирск 2009 00348Э244 Работа выполнена в Лаборатории нейрогеномики поведения Института цитологии и генетики СО РАН, г. Новосибирск Научный руководитель: доктор биологических наук, Куликов Александр Викторович Официальные оппоненты: доктор биологических наук, Шишкина Галина Трифоновна Институт цитологии и генетики СО РАН г. Новосибирск доктор биологических наук, Дубровина Нина Ивановна Институт физиологии СО РАМН г. Новосибирск Ведущее учреждение - Институт систематики и экологии животных СО РАН Защита состоится 2009 г. на заседании диссертационного совета Д 001.014.01 01 при Институте физиологии СО РАМН (630017, г. Новосибирск, ул. Тимакова, 4) С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Института физиологии СО РАМН Автореферат разослан / р J,-£Qc$ vp>S& Ученый секретарь диссертационного совета, кандидат биологических наук Y fl ( 2009 г. БузуеваИ.И. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ Актуальность проблемы Тиреоидные гормоны (ТГ) играют ключевую роль в онтогенезе центральной нервной системы и поведении. Имеются многочисленные клинические наблюдения о связи нарушений тиреоидной функции с психическими расстройствами. Однако данные об участии ТГ в регуляции поведения и психики противоречивы и мало изучены. Одни авторы связывают риск депрессии с гипертиреоидизмом (Joffe, Levitt, 1993; Musselman, Nemeroff, 1996), в то же время другие - с гипотиреоидизмом (Baumgathner et al., 1994; Bauer et al., 2002). В ряде случаев ТГ используются для лечения некоторых форм депрессивных расстройств и для усиления действия трициклических антидепрессантов (Joffe, Levitt, 1993; Musselman, Nemeroff, 1996; Kelly, Lieberman, 2009). Более того, тироксин (Т4) широко используется для лечения различных форм нарушения тиреоидной функции. Однако эффекты хронического употребления ТГ на нервную систему и психику не изучены. Более того, не выяснены механизмы индивидуальной чувствительности к ТГ (Bauer et al., 2003). Согласно наиболее распространенной гипотезе, ТГ осуществляют регуляцию поведения через изменение функции серотониновой системы мозга (Kirkegaard, Faber, 1998; Bauer et al., 2002). Действительно, было установлено участие ТГ в регуляции 5-НТ2А рецепторов в головном мозге: тиреоидэктомия уменьшает плотность (Kulikov et al., 1999) и уровень мРНК (Куликов и др., 2002) 5-НТ2А рецепторов в коре мозга крыс Wistar, a высокие дозы Т4 увеличивают плотность (Mason et al., 1987) и функциональную активность 5-НТ2А рецепторов у крыс (Tikhonova et al., 2005). Показана ассоциация между реакцией замирания (каталепсией), 5-НТ,А, 5-НТ2д рецепторами и ТГ (Kulikov, Popova, 2007). У крыс каталепсия сопровождается снижением Т4 в крови (Barykina et al., 2002; Tikhonova et al., 2005), в то время как хроническое введение Т4 оказывает антикаталептическое действие (Kulikov et al., 2002). С другой стороны, каталепсия связана с серотониновой системой мозга (Ророѵа, 1999): крысы каталептической линии ГК имеют сниженную плотность 5-НТ2А рецепторов в стриатуме по сравнению с животными устойчивой к каталепсии линии Wistar (Kulikov et al, 1995). Агонист 5-НТ|А рецепторов 8-OH-DPAT ингибирует каталепсию (Kulikov et al., 1994; Попова и др., 1994; Prinssen et al., 2002). Другой разновидностью наследственной каталепсии является «щипковая каталепсия» (pinch-induced catalepsy) мышей (Ornstein, Amir, 1981). В настоящее время изучен генетический контроль наследственной каталепсии мышей и показана локализация главного гена каталепсии в п терминальном фрагменте хромосомы. 13 (Куликов и др., 2003; Kondaurova et al., 2006; Kulikov et al., 2008). Выявлена связь наследственной каталепсии с 5-НТіА и 5-HT2A рецепторами (Попова и др., 1994; Kulikov et al., 1995) и ее сцепление с геном 5-НТ1А рецептора (Kondaurova et al., 2006). Наследственная каталепсия мышей СВА была значительно усилена длительной селекцией и получена линия мышей ASC (Antidepressant Sensitive Catalepsy), в которой доля каталептиков достигала 85%. Мыши этой линии характеризуются депрессивно-подобными чертами поведения (Базовкина и др., 2005). Ассоциация между поведением, ТГ и серотониновыми рецепторами у мышей исследована не была. Целью данной работы было сравнение хронического воздействия Т4 на поведение и серотониновые рецепторы головного мозга половозрелых мышей, различающихся по генетически детерминированной предрасположенности к каталепсии. В связи с этим были поставлены следующие задачи: 1. Сравнение эффектов хронического введения Т4 на каталепсию, поведение в тестах открытого поля, свет/темнота, принудительного плавания, а также на активность и экспрессию 5-НТ,А и 5-НТ2А рецепторов в структурах головного мозга у мышей каталептической линии ASC и устойчивой к каталепсии мышей линии AKR. 2. Изучение влияния терминального фрагмента 13й хромосомы линии мышей СВА, перенесенного в геном мышей AKR, на эффекты хронического введения Т4 в тестах открытого поля, свет/темнота, принудительного плавания, социального интереса, а также на экспрессию 5-НТ1А и 5-HT2A рецепторов в структурах головного мозга у мышей каталептической линии AKR.CBA-D13Mit76 и устойчивой к каталепсии мышей линии AKR. Научная новизна работы В настоящей работе впервые: • показан каталептогенный эффект Т4 у мышей линии AKR; • установлено, что Т4 оказывает антидепрессантный эффект на мышей линии ASC, и это не связано с его влиянием на общую двигательную активность; • показано, что хроническое введение Т4 увеличивает у мышей AKR активность и экспрессию мРНК 5-НТ2А рецепторов во фронтальной коре головного мозга; • показано, что эффекты хронического введения Т4 на выраженность каталепсии, двигательную активность в тесте «открытое поле», неподвижность в тесте принудительного плавания, агрессию в тесте социального интереса и функцию 5-НТ1А и 5-НТ2А рецепторов мозга зависят от генетически детерминированной предрасположенности к каталепсии у мышей; 4 • установлено, что перенос терминального фрагмента хромосомы 13 от мышей линии СВА в геном мышей AKR подавляет вызванное Т4 увеличение двигательной активности и уровня мРНК 5-НТ2А рецепторов у мышей конгенной линии AKR.CBA-D13Mit76. Теоретическая и научно-практическая ценность работы Результаты настоящего исследования позволяют глубже понять физиологические и молекулярные механизмы воздействия ТГ на поведение, а также подтверждают предположение о связи между серотониновой системой мозга, нарушениями поведения и ТГ. Мыши, различающиеся по генетически детерминированной предрасположенности к каталепсии, могут быть предложены в качестве моделей для изучения механизмов чувствительности к изменениям тиреоидного статуса: мыши линии AKR - для изучения нарушений поведения, вызванных ТГ; мыши линии ASC могут быть предложены как модель антидепрессантного действия ТГ; линия мышей AKR.CBAD13Mit76 - моделью изучения взаимодействия цитокиновой и тиреоиднои систем. Результаты работы используются при чтении курса лекций «Молекулярные механизмы регуляции поведения» для студентов 4го курса факультета естественных наук Новосибирского государственного университета. Положения, выносимые на защиту 1. Генетическая предрасположенность к каталепсии является биологическим предиктором эффектов хронического действия Т4. 2. Изменения в поведении, 5-НТ|А и 5-НТ2А рецепторах мозга, наблюдаемые у животных AKR и ASC в первой экспериментальной серии, скорее всего являются следствием отсроченного действия Т4. 3. Хроническое действие Т4 вызывает у мышей линии AKR каталептогенный эффект, повышение горизонтальной двигательной активности, усиление агрессии на ювенильного самца, активацию и повышение экспрессии гена 5-НТ2А рецептора во фронтальной коре головного мозга. 4. Хроническое действие Т4 вызывает у мышей линии ASC: антикаталептический и антидепрессантный эффект, а также десенситизацию 5-НТІА рецепторов мозга. 5. Концевой фрагмент 13й хромосомы от мышей линии СВА, перенесенный в геном мышей AKR, блокирует эффекты хронического введения Т4, наблюдаемые у мышей линии AKR. 5 Апробация результатов Полученные результаты были представлены и обсуждены на XLIII и XLIV международных научных студенческих конференциях "Студент и научно-технический прогресс" (Новосибирск, 2005, 2006) и на III Съезде фармакологов России «Фармакология - практическому здравоохранению». Публикации По теме диссертации опубликовано 6 работ, из них три статьи в рецензируемых отечественных (2) и международных (1) журналах и трое тезисов на конференциях. Структура и объем работы Диссертация включает введение, обзор литературы, материалы и методы, результаты, обсуждение, выводы, список цитируемой литературы (191 наименований) и приложение. Работа изложена на 101 страницах, содержит 7 рисунков и 13 таблиц (из них 4 в приложении). МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ Животные. Эксперименты проводились на половозрелых самцах мышей линии AKR/J, ASC/Icg и AKR.CBA-Dl3Mit76. Линия AKR/J поддерживается в Институте Цитологии и Генетики (Новосибирск, Россия) в течение 40 лет братско - сестринским инбридингом и не проявляет каталепсии. Линия ASC/lcg (Antidepressant Sensitive Catalepsy) была получена в лаборатории нейрогеномики поведения ИЦиГ СО РАН, селекцией бэккроссов между каталептической линией CBA/LacJ и AKR/J на высокую предрасположенность к каталепсии (Kulikov et al., 2008). Первые четыре поколения селекцию проводили без инбридинга, и еще четыре поколения с инбридингом, затем селекцию прекратили, но инбридинг продолжали (Базовкина и др., 2005; Kondaurova et al., 2006). Животные этой линии характеризовались выраженными депрессивноподобными чертами (Базовкина и др., 2005). Линия AKR.CBA-D13Mit76 была получена в лаборатории нейрогеномики поведения ИЦиГ СО РАН путём переноса фрагмента 13й хромосомы, помеченного маркёром D13Mit76, с CBA/LacJ в геном AKR/J. Полученные гибриды первого поколения от скрещивания AKR/J и CBA/LacJ затем бэккроссировались 9 раз на линию AKR7J. Перенос фрагмента контролировался с использованием маркера D13Mit76 (Kulikov et al., 2008). Мыши отнимались от матерей в возрасте 1 мес и содержались по 6-8 особей в клетках 40 х 25 х 15 см. К началу эксперимента животные были в возрасте 2-3 мес и весили 22 ± 3 г. Мышей делили на равные по весу группы: контроль и опыт, и помещали по 4-5 особей в клетки размером 40 х 25 х 15 см (при постоянной температуре 22°С и естественном освещении). Содержание мышей и все экспериментальные процедуры были выполнены в соответствии с международными правилами 6 обращения с животными (Директива 86/309 Европейского сообщества от 24 декабря 1986 г.). Экспериментальные серии: Были проведены две последовательные экспериментальные серии по изучению хронического влияния Т4. Цель первой экспериментальной серии - выяснение отсроченного действия Т4 на выраженность поведения, активность и экспрессию 5-НТ)А и 5-НТ2А рецепторов у мышей родственных линий, различающихся по генетической предрасположенности к каталепсии и выраженности депрессивноподобного поведения. Для этой серии были взяты 40 мышей линии AKR и 36 ASC. Половина животных обеих линий в течение 60 дней получали воду, содержащую Т4 (Берлин-Хеми, Германия) в концентрации 2 мг/л (экспериментальная группа). Воду меняли через два дня. Другая половина служила контролем и получала обычную воду. На 61" день с начала эксперимента животным экспериментальной группы перестали добавлять Т4 в питьевую воду, чтобы у них нормализовался уровень гормона в крови. На 63" день животных контрольной и экспериментальной групп изолировали в индивидуальных клетки для снятия группового эффекта, и содержали так до окончания экспериментального периода. Измерения поведения начинались на следующий день после изоляции. Поведенческие тесты проводились в следующем порядке: (1) тест на каталепсию, (2) тест открытого поля, (3) тест «свет/темнота», (4) тест принудительного плавания. С интервалами в один - два дня между тестами. Затем половину животных забивали для определения уровня Т4 в крови и экспрессии генов 5-НТіА и 5-НТ2А рецепторов, а другую половину использовали для определения активности 5-НТІА и 5-НТ2А рецепторов (между фармакологическим экспериментами был перерыв в один день). Для проверки тиреоидного статуса животных в течение эксперимента 7 самцов AKR и 7 самцов ASC того же возраста и веса получали Т4 в течение 14 дней, а другие 7 самцов AKR и 7 самцов ASC - воду в течение этого периода. Этих 28 животных забивали на 15" день для определения уровня Т4 в плазме крови. Цель второй экспериментальной серии - выяснить влияние фрагмента хромосомы 13 от линии СВА, определяющего предрасположенность к каталепсии, на чувствительность к гипертиреоидному статусу. Для этой серии были взяты 25 мышей линии AKR и 21 AKR.CBA-D13Mit76. 11 мышей линии AKR и 8 AKR.CBA-D13Mit76 получали воду, содержащую Т4 в концентрации 2 мг/л, в течение 60 дней и продолжали получать гормон на протяжении всех поведенческих тестов вплоть до забоя. Воду меняли через два дня. Оставшиеся мыши (14 AKR и 13 AKR.CBAD13Mit76) получали обычную воду. За два дня до поведенческих тестов животных изолировали в индивидуальные клетки для снятия группового эффекта, и содержались так до окончания экспериментального периода. 7 Поведенческие тесты проводились с интервалом в один - два дня. Поведенческие тесты проводились в следующем порядке: (1) тест открытого поля, (2) тест «свет/темнота», (3) тест принудительного плавания, (4) тестирование социального интереса. Затем мышей забивали для определения уровня тироксина в крови и измерения экспрессии генов 5-НТід рецептора, 5-НТ2А рецептора. Тестирование каталепсии. Каталепсию вызывали, зажимая в течение 5 с кожу загривка, затем животное помещали на две параллельные, разновысокие перекладины, расположенные под углом 45 градусов. Тест считался положительным, если период, в течение которого мышь сохраняла приданное ей неестественное положение, был не менее 20 секунд. Время теста ограничивали 120 с, после чего животное возвращали в домашнюю клетку. Каждый из последовательных 10 тестов проводили с интервалом в 1-2 минуты. Животное, дающее 3 положительных теста из 10, рассматривалось, как каталептик (Куликов и др., 1989; Kulikov et al., 1993). Тест «открытое поле». Тест проводился на ярко освещенной белой арене размером 80x80x20 см.(1 серия) и 40x40x20 см (2 серия). Мышь помещали у стенки арены и ее перемещение регистрировали с помощью цифровой видеокамеры. Автоматическую трассировку животного проводили с помощью оригинальной программы EthoStudio (http://www.ethostudio.com). Двигательную активность оценивали по длине пути, пройденному мышью (см). Также определяли время нахождения мыши в центре (диаметром 40 и 20 см в 1 и 2 сериях, соответственно) (Куликов и др., 2005; Kulikov et al., 2008). Тестирование длилось 5 мин. Число вертикальных стоек определяли визуально. Тест «свет/темнота». Тест проводили в аппарате, состоящем из двух отсеков: открытого и хорошо освещенного и закрытого (темного). Отсеки соединялись между собой с помощью квадратного отверстия (7x7 см). Мышь помещали в центр открытого отсека мордой к закрытому, и в течение 5 мин регистрировали число переходов между отсеками и время, проведенное в темном отсеке. Тест принудительного плавания. Мышь помещали в пластиковую коробку (18x18x23 см.), заполненную на 3Л водой при температуре 25°С. После 40 с адаптации в течение 3 мин регистрировали время неподвижности (с), в течение которого мышь сохраняла состояние относительной неподвижности (Базовкина и др., 2005). Тестирование социального интереса. В домашнюю клетку экспериментального самца подсаживали беспородного ювенильного самца (возраст 4 недели). Социальные и агрессивные элементы поведения были оценены с точки зрения их количества и продолжительности в течение 10 мин. Социальное взаимодействие включает обнюхивание, груминг и 8 следование. Агрессию оценивали по проценту животных, проявляющих агрессивное поведение (Vishnivetskaya et al., 2007). Измерение функциональной активности 5-НТ2А рецепторов. Функциональную активность 5-НТ2А рецепторов определяли по числу стереотипных встряхиваний головой (head twitches) после введения агониста 5-НТ2А рецепторов DOI (1 мг/кг, в/б). Тест проводили в домашней клетке животного, число встряхиваний подсчитывалось визуально в течение 20 мин. Измерение функциональной активности 5-НТ)А рецепторов. Функциональную активность 5-НТ|А рецепторов определяли по выраженности гипотермической реакции на введение селективного для рецепторов этого подтипа агониста - 8-OH-DPAT (1 мг/кг, в/б). Гипотермнческую реакцию оценивали по разности ректальной температуры до введения и через 20 мин после введения препарата. Определение общего тироксина в крови. Концентрацию общего тироксина в плазме крови определяли методом иммуноферментного анализа набором реагентов "Тироид ИФА-тироксин" ("Алкор-Био", СанктПетербург, Россия) и выражали в нМ (Barykina et al., 2002). Экспрессию генов определяли при помощи количественного метода ОТ-ПЦР с использованием известных количеств геномной ДНК в качестве внешнего экзогенного стандарта и мРНК бета-актина (1 серия) или РНКполимеразы 2 (2 серия) в качестве внутреннего эндогенного стандарта (Kulikov et al., 2005; Науменко, Куликов, 2006). Статистическая обработка данных. Влияние Т4 на каталепсию и на процент агрессивных животных в тесте социального интереса оценивали с помощью %2 статистики для четырехпольной таблицы. Данные по результатам всех остальных экспериментов выражали как М ± т и сравнивали с помощью двухфакторного дисперсионного анализа (ANOVA) с последующим множественным сравнением по Фишеру. РЕЗУЛЬТАТЫ Изучение отсроченного действия хронического введения Т4 на поведение, 5-НТІА и 5-НТ2А рецепторы в головном мозге у мышей линий AKR и ASC. Было показано достоверное увеличение концентрации Т4 в крови у мышей, получавших Т4 в течение 14 дней (с 45.0 ± 5.6 до 305.8 ± 29.7 нМ у AKR и с 46.1 ± 5.6 до 255.2 ± 11.4 нМ у ASC, F)>23=190, рО.001). Следовательно, данная концентрация Т4 в воде достаточна для поддержания высокого уровня гормона в плазме мышей обеих линий в течение периода воздействия. Через 13 после прекращения введения Т4 уровень гормона в крови снизился у мышей обеих линий (до 45.6 ± 4.8 нМ уАКЯидо21.8± 1.5нМуАБС). 9 В тесте на щипковую каталепсию у 20 контрольных мышей линии AKR не было обнаружено ни одного каталептика (0%), однако 7 из 20 мышей этой линии, получавших Т4 в течение 60 дней, проявляли каталепсию (35%) (%2 = 8.5, р<0.01). В контрольной группе мышей ASC 13 из 18 животных были каталептиками (72%), в экспериментальной группе мышей процент каталептиков снизился до 37% (7 из 18) (%2 = 4.7, р<0.05, Рис.1). 80 5? 70 S" S с 0) С н я *: 60 50 40 30 20-1 ** 10 - AKR ASC Рис.І. Процент животных, проявляющих щипковую каталепсию у контрольных (белые столбики) и получавших Т4 (штрихованные столбики) мышей линий AKR и ASC. *р<0,05; **р<0,01 по сравнению с соответствующим контролем. Хроническое введение Т4 вызвало значительное увеличение пройденного пути у мышей линии AKR (1520 ± 147 см у контрольных и 2170 ± 184 см у получавших Т4, р<0.01), но не у животных линии ASC (р>0.05). Гормон увеличил время нахождения в центре у мышей обеих линий (F| 72=9.65, р<0.01). Но это увеличение скорее всего является следствием увеличения подвижности, поскольку различие исчезло после коррекции времени в центре на величину пройденного пути (Fi,7i=2.56, р>0.05). Хроническое введение Т4 не повлияло на параметры тревожности в тесте свет/темнота (F, 72=3.62, р>0.05 для переходов между отсеками и Fi,72=3.58, p>0.05 для времени в темном отсеке). Выявлен значительный эффект генотипа (F, т =80.69, рО.001), Т4 (F],m=13.39, р<0.001) и взаимодействия генотип х Т4 (F, П2=35.64, рО.001) на неподвижность в тесте принудительного плавания (Рис.2). Хроническое введение Т4 не оказало воздействия на неподвижность у мышей линии AKR (р>0.05), но значительно снизило её у мышей ASC (рО.001). 10 & 140 i н о 120 о I щ S 100 - 80 ш 60 Ч о с 40 ф I о; 5 О) О. CQ ^ 20 - AKR ASC Рис,2. Время неподвижности (с) в тесте принудительного плавания у контрольных (белые столбики) и получавших Т4 (штрихованные столбики) мышей линий AKR и ASC. ***р<0.001 против соответствующего контроля; ~р<0.01 против контрольных мышей линии AKR. Влияние Т4 на число вызванных DOI встряхиваний головы и на концентрацию мРНК 5-НТ2А рецептора во фронтальной коре мышей AKR и ASC показано на рисунке 3. Обнаружено влияние генотипа (F|37=4.5, р<0.05), Т4 (F, 37=11.7, р<0.01), но не взаимодействия генотип х Т4 (F, 37=0.15, р>0.05) на число вызванных DOI встряхиваний головой. Хроническое введение Т4 значительно увеличило число встряхиваний головой (60.0 ± 7.6 у получавших Т4 по сравнению с 40.0 ± 2.2 у контроля, р<0.01) у мышей AKR, но гормон не влиял на число встряхиваний головой (69 ± 5.5 у получавших Т4 и 53 ± 3.8, р>0.05 у контроля) у животных линии ASC. Сходная закономерность обнаружена при изучении эффекта Т4 на уровень мРНК 5-НТ2А рецептора в коре мозга. Выявлено влияние генотипа (Fi,24=4.2, р=0.05), Т4 (F|24=18.4, рО.001) и взаимодействие генотип х Т4 (Fі.24= 14.2, р<0.001) на уровень мРНК рецепторов. Хроническое введение Т4 значительно увеличило экспрессию мРНК 5-НТ2А рецептора во фронтальной коре (58.7 + 4.0 у получавших Т4 по сравнению с 31.9 + 3.6 у контроля, р<0.001) у мышей AKR, но гормон не влиял этот показатель (37.6 ± 2.3 у получавших Т4 и 39.3 ± 2.3 у контроля, р>0.05) у животных линии ASC. 11 AKR (3-актин —•——.- ASC ?^-m&<:m»wm 5-HT 2 A ~ Контроль Т4 Контроль Т4 Рис.3. Функциональная активность и уровень мРНК 5-НТ2А рецепторов во фронтальной коре мозга мышей AKR и ASC, получавших воду (белые столбики) и Т4 (штрихованные столбики). А - число вызванных введением DO/ (I мг/кг, в/бр), встряхиваний головой; Б - уровень мРНК S-HT^A рецепторов, рассчитанный на 100 копий мРНК {3-актина. *р<0.05; ***р<0.001 по сравнению с соответствующим контролем. Установлено достоверное влияние генотипа (Fi 38=38.7, рО.001) и взаимодействия генотип х Т4 (Fpg-5.7, р<0.05) на величину гипотермического эффекта. Агонист 5-НТ,А рецепторов 8-OH-DPAT вызывал гипотермию у контрольных мышей ASC (-3.5 ± 0.4°С), но не у 12 AKR (-0.4 ± 0.4°C). Хроническое введение Т4 не изменило реакцию на 8OH-DPAT у мышей AKR (до -0.5 ± 0.2, р>0.05), но значительно ослабило гипотермический эффект у ASC (до -2.0 ± 0.3°С, р<0.01). Во фронтальной коре мозга показан эффект Т4 уровень мРНК 5-НТ(А рецепторов (F]?22=6, p<0.05). В среднем мозге и гиппокампе не выявлено эффекта Т4 (F,j2g=0.04, p>0.05 для среднего мозга; Fli25=0.4, p>0.05 для гиппокампа) и взаимодействия генотип х Т4 для всех трех исследованных структур (Fi,28=0.0017, p>0.05 для среднего мозга; Fi25=2.4, p>0.05 для гиппокампа; FI22=0.05, р>0.05 для передней коры мозга) на уровень мРНК 5-НТ|А рецепторов, но показан эффект генотипа: Fi>28=15.6, p<0.001 для среднего мозга; Fl23=17, р<0.001 для гиппокампа; Fli22=15.6, p<0.001 для передней коры мозга. Изучение влияния терминального фрагмента хромосомы 13 на чувствительность к гипертиреоидизму у мышей линий AKR и AKR.CBA-D13Mit76. Хроническое введение Т4 значительно повышало уровень гормона в крови мышей AKR (с 71.8 ±3.4 до 495.7 ±81.3 нМ) и AKR.CBA-D13Mit76 (с 61.5 ± 3.8 до 588.4 ± 36.4 нМ) (F,,36 = П8.6, р<0.001). Следовательно, в момент измерения поведения и экспрессии генов рецепторов животные обеих линий были гипертиреоидные. Хроническое введение Т4 вызвало значительное увеличение пройденного пути у мышей линии AKR (756 ± 51,6 см у контрольных и 1160 ± 61,8 см у получавших Т4, рО.001), но не у животных линии AKR.CBA-D13Mit76 (р>0.05). Хроническое введение Т4 не повлияло на время нахождения в темном отсеке (F,42=0.2, р>0.05). В тесте принудительного плавания не было выявлено влияния генотипа (Fj 42=0.08, р>0.05), Т4 (F142=l-3, р>0.05) и взаимодействия генотип х Т4 (Fi,42=2.3, p>0.05) на время неподвижности. Не показано достоверного влияния генотипа на общее число (F| 42 = 3.8, р>0.05) и суммарное время (Fi 42 = l-7, р>0.05) социальных контактов. Т4 снижал число (33.7 ± 3.2 против 21.5 ± 3 у экспериментальной группы, р<0.05), но не продолжительность социальных контактов у мышей AKR.CBA-D13Mit76, но не у животных линии AKR. Хроническое введение Т4 достоверно увеличило процент агрессивных животных у мышей линии AKR (2 из 14 у контроля против 8 из 11 у экспериментальной группы; %2 ~ 8.7, р<0.01), но не изменил эту форму поведения у AKR.CBA-D13Mit76 (13 из 14 у контроля против 7 из 8 у экспериментальной группы; %2 = 0.18, р>0.05; Рис.4). 13 100 90 80 70 60 50 H 40 30 20 10 О ** AKR AKR.CBA-D13Mit76 Рис.4. Процент агрессивных животных у мышей AKR и AKR.CBAD13Mit76, получавших воду (белые столбики) и Т4 (штрихованные столбики). **р<0,01 по сравнению с соответствующим контролем. 14 Показано влияние взаимодействия факторов генотип х Т4 на уровень мРНК 5-НТ2А рецепторов (Fi26=92, рО.ОІ). Хроническое действие Т4 увеличило уровень мРНК 5-НТ2А рецепторов у мышей линии AKR (56.8 + 10.6 у контрольных против 136 ± 27.4 у экспериментальной группы, р<0.05), но не оказало влияния на этот параметр у линии AKR.CBAD13Mit76 (111.2 ± 16.4 у контрольных против 84.4 ± 13.3 у экспериментальной группы, р>0.05; Рис.5). 180 і : 160 X 140 5 120 л 100 х 80 Q. ш 60 • о а 40 > 20 0 AKR AKR.CBA-D13Mit76 Рис.5. Уровень мРНК 5-НТ2д рецепторов, рассчитанный на 100 копий мРНК РНК-полимеразы-2, во фронтачьной коре мозга мышей AKR и AKR.CBA-D13Mit76, получавших воду (белые столбики) и Т4 (штрихованные столбики). * р<0.05 по сравнению с соответствующим контролем. В среднем мозге выявлено влияние генотипа (F, 28=16.8, рО.001) и Т4 (Fi,28=5.5, р<0.05), но не взаимодействия генотип х Т4 (Fi28=0.3, p>0.05) на уровень мРНК 5-НТ1А рецепторов. В гиппокампе показано влияние генотипа (Fi_28=5.8, р<0.05), но не выявлено эффектов Т4 (Fj 28=0.7, р>0.05) и взаимодействия генотип х Т4 (F12s=3.1, p>0.05) на исследуемый параметр. Во фронтальной коре мозга не обнаружено воздействия генотипа (F1>26=1.4, р>0.05), Т4 (F|>26=2.6, p>0.05) и взаимодействия генотип х Т4 (Fl26=1.6, p>0.05) на уровень мРНК 5-НТ|А рецепторов. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ В экспериментах были использованы две разные модели хронического введения Т4: первая модель создана для исследования отсроченных эффектов гормона (сохраняющихся после прекращения введения и возвращении уровня Т4 в крови к норме), вторая модель направлена на 15 изучение эффектов хронического гипертиреоидизма. Животные линии AKR были изучены в обеих экспериментальных сериях. Сравнение изменений в поведении и в серотониновой системе мозга у мышей этой линии в двух сериях экспериментов позволяет выделить отсроченные эффекты и учесть возможное влияние резкого прекращения введения экзогенного гормона. Двигательная активность мышей AKR в тесте открытого поля в первой экспериментальной серии оказалась примерно в два раза больше, чем во второй. Наиболее вероятной причиной такой разницы в двигательной активности между двумя экспериментальным сериями является различие в площади арен, которые использовались в тестах. Арена в первой серии в пять раз больше по площади, чем во второй, следовательно, животным надо было пройти большее расстояние, чтобы исследовать её. Несмотря на это, закономерности изменения поведения в обеих сериях одинаковы: двигательная активность значительно выше у мышей линии AKR, хронически получавших Т4, по сравнению с животными контрольной группы. Поскольку в первой серии вызванное хроническим введением Т4 увеличение двигательной активности в тесте «открытое поле» наблюдается после прекращения воздействия и нормализации уровня гормона в крови, можно сделать важный вывод о том, что наблюдаемое увеличение двигательной активности скорее всего опосредовано изменениями в центральной нервной системе, которые сохраняются долгое время после прекращения введения Т4. Ранее было показано, что недостаток ТГ, вызванный тиреоидэктомией (Barykina et al, 2002) или блокадой синтеза ТГ (Куликов и др., 2004; Tikhonova et al., 2005) вызывает развитие каталепсии у крыс линии Wistar. Крысы линии ГК, селекционированные на высокую предрасположенность к каталепсии, являются гипотиреоидными (Barykina et al., 2002). В данном эксперименте мы обнаружили животных - каталептиков среди мышей AKR получавших Т4 в течение 60 дней. Поскольку мыши линии AKR в норме никогда не проявляют каталепсии (Kulikov et al., 1993; Kulikov et al., 2008), можно заключить, что у мышей линии AKR механизм участия ТГ в регуляции каталепсии отличается от такового у крыс. Ранее было показано, что наследственная каталепсия у крыс (Kulikov et al., 2006) и мышей (Kulikov, Popova, 2008) сопровождается снижением двигательной активности в тесте «открытое поле». Вызванная хроническим введением Т4 каталепсия у мышей линии AKR, в отличие от наследственной каталепсии у мышей СВА и ASC (Базовкина и др., 2005), сопровождается резким увеличением двигательной активности. Хронический гипертиреоидизм значительно усилил долю самцов AKR, проявляющих агрессию на ювенильного самца. Известно, что взрослые самцы редко проявляют агрессию на ювенильного самца. В нашем 16 эксперименте только 14% контрольных самцов нападали на ювенильного самца. Поэтому можно предположить, что такое резкое (до 72%) увеличение процента агрессивных животных среди гипертиреоидных самцов AKR свидетельствует о патологическом характере этой агрессии. Это увеличение не является следствием увеличения общей двигательной активности у гипертиреоидных животных, поскольку не выявлено влияния гипертиреоидизма на общее число и продолжительность социальных контактов (включая и агрессивные). Ранее было показаны антагонистические отношения между выраженностью агрессии и каталепсии у мышей (Kulikov et al., 1995; Кондаурова и др., 2007). У самцов AKR, получавших Т4, возникает парадоксальное увеличение двигательной активности, каталепсии и агрессии на ювенильного самца, что можно рассматривать, как свидетельство о патологическом характере вызванных хроническим введением гормона изменений поведения у животных данной линии. Возможным молекулярным механизмом опосредующим эффекты Т4 на поведение являются изменения в серотониновой системе мозга (Bauer et. al., 2002; Popova, Kulikov, 2007). Ранее было показано, что недостаток Т4 вызывает снижение плотности (Kulikov et al., 1999; Куликов, Жонингро, 2000) и уровня мРНК (Куликов и др., 2002) 5-НТ2д рецепторов в коре головного мозга крыс. У крыс линии ГК с врожденной предрасположенностью к каталепсии и врожденным гипотиреоидизмом (Barykina et al., 2002) показано снижение плотности этих рецепторов в стриатуме (Kulikov et al., 1995; Popova, Kulikov, 1995). Хотя в двух экспериментах в качестве внутреннего стандарта использовались разные гены (бета-актин и РНК полимераза 2), было выявлено увеличение уровня мРНК 5-НТ2А рецептора в коре мозга у животных линии AKR, получавших Т4, по сравнению с контрольными мышами. Важно отметить, что это увеличение наблюдалось у нормотиреоидных самцов AKR через 13 дней после прекращения введения гормона. Кроме того, это увеличение сопровождалось активацией 5-НТ2А рецепторов у мышей AKR в первой экспериментальной серии. Такой эффект хронического введения Т4 на мышей AKR показан впервые. Этот результат согласуется с увеличением плотности центров связывания [3Н] кетансерина (Mason et al., 1987) и индуцированных DOI встряхиваний головой (Tikhonova et al., 2005) у получавших Т4 крыс и со снижением плотности (Kulikov et al., 1999) и уровня мРНК 5-НТ2А рецепторов (Куликов и др., 2002а) у тиреоидэктомированных крыс. Взятые вместе, эти данные свидетельствуют об участии тиреоидных гормонов в тонической регуляции 5-НТ2А рецепторов коры мозга мышей и крыс: их дефицит подавляет, а избыток активирует рецепторы. 17 Совместное увеличения уровня мРНК в коре мозга и функциональной активности 5-НТ2А рецепторов с увеличением двигательной активности в тесте «открытое поле» можно рассматривать как доказательства причинноследственной связи между этими показателями. Связь между тиреоидными гормонами, 5-НТ2А рецептором и каталепсией еще не ясна. Хотя показана ассоциация наследственной каталепсии у мышей и крыс со сниженной плотностью 5-НТ2А рецепторов в стриатуме (Kulikov et al., 1995а; Popova, Kulikov, 1995), в данной работе была показана связь каталепсии, вызванной введением Т4, с увеличением активности и мРНК 5-НТ2А рецепторов в мозге у самцов AKR. Второй и основной задачей исследования было выяснение связи эффектов Т4 на поведение и серотониновые рецепторы мозга с наследственной предрасположенностью мышей к каталепсии. В первом эксперименте были сравнены эффекты хронического введения Т4 на поведение и серотониновые рецепторы мышей линий AKR и ASC. Линия ASC отличается от AKR высокой предрасположенностью к каталепсии и выраженностью депрессивно-подобных черт (Базовкина и др., 2005). В отличие от животных линии AKR, хроническое введение Т4 мышам линии ASC не изменило их двигательную активность в тесте «открытое поле». В то же время, хроническое введение Т4 оказало антикаталептический эффект на мышей ASC аналогично таковому у линии ГК (Kulikov et al., 2002). Более того, хроническое введение Т4 достоверно понижало время неподвижности в тесте принудительного плавания у мышей ASC, то есть оказывало антидепрессантный эффект. Это хорошо согласуется с антидепрессантный эффектом гормона у тиреоидэктомированных крыс Wistar (Kulikov et al., 1997). Важно отметить, что антикаталептический и антидепрессантный эффекты Т4 наблюдались даже на фоне некоторого понижения уровня гормона в крови мышей ASC. Ранее было показано, что высокая предрасположенность к каталепсии (Barykina et al., 2002) и повышенной неподвижности в тесте принудительного плавания (Kulikov et al., 1997) ассоциированы с гипотиреоидизмом. Поэтому маловероятно, что наблюдаемые у мышей ASC антикаталептический и антидепрессантный эффекты Т4 обусловлены снижением уровня гормона. Скорее всего, они обусловлены долговременными изменениями в мозге, вызванными хроническим действием Т4. Хроническое введение Т4 снижало активность 5-НТід рецепторов у мышей ASC. Можно предположить, что хроническое введение Т4 осуществляет антикаталептический и антидепрессантаный эффект через модификацию 5-НТ|А рецепторов. Это предположение согласуется с общепринятыми гипотезами о ключевой роли десенситизации 5-HT)A рецепторов в эффектах антидепрессантов (Blier, de Montigny, 1994; 18 Pineyro, Blier, 1999) и в регуляции каталепсии (Broekkamp et al., 1988; Invernizzi et al., 1988; Wadenberg, 1996; Wadenberg et al., 1994). Следующей задачей исследования было выяснение участия главного гена каталепсии в механизме регуляции поведения и серотониноых рецепторов тиреоидными гормонами. Для этого было проведено сравнение эффектов гипертиреоидизма на поведение и серотониновые рецепторы у мышей AKR и конгенной линии AKR.CBA-D13Mit76, которые различаются фрагментом хромосомы 13, содержащим главный ген каталепсии (Kulikov et al., 2008). В настоящем исследовании было установлено, что наличие данного фрагмента хромосомы подавляет активирующий эффект хронического введения Т4 на двигательную активность в открытом поле и на 5-НТ2А рецепторы. Логично предположить, что устойчивость к Т4 у мышей линии AKR.CBA-D13Mit76 обусловлена находящимися в этом участке генами. Одним из геновкандидатов является ген, кодирующий белок gpl30. Этот белок является субъединицей рецепторов некоторых цитокинов, участвующих в механизмах клеточной дифференцировки, иммунитета и эндокринной регуляции (Chesnokova, Melmed, 2002). Полученный результат позволят предполагать участие цитокиновой системы в молекулярном механизме хронического эффекта Т4 на серотониновые рецепторы и поведение мышей. Таким образом, результаты данного исследования могут частично объяснить и предположить существование биологических предикторов вариации в чувствительности к ТГ, которая наблюдается в клинике. Хроническое введение Т4 оказывает антикаталептический и антидепрессантный эффект на крыс линии ГК и мышей ASC. Напротив, у линий устойчивых к каталепсии: крыс Wistar и мышей AKR гормон не эффективен или вызывает каталептогенный эффект. Таким образом, генетическая предрасположенность к каталепсии является биологическим предиктором антикаталептического и антидепрессантного эффектов ТГ у мышей и крыс. Результаты данного исследования проводят связь между экспериментальными и клиническими наблюдениями: можно предположить, что Т4 будет улучшать состояние депрессивных больных, но вызовет противоположный эффекту относительно здоровых пациентов. Тиреоидные гормоны широко используются для коррекции дисфункций щитовидной железы. Результаты данной работы предостерегают о возможных нарушениях поведения и функции нервной системы у особо чувствительных к ТГ пациентов. 19 выводы 1. Хроническое введение Т4 увеличивает двигательную активность, агрессию на ювенильного самца и предрасполагает к каталепсии у самцов мышей линии AKR. 2. Длительное введение Т4 самцам AKR вызывает увеличение уровня мРНК в коре головного мозга и функциональной активности 5-НТ2А рецепторов. В то же время, гормон не изменяет ни уровня мРНК в структурах мозга, ни функциональной активности 5-НТ(А рецепторов. 3. У самцов мышей линии ASC хроническое введение Т4 снижает выраженность каталепсии, время неподвижности в тесте принудительного плавания, а также снижает функциональную активность 5-НТ1А рецепторов. В то же время, гормон не влияет на уровень мРНК 5-НТ|А и 5-НТ2А рецепторов в мозге. 4. Перенос терминального фрагмента хромосомы 13 от мышей линии СВА в геном мышей AKR подавляет вызванное Т4 увеличение двигательной активности и уровня мРНК 5-НТ2А рецепторов у конгенной линии мышей AKR.CBA-D13MU76. 5. Хроническое введение Т4 не влияет на индексы тревожного поведения в тестах «открытое поле» и «свет/темнота» у мышей AKR, ASC и AKR.CBA-D13Mit76. СПИСОК РАБОТ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ: 1. Зубков Е.А., Куликов А.В. Влияние тироксина на поведение мышей с наследственными различиями в предрасположенности к каталепсии // Бюлл. Экспер. Биол. Мед., 2009. т.147. №2. С. 177-180. 2. Зубков Е.А., Куликов А.В., Науменко B.C., Попова Н.К. Хроническое действие тироксина на поведение и серотониновые рецепторы у контрастных по предрасположенности к каталепсии линий мышей // Журн. Высш. Нервн. Деят., 2008. т.58. №4. С. 483-490. 3. Kulikov A.V., Zubkov E.A. Chronic thyroxine treatment activates the 5HT2A serotonin receptor in the mouse brain // Neurosci. Lett., 2007. V.416. P. 307-309. 4. Зубков Е.А. Влияние хронического введения тироксина на поведение и 5-НТіА и 5-НТ2А рецепторы у мышей, различающихся по предрасположенности к каталепсии // Материалы XLIII международной научной студенческой конференции "Студент и научно-технический прогресс", Новосибирск, 2005. ч. «Биология». С. 55-56. 5. Зубков Е.А. Влияние хронического введения тироксина на поведением 5-НТ2А рецепторы у мышей, различающихся по предрасположенности к каталепсии // Материалы XLIV международной научной 20 студенческой конференции "Студент и научно-технический прогресс", Новосибирск, 2006. ч. «Биология». С. 87-88. Тихонова М.А., Зубков Е.А., Куликов А.В. Чувствительность к антидепрессантам в норме и патологии: зависимость от генотипа // Материалы III Съезда фармакологов России «Фармакология практическому здравоохранению», Психофармакология и биологическая наркология, 2007. т.7, спецвыпуск, ч.2, С. 1979. Подписано в печать 5 ноября 2009г. Формат 60x84 1/16. Заказ №387 Офсетная печать. Объем 21 п.л. Тираж 100 экз. Редакционно-издательский центр НГУ. 630090, г. Новосибирск, ул. Пирогова, 2.