АНАТОМИЯ РАСТЕНИЙ

Министерство образования и науки Российской Федерации
Сыктывкарский лесной институт (филиал) федерального государственного бюджетного
образовательного учреждения высшего профессионального образования
«Санкт-Петербургский государственный лесотехнический университет
имени С. М. Кирова»
Кафедра воспроизводства лесных ресурсов
АНАТОМИЯ РАСТЕНИЙ
Учебно-методический комплекс по дисциплине
для студентов направления бакалавриата 250100.62 «Лесное дело»
всех форм обучения
Самостоятельное учебное электронное издание
СЫКТЫВКАР 2012
УДК 58:633/635
ББК 28.5
А64
Рекомендован к изданию в электронном виде кафедрой воспроизводства лесных ресурсов
Сыктывкарского лесного института.
Утвержден к изданию в электронном виде советом сельскохозяйственного факультета
Сыктывкарского лесного института.
Составитель:
кандидат биологических наук, доцент Е. И. Паршина
Отв. редактор:
доктор биологических наук, профессор Е. В. Юркина
Анатомия растений [Электронный ресурс] : учеб.-метод. комплекс
А64 по дисциплине для студ. напр. бакалавриата 250100.62 «Лесное дело»
всех форм обучения : самост. учеб. электрон. изд. / Сыкт. лесн. ин-т ;
сост.: Е. И. Паршина. – Электрон. дан. – Сыктывкар : СЛИ, 2012. –
Режим доступа: http://lib.sfi.komi.com. – Загл. с экрана.
В издании помещены материалы для освоения дисциплины
«Анатомия растений». Приведены рабочая программа курса, сборник
описаний лабораторных работ, методические указания по различным
видам работ.
УДК 58:633/635
ББК 28.5
_____________________________________________________________________________________________
Самостоятельное учебное электронное издание
Составитель: Паршина Елена Ивановна
АНАТОМИЯ РАСТЕНИЙ
Электронный формат – pdf. Объем 2,1 уч.-изд. л.
Сыктывкарский лесной институт (филиал) федерального государственного бюджетного
образовательного учреждения высшего профессионального образования
«Санкт-Петербургский государственный лесотехнический университет
имени С. М. Кирова» (СЛИ),
167982, г. Сыктывкар, ул. Ленина, 39, [email protected], www.sli.komi.com
Редакционно-издательский отдел СЛИ.
© СЛИ, 2012
© Паршина Е. И., составление, 2012
2
ОГЛАВЛЕНИЕ
ПРЕДИСЛОВИЕ
1. РАБОЧАЯ ПРОГРАММА ДИСЦИПЛИНЫ
2. СБОРНИК ОПИСАНИЙ ЛАБОРАТОРНЫХ РАБОТ
3. МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ ПО САМОСТОЯТЕЛЬНОМУ ИЗУЧЕНИЮ
ДИСЦИПЛИНЫ
4. МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ ПО ТЕКУЩЕМУ И ПРОМЕЖУТОЧНОМУ
КОНТРОЛЮ
5. УЧЕБНО-МЕТОДИЧЕСКОЕ И ИНФОРМАЦИОННОЕ ОБЕСПЕЧЕНИЕ
ДИСЦИПЛИНЫ
6. БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЙ СПИСОК
3
4
5
8
19
19
24
29
ПРЕДИСЛОВИЕ
Анатомия растений - раздел ботаники, изучающий внутреннее строение растений, ее
возникновение связано с изобретением и усовершенствованием микроскопа. В 1665 английский
физик Р. Гук, рассматривая тонкие срезы бутылочной пробки, сердцевины бузины и древесины
различных растений, обнаружил их клеточное строение. Однако основоположниками А. р.
считаются итальянский биолог М. Мальпиги и английский ботаник Н. Грю, опубликовавшие
первый в 1675—79 и второй — в 1682 труды по анатомии растений, в которых излагались
результаты
планомерного
микроскопического
изучения
растительных
объектов.
Анатомические знания и исследования имеют важнейшее значение для решения многих
вопросов систематики, морфологии, исторической географии, экологии растений, используются
при решении многих задач агрономии, лесного хозяйства (например, исследуя строение камбия
и примыкающего к нему слоя древесины можно определить сроки рубки леса и др.)
Учебно-методический комплекс по дисциплине (УМКД) является совокупностью учебнометодических материалов, способствующих эффективному освоению студентами учебной
дисциплины «Анатомия растений» и решает следующие задачи:
1. Повышение качества подготовки студентов путем системно-методического
обеспечения учебного процесса.
2. Определение места и роли учебной дисциплины в образовательной программе, ее
основных учебных целей и задач.
3. Рациональное распределение учебного времени по разделам курса, видам учебных
занятий, в т.ч. планирование и организация самостоятельной работы студентов с учетом
рационального использования и распределения учебного времени и нагрузки.
4. Определение круга учебно-методического обеспечения дисциплины, необходимого
для ее освоения.
5. Разработка оптимальной системы текущего и промежуточного контроля знаний
студентов.
Структура УМКД включает следующие разделы:
9
Рабочая программа дисциплины.
9
Сборник описаний лабораторных работ.
9
Методические указания по самостоятельному изучению дисциплины.
9
Методические указания по текущему контролю.
9
Учебно-методическое и информационное обеспечение дисциплины.
9
Библиографический список.
В издании использованы методические материалы: Ботаника. Самостоятельная работа
[Текст] : метод. указ. для подготовки дипломированного специалиста по направлению 656200
"Лесное хозяйство и ландшафтное строительство" спец. 250201 "Лесное хозяйство" /
Федеральное агентство по образованию, Сыкт. лесн. ин-т - фил. ГОУ ВПО "С.-Петерб. гос.
лесотехн. акад. им. С. М. Кирова", Каф. воспроизводства лесн. ресурсов ; сост. Г. С.
Шушпанникова. - Сыктывкар : СЛИ, 2007. - 52 с.; Ботаника [Текст] : сб. описаний лаб. работ
для подготовки дипломированного спец. по направлению 656200 "Лесное хозяйство и
ландшафтное строительство" спец. 260400 "Лесное хозяйство" / Федеральное агентство по
образованию, Сыкт. лесн. ин-т - фил. ГОУ ВПО "С.-Петерб. гос. лесотехн. акад. им. С. М.
Кирова", Каф. воспроизводства лесн. ресурсов ; сост. Г. С. Шушпанникова. - Сыктывкар : СЛИ,
2007. - 44 с.
4
1. РАБОЧАЯ ПРОГРАММА ДИСЦИПЛИНЫ
Цели и задачи дисциплины, её место в учебном процессе
1.1 . Цель преподавания дисциплины
Цель этого курса состоит в изучении анатомического строения растений: клетки, тканей и
органов.
Программа призвана способствовать формированию представлений о растениях,
составляющих большую часть биосферы и играющих решающую роль в создании на Земле
органических веществ, а также являющихся источником питания для всего животного мира и
ценнейшим материалом для хозяйственной деятельности человека.
Задачи изучения дисциплины. Требование к уровню
освоения содержания дисциплины
Задачи курса заключаются в том, чтобы дать представление об анатомическом строении
высших растений. В процессе обучения студенты знакомятся с клеткой и ее органеллами;
растительными тканями и их функциями; анатомическим строением органов растений (стебель,
лист, корень); анатомическими признаками растений различного таксономического положения
(голосеменные, покрытосеменные, двудольные, однодольные).
После завершения курса студент должен:
1. Иметь представление о строении, жизни и развитии основных групп растений.
2. Знать главнейшие понятия (прокариоты и эукариоты, органеллы клетки, растительные
ткани, побег, корень и др.).
3. Знать основные закономерности и законы, касающиеся строения, жизни и развития
растительного организма.
4. Уметь выявлять причинные связи между разными явлениями в жизни растений, между
их внутренним и внешним строением, формой и функцией тех или иных структур.
5. Овладеть методами работы с микроскопом, приготовления временных
микропрепаратов.
6. Уметь обосновывать выводы, оперировать понятиями при объяснении явлений
природы с приведением примеров из практики лесного и сельского хозяйства, промышленного
производства, здравоохранения и т. д. Этому умению придается особое значение, так как оно
свидетельствует об осмысленности знаний, о глубине понимания изученного материала.
Перечень дисциплин и разделов (тем), усвоение которых студентам необходимо для
изучения данной дисциплины
Курс анатомии растений является начальным для дальнейшего изучения других
биологических и специальных дисциплин, необходимых для успешной подготовки
специалистов лесного хозяйства. В этом курсе преподаются те основы ботаники, без знания
которых не может сформироваться бакалавра лесного дела. Все последующие
общебиологические (физиология, микробиология и др.) и специальные (дендрология,
фитопатология, таксация и др.) дисциплины предполагают необходимость знания ботаники.
Успешное освоение данной дисциплины зависит от полученных знаний в средних и
специальных учебных заведениях по разделам «Растения» (6-7 классы) и «Общая биология»
(тема «Клетка») (11 класс).
Нормы Госстандарта
ЕН.Ф.06.02 Анатомия растений - 85 часов. Методы микроскопического исследования.
Клетка, строение органелл в связи с их функциями. Растительные ткани: классификация,
строение в связи с функциями. Древесина: анатомические признаки голосеменных и
покрытосеменных. Гистологическая структура органов растений в связи с их функциями.
Анатомические признаки растений различного таксономического положения.
5
Содержание дисциплины
Распределение часов по темам и видам занятий (очная форма обучения)
Объем работы студентов, час
Наименование темы
лабораторные
работы
Очная форма обучения
4
4
6
6
8
8
лекции
1. Растительная клетка
2. Ткани
3. Строение вегетативных органов
Контрольная работа
Проведение промежуточного
контроля
Подготовка к зачету
Всего
СРС
всего
Форма
контроля
успеваемости
3
3
3
20
11
13
19
20
ОЛР, ФО
ОЛР, ФО
ОЛР
КР
Т
Зачет
–
–
–
–
2
18
2
18
18
18
49
85
Примечание. Текущая успеваемость студентов контролируется опросом по
лабораторным работам (ОЛР), фронтальным опросом текущего материала (ФО), проверкой
выполнения индивидуальных контрольных работ (КР), тестированием (Т). Итоговая
успеваемость студентов определяется на зачете.
Наименование тем, их содержание, объем в часах
лекционных занятий
Тема 1. Растительная клетка.
Методы микроскопического исследования. Клетка, строение органелл в связи с их
функциями. Типы клеток, их структура и функции. Строение растительной клетки, черты
сходства и отличия от клетки животных. Клетка эукариотов и прокариотов. Органоиды клетки,
их строение, выполняемые функции: ядро, митохондрии, пластиды (хлоропласты, лейкопласты,
хромопласты), эндоплазматическая сеть, диктиосомы, рибосомы, вакуоль. Строение и
образование клеточной оболочки. Мембрана. Химический состав клетки. Митоз.
Мейоз..………………………….......................................………………….....4 ч.
Тема 2. Ткани.
Типы растительных тканей. Принципы их классификации: образовательные (меристемы),
покровные, проводящие (ксилема или древесина: анатомические признаки голосеменных и
покрытосеменных; флоэма или луб), механические
(колленхима и склеренхима),
ассимилирующие и запасающие, ткани поглощения веществ, секреторные (выделительные),
система проветривания растений. Строение тканей в связи с их функциями.
…….…....................................................................................................6 ч.
Тема 3. Строение вегетативных органов.
Гистологическая структура органов растений в связи с их функциями (побег и корень).
Конус нарастания побега. Понятие об инициальных клетках. Понятия о гистогенах, тунике и
корпусе. Цитологические зоны конуса нарастания.
Развитие анатомической структуры стебля, анатомические признаки растений различного
таксономического положения. Дифференциация эпидермиса и топографических зон: первичной
коры и центрального цилиндра (стелы). Прокамбий, его строение и особенности заложения.
Развитие проводящей системы. Принципы классификации стел. Анатомическое строение
однолетних и многолетних стеблей травенистых и древесных растений. Древесина и луб:
анатомические признаки голосеменных и покрытосеменных.
Анатомия листа. Анатомические признаки листьев растений разных экологических
условий (гидрофиты, гигрофиты, мезофиты, ксерофиты, суккуленты).
6
Анатомическое строение корня. Меристема корня. Зоны роста, поглощения и
дифференциации.
Первичное
и
вторичное
строение
корня................................................................................................................... …8 ч.
Всего: 18 часов
Лабораторные занятия, их наименование,
краткое содержание и объем в часах
Тема 1. Растительная клетка.
ЛР – 1. Растительная клетка. Строение растительной клетки. Мейоз: фазы мейоза и
биологическое значение ………………………………….....….………………………….4 ч.
Тема 8. Ткани.
ЛР – 2. Ткани. Образовательные ткани (меристемы). Покровные ткани (эпидермис, пробка
и перидерма). Механические ткани (колленхима и склеренхима). Проводящие ткани – ксилема
(древесина) и флоэма (луб). Проводящие элементы ксилемы: трахеиды и трахеи (сосуды).
Строение и расположение окаймленных пор. Проводящие элементы флоэмы: ситовидные
клетки и ситовидные трубки. Типы строения проводящих пучков……….6 ч.
Тема 2. Строение вегетативных органов.
ЛР – 3. Органы. Анатомическое строение многолетних стеблей травянистых двудольных
и однодольных растений. Строение стебля древесных голосеменных и покрытосеменных
растений. Лист. Анатомическое строение листа. Анатомическое строение корня. Меристема
корня. Зоны роста, поглощения и дифференциации. …………………………………....8 ч.
Всего: 18 часов.
Самостоятельная работа и контроль успеваемости
Подготовка к лабораторным занятиям требует проработки лекционного материала по
конспекту и учебной литературе. Контроль за усвоением студентами самостоятельно пройденного
материала, проводится на лабораторных занятиях, а также на лекциях в форме небольших
проверочных работ или в форме тестирования. Текущая успеваемость студентов контролируется
фронтальными опросами, тестированиями, опросами по результатам лабораторных работ. В
середине семестра проводится промежуточная аттестация в форме контрольной работы и в форме
тестов. Методические указания по данному курсу содержат вопросы контрольной работы.
Итоговая успеваемость студентов определяется во 2-м семестре – зачетом.
Распределение часов по видам самостоятельных работ
а) для очной (заочной) формы обучения
Число часов
Вид контроля
успеваемости
1. Проработка лекционного материала по конспекту и
учебной литературе
6 (20)
ФО
2. Подготовка к лабораторным занятиям
4 (2)
ФО, ОЛР
20 (15)
КР
1
Т
18 (18)
зачет
Вид самостоятельных работ
3. Контрольная работа
4. Проведение промежуточного контроля
5. Подготовка к зачету
Всего
49 (55)
Примечание. Текущая успеваемость студентов контролируется опросом по лабораторным
работам (ОЛР), фронтальным опросом текущего материала (ФО), проверкой выполнения
индивидуальных контрольных работ (КР), тестированием (Т). Итоговая успеваемость
студентов определяется на зачете.
7
2. СБОРНИК ОПИСАНИЙ ЛАБОРАТОРНЫХ РАБОТ
Лабораторные работы по анатомии растений являются необходимым, очень важным
дополнением к теоретическому курсу дисциплины. Основная их задача – углубление и
закрепление знаний, полученных на лекциях, выработка навыков самостоятельной
исследовательской работы. В процессе выполнения лабораторных работ студенты знакомятся с
особенностями анатомического и морфологического строения организмов, изучают
разнообразие растений различных систематических групп. Перед началом занятий студенты
проходят инструктаж по технике безопасности.
Правила техники безопасности при проведении лабораторных работ
При проведении лабораторных работ возможны следующие виды негативного воздействие
опасных и вредных факторов на человека:
- химические ожоги при попадании на кожу или слизистые кислот, щелочей и др. едких
жидкостей;
- термические ожоги (при пользовании спиртовками);
- порезы рук при нарушении требований по работе с лабораторным оборудовании или
случайных разбитий лабораторной посуды;
- отравление ядовитыми растениями.
При выполнении лабораторных работ необходимо:
1.
Пройти инструктаж по технике безопасности.
2.
Соблюдать требования инструкции по проведению лабораторно-практических
работ.
3.
Соблюдать правила и требования работы с микроскопом и правила изготовления
микропрепаратов.
4.
На рабочем столе должны присутствовать только предметы, имеющие отношение к
лабораторной работе.
5.
Не разрешается присутствие посторонних лиц при проведении лабораторных
работ.
6.
Запрещается находиться лаборатории в верхней одежде (и с верхней одеждой).
7.
В лаборатории запрещается принимать пищу и пить.
8.
Не проводить самостоятельно опытов, не предусмотренных заданиями работы.
9.
При работе с лабораторной посудой, приборами из стекла соблюдать
осторожность, не нажимать сильно пальцами на покровные стекла и хрупкие стенки пробирок,
колб. Брать предметные и покровные стекла за края легко во избежание порезов пальцев.
10.
В случае, если разбилась лабораторная посуда или приборы из стекла, не собирать
их осколки незащищенными руками, а использовать для этой цели щетку и совок.
11.
Не направляйте скальпель, препаровальную иглу, лезвие безопасной бритвы на
себя или других студентов.
12.
При работе с реактивами использовать специальные приборы (ложечки, шпатели и
др.).
13.
Во избежание отравлений и др. последствий не нюхать объекты, не пробовать
растения и их органы на вкус.
14.
По окончании лабораторной работы тщательно вымыть руки с мылом.
15.
В случае возникновения аварийных ситуаций (пожар, появление сильных
посторонних запахов) по указанию преподавателя (зав. лабораторией), быстро, без паники,
покинуть помещение.
Оформление результатов наблюдений
Результаты лабораторных работ заносятся в рабочую тетрадь. При оформлении
лабораторного занятия указывается: дата, название темы и цель работы.
8
Одним из эффективных методов познания является биологический рисунок, он
способствует лучшему усвоению материала, развивает внимание и наблюдательность. Кроме
того, рисунок - это способ изучения и фиксации новых научных данных. При освоении курса
студент должен научиться изображать в виде рисунка или схемы любой анатомический
препарат, морфологическое строение органов (их частей), любой сложный процесс
органогенеза. Различают два основных типа научного рисунка:
- на схематическом рисунке обозначают только границы тканей, а клетки не
вырисовывают. Такие схемы дополняются детальными рисунками. Обычно на схеме
выделяется сектор, который прорисовывается более тщательно.
- детальный рисунок воспроизводит все подробности строения объекта.
Требования к оформлению рисунка
1.
Биологический рисунок – рисунок графический, выполняемый линиями и
точками. Для оформления рисунков необходимо иметь: простой остро заточенных карандаш
средней твердости (ТМ, НВ), мягкую резинку, цветные карандаши, линейку.
2.
Перед началом рисования необходимо продумать расположение рисунка на листе
бумаги. Как правило, рисунок целиком помещают в верхней или в верхней-левой части листа (в
этом случае все подписи к рисунку располагаются под ним или справа и снизу).
3. Рисунок должен правдиво отображать объект, быть предельно точным, четким,
простым и понятным. Рисуют в рабочей тетради то, что видят.
4. Размеры рисунка должны быть крупными, чтобы на нем можно было показать все
необходимые детали, при отображении объекта следует соблюдать пропорции
5. При зарисовке необходимо разумно сочетать детальный и схематический рисунки. На
схемах обычно показывают расположение и границы тканей с точным соблюдением пропорций
и масштаба.
6. Линии рисунка должны быть контурными, четкими и законченными.
7. Рисунок выполняется только простым карандашом. Использование цветных карандашей
должно нести биологический смысл. Оттушевка, как правило, не применяется.
8. Обозначения на рисунке делаются стрелкой по направлению от подписи к
изображению. Стрелки могут подходить к структурам под любым углом, но не должны
пересекаться. Название рисунка даются внизу с указанием номера.
9. Внизу под изображением дается порядковый номер и общее название рисунка, и
расшифровка цифровых индексов (рис. 1). При написании названий растений указывается и
русское и латинское название.
Рис. 1. Клетка эпидермиса сочной чешуи луковицы Allium cepa (лука репчатого):
1 - оболочка; 2 - цитоплазма; 3 – ядро; 4 - ядрышко; 5 – вакуоль
Рис. 1. Пример оформления ботанического рисунка
9
Лабораторная работа № 1
Растительная клетка. Строение растительной клетки.
Мейоз: фазы мейоза и биологическое значение
Цель работы: освоение навыков микроскопирования; изучение строения растительной
клетки и происходящих в ней процессов.
Задачи: познакомиться с устройством микроскопа; познакомиться с методикой
изготовления временного препарата, освоить навыки микроскопирования и приготовления
временных препаратов; изучение строение растительной клетки и свойств цитоплазмы;
развитие умений и навыков проведения исследований.
Материалы и оборудование: микроскопы, предметные и покровные стекла, чашка
Петри, препаровальные иглы, пипетки. пинцеты, фильтровальная бумага, салфетки, колбы с
водой, стаканчики*, р-р иода в иодиде калия, луковица Allium cepa (лука репчатого), листья
элодеи (Elodea canadensis Rich.), свежие плоды томата (Licopersicum sp.) (или шиповника (Rosa
canina L.), арбуза (Citrullus lanatus)); лист традесканции (Tradescantia sp.), клубни картофеля
(Solánum tuberósum ); готовый микропрепарат «Лубяные волокна кенефа»; 8 – 10 % раствор
поваренной соли, 30 %-й раствор сахара; 1М растворы KNO3, 0,7 М Ca(NO3)2; готовые
микропрепараты (кожицы лука, эпидермиса герани).
*Примечание: в последующих работах по микроскопированию данный перечень оборудования не
приводится. Его его необходимость на лабораторной занятии обозначена знаком «*» после раздела «Материалы
и оборудование».
Не приводится (за редким исключением) и
последовательность приготовления
микропрепаратов и работы с микроскопом.
Порядок работы с микроскопом
1. Перед работой необходимо расчехлить микроскоп и поставить его в удобное для
работы положение: микроскоп устанавливается на столе против левого плеча, примерно на 2 - 3
см от края стола, тубусодержателем к себе, перпендикулярно к краю стола, и не сдвигать до
конца занятий. Работают с микроскопом только сидя. С правой стороны должны находиться
необходимые предметы (предметные и покровные стекла, реактивы, препаровальные иглы,
тетрадь (альбом) для зарисовок).
2. Перед работой микроскоп осмотреть, вытереть от пыли мягкой салфеткой из
хлопчатобумажной ткани объективы, окуляр, зеркало. Если грязь не удаляется, тряпочку
смачивают бензином или смесью спирта с эфиром.
3. Начинают микроскопирование всегда при малых увеличениях (4х с красной полосой).
4. Направляют зеркало к источнику света и устанавливают максимальную освещенность,
контролируя ее через окуляр (если микроскоп оснащен осветителем включают его).
5. Помещают препарат на предметный столик так, чтобы оптическая ось проходила через
объект.
6. Движением макровинта, глядя сбоку на препарат, осторожно опускают объектив. Глядя
в окуляр и вращая макровинт на себя, постепенно поднимают тубусодержатель до тех пор, пока
изучаемый объект не попадет в фокус. Неясное изображение необходимо фокусировать
микровинтом.
7. При переходе к работе с большим увеличением (объективы х10, х40 и х100) объект или
интересующую часть объекта устанавливают в центр поля зрения, препарат закрепляют
клеммами, поворотом револьвера устанавливают в рабочее положение объектив с необходимым
увеличением. Винты вращают плавно (микрометрический винт можно вращать влево и вправо
только на пол оборота). Неясное изображение необходимо сфокусировать сначала макро-, а
потом микро-винтами. Резкость изображения регулируют с помощью диафрагмы.
8. По окончании работы микроскоп снова переводят на малое увеличение и только после
этого снимают препарат с предметного столика. Со штатива убирается пыль и следы жидкости.
Выключают осветитель, надевают чехол на микроскоп.
9. Микроскоп переносят двумя руками: одной берут за изгиб тубусодержателя, другой
поддерживают за основание.
10
Приготовление временных препаратов
Для приготовления временных микропрепаратов необходимо иметь: набор предметных и
покровных стекол, препаровальные иглы, пипетку, безопасную бритву, скальпель, стеклянную
палочку, фильтровальную бумагу, реактивы.
Некоторые растения (их органы, например при изучении водорослей, строения пыльцы,
спор растений) можно рассматривать под микроскопом целиком, такие препараты называют
тотальными. Но чаще приходится делать срезы изучаемых органов. Для их приготовления
используют свежие или фиксированные части растений. Различают два основных вида срезов
(рис. ЛР1.1) – поперечный (проходит перпендикулярно оси органа и позволяет изучать его в
поперечном сечении) и продольный срез: продольный радиальный срез проходит по радиусу
оси органа и дает возможность изучать его в продольном сечении; продольный тангентальный
срез проходит перпедикулярно радиусу цилиндрической структуры (корня, стебля);
парадермальный – проходит параллельно поверхности плоской структуры (например, листа).
Рис. ЛР1.1. Основные срезы (на примере ствола) ствола дерева: 1 — поперечный; 2 —
радиальный; 3 — тангентальный
При изготовлении временных препаратов необходимо:
1. предметное и покровное стекла хорошо промыть водой и насухо протиреть мягкой
тряпочкой. Взять покровное стекло. Осторожно! Чтобы не сломать и не пораниться, надо
поместить его в складку салфетки между большим и указательным пальцами правой руки и
осоторожно вытереть его круговыми движениями.
2. Взять в правую руку бритву, большим и указательным пальцем держа ее за шейку, а
остальными прижать рукоятку к ладони (руки должны быть совершенно свободны; ими нельзя
опираться на стол или прижимать их к туловищу).
3. Положить лезвие на середину подготовленной площадки (не следует делать срез, начиная
с края, так как срезы при этом получаются толстыми) и слегка прижимая к ней, плавными
скользящими движениями под косым углом вести бритву на себя. Направление движения
бритвы может быть слева направо или справа налево (нельзя вести бритву прямо на себя или
“пилить” бритвой, водя ее то в одну, то в другую сторону. Не следует также делать бритвой
коротких отрывистых движений – при этом получаются срезы неровной толщины). Срез
делается одним скользящим движением. Срезы должны быть очень мелкими (1-2 мм) и
тонкими (прозрачными). Причем за один прием разными участками лезвия делается несколько
срезов с тем, чтобы в последствие выбрать лучший. Если же делать только один срез, он может
оказаться неудачным, и всю работу придется начинать сначала.
4. При приготовлении срезов бритву и поверхность, с которой делаются срезы, с помощью
мягкой кисточки все время смачивают водой. Перенести полученные срезы в заранее
приготовленную каплю воды на предметное стекло. Для этого переложить бритву в левую руку,
в правую взять мягкую кисточку и снять срезы, при этом не касаясь лезвия, так как даже
волоски кисточки могут его затупить.
11
5.
На середину предметного стекла капнуть воды и поместить в нее исследуемый
объект.
6.
Накрыть каплю покровным стеклом так, чтобы вода вытеснила воздух и заполнила
все пространство под покровным стеклом. Для этого большим и указательным пальцами правой
руки взять покровное стекло за уголки, завести его за каплю и противоположным краем стекла,
наклоняя его под острым углом к предметному, коснуться краем капли. Затем осторожно и
постепенно опустить стекло на каплю (если опускать покровное стекло резко, в препарате
могут оказаться пузырьки воздуха, которые под микроскопом видны в виде сферических тел с
черными контурами, что затрудняет изучение объекта). Если вода не заполняет всего
пространства под покровным стеклом, то пипеткой или стеклянной палочкой сбоку покровного
стекла добавляют небольшую каплю.
7.
Если вода выступит за края покровного стекла, ее следует удалить, прикладывая
сбоку полоску фильтровальной бумаги.
8.
При необходимости окрашивания препарата реактивом воду из-под
покровного стекла удаляют с помощью фильтровальной бумаги, а капельку реактива
наносят с противоположной стороны на край покровного стекла. В качестве реактивов
используют:
• йод, растворенный в йодиде калия (для окрашивания крахмальных зерен);
• фуксин (для окрашивания цитоплазмы);
• гематоксилин (для окрашивания ядер);
• хлор-цинк-йод (для окрашивания целлюлозных клеточных оболочек);
• флороглюцин и соляная кислота (для окрашивания одревесневших
оболочек);
• глицерин (для просветления препарата) и др.
Технология работы
1.
Изучите строение микроскопа, найдите элементы его оптической и механической
систем. Выясните, какое значение имеет каждая часть микроскопа.
2.
Ознакомьтесь правилами пользования микроскопического оборудования.
Используя готовые микропрепараты отработайте последовательность действий с микроскопом.
3.
Изучите правила и технику приготовления микропрепаратов. Используя
раздаточный материал приготовьте микропрепарат кожицы чешуи лука. Рассмотрите
микропрепарат под малым и большим увеличением.
4.
Приготовьте микропрепараты предложенных вам растений. Рассмотрите
микропрепараты сначала при малом, а затем при большом увеличении. Обратите внимание на
форму клеток разных растений, найдите оболочку, вакуоль, ядро.
5.
Рассмотрите готовый микропрепарат «Лубяные волокна кенефа – поперечный
срез», приготовьте микропрепараты предложенных вам объектов, рассмотрите их под
микроскопом. Сравните форму, размеры и строение клеток изученных растений. Определите их
тип.
6.
При большом увеличении микроскопа зарисуйте крупном масштабе одну-две
клетки разных растений (паренхимных и прозенхимных). Обозначьте оболочку, ядро
цитоплазму, вакуоли.
7.
Используя приготовленный микропрепарат клеток листа элодеи при большом
увеличении рассмотрите вращательное движение цитоплазмы в клетках средней жилки листа.
8.
Ознакомьтесь с правилами оформления ботанического рисунка и зарисуйте одну
клетку и укажите стрелками направление движения цитоплазмы. Какое значение имеет
движение цитоплазмы.
9.
Сделайте вывод о многообразии форм строения растительных клеток.
10.
Изготовьте препарат нижней эпидермы листа традесканции. Рассмотрите при
большом увеличении содержимое клеток, найдите хлороплаты, лейкопласты. Зарисуйте однудве клетки, сделайте обозначения.
12
11.
Изготовьте препараты клеток мякоти плодов томата, рябины, шиповника. Для
этого препаровальной иглой надорвите кожицу плода и возьмите немного мякоти. Перенесите
ее в каплю воды на предметное стекло, постучите иглой по стеклу (вследствие этого
произойдет разъединение клеток). Накройте покровным стеклом и рассмотрите сначала при
малом, а затем при большом увеличении. Обратите внимание обратите на строение
хромопластов различных растений (рябины, например, они имеют вытянутую, а у шиповника –
округлую или угловатую форму). Зарисуйте одну-две клетки мякоти плодов и сделайте
обозначения.
12.
Приготовьте и рассмотрите временные микропрепараты крахмальных зерен клубня
картофеля, зерновок пшеницы, кукурузы, риса, фасоли.
Для этого отрежьте маленький кусочек клубня картофеля и сделайте им мазок на
предметном стекле в капле воды (вода при этом помутнеет – из разрушенных клеток в воду
перешли крахмальные зерна). Накройте покровным стеклом и рассмотрите при малом и
большом увеличении (при рассмотрении слоистости следует прикрыть диафрагму конденсора
и слегка вращать микрометренный винт). Проведите реакцию на крахмал раствором йода в
йодистом калии.
Сравните формы крахмальных зерен у разных видов растений, найдите и зарисуйте
простые, сложные и полусложные крахмальные зерна (у пшеницы крахмальные зерна обычно
двух типов: мелкие округлые и линзовидные, концентрическая слоистость заметна на более
крупных зернах. У риса овальные сложные крахмальные зерна из простых, очень мелких
граненых зернышек . Крахмальные зерна кукурузы простые, многогранные, со сглаженными
углами. В центре их видна трещина, по форме напоминающая штрих, галочку или звездочку.
Крахмальные зерна гречихи очень мелкие, неправильной формы, слоистость их не заметна).
При большом увеличении в клетках семени фасоли видны алейроновые и крахмальные зерна.
13.
Рассмотрите кристаллы в клетках сухой чешуи лука. Приготовьте временный
препарат клеток чешуи лука в капле глицирина. Рассмотрите под микроскопом, найдите
призматические одиночные (или собранные по два-три) кристаллы оксалата кальция.
Приготовьте микропрепарат клеток мякоти плода шиповника, поместив его в каплю воды.
Рассмотрите под микроскопом друзы кристаллов в клетках.
14.
Сделайте препараты поперечного среза черешка традесканции (или бегонии) в
капле глицирина. Найдите при большом увеличении клетки с рафидами и друзами. Сделайте
вывод о значении эргастических веществ в жизни растений.
15.
Для изучения плазмолиза сделайте следующее:
- Приготовьте временный микропрепарат эпидермы сочной чешуи лука и элодеи в капле
воды (рассмотрите препараты при малом и большом увеличениях микроскопа. Обратите
внимание на то, что цитоплазма прижата к клеточным стенкам. Клетки находятся в состоянии
полного насыщения водой – состояние тургора). Зарисуйте отдельную клетку в этом состоянии.
- На один край покровного стекла (в плотную к нему) нанесите с одной стороны каплю
раствора поваренной соли, а с другой – положите кусочек фильтровальной бумаги (она оттянет
воду из под покровного стекла и раствор соли проникнет под него. Пронаблюдайте под
микроскопом за происходящими в клетке изменениями. Зарисуйте и подпишите увиденное.
- В такой же последовательности замените раствор соли на чистую воду. Пронаблюдайте
под микроскопом за происходящими в клетке изменениями. Зарисуйте и подпишите
увиденное.
- На одно покровное стекло нанесите р-р KNO3 на другое – р-р Ca(NO3)2, на третье –
KSCN (или нитрата калия KNO3). В каждую каплю поместите лист элодеи (или кожицу лука),
накройте покровным стеклом. Через пять-десять минут рассмотрите препараты под
микроскопом, сначала на малом, потом на большом увеличении. Найдите участки с
плазмолизированными клетками, зарисуйте их в состоянии плазмолиза. Сравните увиденное,
сделайте вывод (в растворе нитрата калия возникает главным образом выпуклый плазмолиз, в
растворе нитрата кальция – судорожный плазмолиз. Ион калия (очень медленно по сравнению с
водой проходящий через мембрану за счет наличия калиевых каналов) уменьшает вязкость
13
цитоплазмы, способствуя ее отделению от клеточной стенки, вследствие чего возникает
выпуклый плазмолиз. Ион кальция, напротив, повышает вязкость цитоплазмы, увеличивая силы
ее сцепления с клеточной стенкой, что вызывает преимущественно судорожный плазмолиз. Оба
вида обычно предваряются вогнутым плазмолизом. При длительном нахождении клеток в
растворе роданида или нитрата калия (15 мин. И более) цитоплазма набухает, там, где
протопласт не касается клеточных стенок, вокруг вакуолей образуются так называемые
колпачки цитоплазмы. Колпачковый плазмолиз возникает при разной проницаемости
плазмалеммы и тонопласта: ионы калия, медленно проникают в цитоплазму через калиевые
каналы, вызывая ее набухание. В тонопласте таких каналов не имеется, и поэтому объем
вакуоли не увеличивается.).
- Сделайте вывод о наблюдаемых явлениях и объясните их значение в жизни растений.
11. Проведите наблюдение фаз митоза наблюдать в апикальной меристеме кончиков корня
чеснока (2n = 16) (или лука (2n= 16), конских бобов (2n = 12)) (возможно использование
готовых микропрепаратов). Для этого:
- Проткните зубчик чеснока булавкой и подвесьте его вверху пробирки с водой так, чтобы
основание зубчика находилось в воде. Оставьте на 3 – 4 дня в покое, так как любое постороннее
воздействие может временно подавить клеточное деление.
- После образования нескольких корешков длиной 1 – 2 см отрежьте от них концевые
участки длиной 1 см. Поместите отрезанные участки корешков в небольшую пробирку с 6%ной уксусной кислотой, заткните ее пробкой и оставьте на ночь при комнатной температуре для
фиксации.
- Ухватив корешки пинцетом за верхний конец, перенесите их в чашку Петри с
дистиллированной водой и отмывайте в течение нескольких минут для удаления фиксатора.
Перенесите кончики корешков в пробирку, содержащую 1М HCl, и выдержите 3 мин при 60 °С
(для корешков лука, горошка или бобов – 6 – 10 мин). При этом срединные пластинки,
удерживающие клетки вместе, разрушаются, а ДНК хромосом гидролизуется с образованием
альдегидных форм дезоксирибозы, способных взаимодействовать с красителем (реактивом
Фёльгена).
- Кислоту вместе с кончиками корешков вылейте в чашку Петри. Перенесите корешки в
другую чашку Петри, содержащую дистиллированную воду, и отмойте кислоту. Оставьте на 5
мин.
- Перенесите корешки в маленькую пробирку с реактивом Фёльгена (0,5 г фуксина и 5 г
сульфита натрия на 100 мл воды) и заткните ее пробкой. Поставьте в прохладное темное место
(лучше в холодильник) минимум на 2 ч.
- Выньте пинцетом один кончик и поместите его в чашку Петри с 6%-ной уксусной
кислотой. Отрежьте скальпелем концевой участок длиной 1 – 2 мм остальное отбросьте.
- На чистое предметное стекло нанесите стеклянной палочкой каплю 6%-ной уксусной
кислоты и поместите в нее кончик корешка. Двумя препаровальными иглами растреплите
кончик корешка и накройте покровным стеклом. Поместите препарат на плоскую поверхность,
накройте несколькими листками фильтровальной бумаги и сильно нажмите через нее на
покровное стекло подушечкой большого пальца. Не допускайте смещения покровного стекла в
стороны.
- Изучите препарат под микроскопом при ×120, ×600 и ×1350-кратном увеличении.
Найдите клетки, находящиеся на разных стадиях митоза. Выполните микроскопические
картинки в тетради, сопроводите их пояснениями.
1.
2.
Требования к отчету
Представить результаты работы в виде рисунков, выводов.
Уметь отвечать на контрольные вопросы
14
Контрольные вопросы и задания
1.
Назовите основные части светового микроскопа. Какие элементы входят в состав
механической и осветительной частей микроскопа, и каково их значение?
2.
Назовите значение оптической части микроскопа и ее составляющих. Дайте
характеристику объективов. Что такое разрешающая способность микроскопа, и каковы
способы ее увеличения?
3.
Определите увеличение микроскопа при условиях: увеличение окуляра 10×,
объектива – 8, 40, 90.
4.
Каков порядок работы с микроскопом? Каковы правила оформления результатов
наблюдений?
5.
Какие препараты называю временными, какие постоянными? Назовите
последовательность этапов приготовления временных препаратов. Какие реактивы используют
при окраске растительных образцов?
6.
Каковы особенности строения клеток растительных организмов? Как различаются
растительные клетки по форме? Приведите примеры паренхимых и прозенхимных клеток. Чем
они отличаются?
7.
В чем заключается физиологическая сущность явлений плазмолиза и
деплазмолиза? Может ли происходить плазмолиз в мертвой клетке?
8.
С какими свойствами цитоплазмы и вакуоли связаны осмотические явления
клетки?
9.
Растения болот (клюква) обладают признаками, присущими для ксеромофных
растений. Объясните почему?
10.
Какие типы пластид вы знаете? Охарактеризуйте их строение и выполняемые
функции.
11.
Назовите включения, образованные органическими веществами и включения,
образованные минеральными веществами.
12.
В чём разница между простым, сложным и полусложным крахмальным зерном?
Где в растении образуются крахмальные зерна из первичного крахмала, а где – из вторичного?
13.
Что такое алейроновое зерно?
14.
Какова роль эргастических веществ в жизни растений?
Лабораторная работа № 2
Ткани. Образовательные ткани (меристемы). Покровные ткани (эпидермис, пробка и
перидерма). Механические ткани (колленхима и склеренхима). Проводящие ткани –
ксилема (древесина) и флоэма (луб). Проводящие элементы ксилемы: трахеиды и трахеи
(сосуды). Строение и расположение окаймленных пор. Проводящие элементы флоэмы:
ситовидные клетки и ситовидные трубки. Типы строения проводящих пучков
Цель работы: изучить особенности строения растительных тканей
Задачи: ознакомиться с общими анатомическими чертами строения растительных тканей;
их локализацией в органах растений, отметить особенности строения тканей в связи с
выполняемыми функциями
Материалы и оборудование*: постоянный микропрепарат конуса нарастания стебля
элодеи (Elodea canadensis Rich.), листья герани (Pelargonium sp.), постоянный микропрепарат
поперечного среза ветки бузины (Sambucus racemosa L.), плод груши (Pyrus communis L.), побег
розы (Rosa sp.), черешки листьев бегонии (Begoniasp.) (или свеклы – Beta vulgaris L.),
постоянные микропрепараты: стебля тыквы (Cucurbita pepa L.); р-р Люголя.
Технология работы
1.
Рассмотрите при малом увеличении постоянный препарат верхушечной почки
побега элодеи. Зарисуйте контурный рисунок почки, обозначив на нем конус нарастания,
листовые бугорки и бугорки пазушных почек. При большом увеличении рассмотрите две – три
клетки конуса нарастания и клетку сформировавшегося листа. Зарисуйте и сделайте
соответствующие обозначения.
15
2.
Изучите строение первичной покровной ткани с помощью препарата эпидермиса
листа герани. Найдите основные клетки эпидермиса, простую трихому, железистую трихому,
замыкающие клетки устьиц, устьичную щель. Обратите внимание на строение устьиц. Чем они
отличаются от основных клеток эпидермиса? Зарисуйте строение эпидермиса листа герани.
3.
Рассмотрите строение перидермы, пользуясь постоянным препаратом поперечного
среза (стебля). Найдите участок перидермы с чечевичкой. Снаружи от стебля находится
отмерший эпидермис, ниже лежат несколько правильных радиальных рядов плотно сомкнутых
клеток, окрашенных в коричневый цвет – это пробка. Под ней располагается пробковый камбий
(феллоген), а ниже его – феллодерма (эти ткани живые и окрашены в зеленый или голубой
цвет). Чечевички заполнены округлыми клетками выполняющей ткани, между которыми
имеются межклетники. Зарисуйте строение перидермы и чечевички бузины. Обозначьте
пробку, феллоген, феллодерму, выполняющую ткань чечевички.
4.
Рассмотрите и зарисуйте эмергенцы розы.
5.
Сделайте препарат мякоти незрелого плода груши.
Для этого немного мякоти груши нанесите на предметное стекло, хорошо размягчите в
капле воды, добавьте каплю сернокислого анилина или каплю р-ра Люголя (одревесневшие
оболочки окрасятся в жёлтый (с сернокислым анилином) или в тёмный цвет (с р-ром Люголя)).
Найдите склереиды, что это такое и какие функции они выполняют? Зарисуйте и сделайте
обозначения.
6.
Приготовьте временный прерарат поперечного среза черешка листа бегонии (или
свеклы). Рассмотрите при малом и большом увеличении микроскопа (под эпидермой можно
увидеть кольцо мелких живых плотно сомкнутых клеток с утолщенными в области углов
оболочками (это уголковая колленхима). Зарисуйте участок черешка листа от эпидермы и
глубже, включая колленхиму. Обозначьте эпидерму, колленхиму, в клетке колленхимы –
утолщенную оболочку, цитоплазму, хлоропласты, вакуоль, ядро.
7.
На препарате поперечного среза стебля тыквы рассмотрите механические ткани
(уголковую колленхиму и склеренхиму) (рис. ЛР2.1).
Рис. ЛР2.1. Колленхима (1) и склеренхима (2) в стебле тыквы (Cucurbita pepo)
(http://e-lib.gasu.ru)
8.
Рассмотрите готовый препарат поперечного разреза стебля. Найдите проводящий
пучок с проводящими элементами в поперечном разрезе. Зарисуйте ситовидную трубку с
клеткой-спутницей и сосуд в поперечном разрезе. Сделайте обозначения: ситовидная трубка,
клетка-спутница, стенка сосуда, полость сосуда.
16
9.
Изучите разные типы проводящих пучков и определить их типы, выяснив взаимное
расположение ксилемы и флоэмы, наличие или отсутствие камбия на готовых
микропрепаратах: стебля кукурузы, клевера, тыквы, корневища ландыша, орляка, корня ириса.
10.
Заполните табл. ЛР2.1.
Таблица ЛР2.1
Классификация растительных тканей
Классификационные
структуры / типы тканей
Особенности, функции
По строению
1. Простые
2.
1. Образовательные ткани
(меристемы):
По выполняемым функциям
Обеспечивают рост и образование всех остальных тканей
растения
11.
Сделайте вывод об особенностях строения различных типов тканей в связи с
выполняемыми функциями.
Требования к отчету
1. Представить результаты работы в виде рисунков, выводов.
2. Уметь отвечать на контрольные вопросы.
Контрольные вопросы
1.
Дайте определение растительных тканей. У каких растений впервые появилось
тканевое строение? С чем связано появление тканей у растений?
2.
Укажите классификационные схемы тканей.
3.
Перечислите типы меристем (образовательных тканей), охарактеризуйте их
локализацию и значение в растительном организме,
3. Какие ткани относят к группе основных? Назовите особенности их строения,
выполняемые функции, определите локализацию в теле растения.
4. Назовите основные функции эпидермиса, перидермы и корки. Укажите их
локализацию, типы клеток, входящих в их состав.
5. Какие ткани относят к секреторным? Охарактеризуйте наружные и внутренние
секреторные ткани.
6. Назовите отличительные особенности колленхимы и склеренхимы. К какому типу
тканей они относятся?
7. Какими общими чертами обладают ксилема и флоэма? К какому типу тканей они
относятся?
8. Опишите строение трахеальных элементов. Чем отличаются трахеиды и членики
сосудов? Почему появление сосудов считается крупным ароморфозом в эволюции растений?
9. Назовите ткани, входящие в состав ксилемы.
10. Опишите строение ситовидных элементов. Чем отличаются ситовидные клетки от
ситовидных трубок?
11. Какую функцию выполняют клетки-спутницы?
12. Назовите основные типы проводящих пучков.
Лабораторная работа № 3
Органы. Анатомическое строение многолетних стеблей травянистых двудольных и
однодольных растений. Строение стебля древесных голосеменных и покрытосеменных
растений. Лист. Анатомическое строение листа. Анатомическое строение корня. Меристема
корня. Зоны роста, поглощения и дифференциации
Цель: изучить анатомическое строение вегетативных органов (побега и корня).
17
Задачи:
1) Изучить анатомическое строение стеблей однолетних и многолетних растений.
2) Выявить особенности строения стеблей однодольных и двудольных растений.
3) Изучить анатомическое строение листьев.
4) Изучить первичное и вторичное строение корня.
Обеспечивающие средства
Микроскопы, постоянные микропрепараты (поперечного среза стебля кирказона, стебеля
льна, кукурузы, сосны, липы; листа камелии, листа ириса, хвои сосны, корня ириса и тыквы).
Технология работы
1. Рассмотреть поперечный срез однолетнего стебля кирказона на постоянном препарате
и зарисовать, отметив: первичную покровную ткань (эпидермис, покрытый кутикулой),
первичную кору (колленхима, паренхима, эндодерма), центральный цилиндр (перицикл,
коллатеральные
открытые
сосудисто-волокнистые
проводящие
пучки,
паренхима
сердцевинного луча, межпучковый камбий, паренхима сердцевины).
2. Рассмотреть поперечный срез стебля льна и зарисовать небольшой сектор стебля с
указанием: эпидермиса, первичной коры, центрального цилиндра).
3. Рассмотреть поперечный срез стебля кукурузы на постоянном препарате, зарисовать
схему строения стебля, показав характер расположения пучков и механической ткани.
4. Изучить поперечный срез стебля льна, зарисовать небольшой сектор, отметив
перидерму, первичную и вторичную кору, камбий, древесину, годичные кольца, сердцевину,
смоляные ходы.
5. Изучить поперечный срез стебля липы и зарисовать, отметив: перидерму, первичную
кору, вторичную кору, камбий, годичные кольца, сердцевинные лучи, сердцевину.
6. Изучить расположение тканей в листе камелии и зарисовать, сделав соответствующие
обозначения.
7. Изучить лист однодольного растения с простым мезофиллом и параллельным
жилкованием на примере ириса, зарисовать и отметить: эпидермис с устьицами, колленхиму,
мезофилл, сосудисто-волокнистый пучок (склеренхиму, флоэму, ксилему).
8. Рассмотреть на постоянном препарате строение хвоинки сосны, зарисовать и отметить:
эпидермис с погруженными устьицами, смоляные ходы, эндодерму, сосудистые пучки,
механические волокна, гиподерму.
9. Рассмотреть первичное строение поперечного среза корня ириса на постоянном
препарате и зарисовать, отметив: первичную кору (экзодерма, мезодерма, эндодерма),
центральный цилиндр (перицикл, ксилема, флоэма одревесневшая сердцевина).
10.
Рассмотреть на готовом препарате поперечный срез корня тыквы, отметив:
перидерму, сосудистые пучки, сердцевинные лучи.
Требования к отчету
1. Представить результаты работы в виде рисунков, выводов.
2. Уметь отвечать на контрольные вопросы.
Контрольные вопросы
1. Каковы особенности апикального нарастания корня у однодольных и двудольных
растений? Укажите гистогены корня и ткани, формируемые ими.
2. Опишите первичное и вторичное строение корня. Какие ткани относят к вторичной
коре?
3. Назовите основные этапы формирования вторичных элементов в корне.
4. Опишите первичное строение стебля.
5. Для древесных семенных растений характерен ………. тип вторичного утолщения. При
этом в стволе можно выделить три концентрических слоя: ….., ……, ……
6. Между корой и древесиной находится слой образовательной ткани –……..
18
7. Каковы особенности функционирования камбия древесных растений?
8. Опишите строение древесины покрытосеменных растений на примере липы.
9. Назовите особенности строения стеблей однодольных и двудольных растений.
10. Опишите анатомическое строение листа. Каковы особенности строения эпидермиса
растений засушливых мест произрастания? Назовите различия в строении листа свето- и
тенелюбивых растений. Опишите анатомическое строение хвоинки сосны, с чем связано такое
строение?
3. МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ ПО САМОСТОЯТЕЛЬНОМУ ИЗУЧЕНИЮ
ДИСЦИПЛИНЫ
Самостоятельная работа студентов при изучении курса включает следующие виды
работ:
1.
Проработка лекционного материала по конспекту и учебной литературе.
2.
Подготовка к лабораторным занятиям.
3.
Контрольная работа.
4.
Проведение промежуточного контроля.
5.
Подготовка к зачету
В ходе самостоятельной работы студенты должны освоить теоретический материал,
предусмотренный рабочей программой (см. раздел «Рабочая программа», п.п. 2.2.
«Наименование тем, их содержание, объем в часах лекционных занятий»).
Самостоятельная работа студентов к лабораторным занятиям состоит в систематической
подготовке к текущим работам практикума, т.е проработке теоретического материала по теме
лабораторной работы, подготовки к текущему и итоговому опросу перед выполнением и по
завершению ее, подготовке отчета по выполненной работе (см. требования к отчету в разделе
«Сборник описаний лабораторных работ»).
Подготовка к контрольным работам, промежуточному контролю знаний, зачету включает
проработку вопросов контрольных работ и тестов.
4. МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ ПО ТЕКУЩЕМУ И ПРОМЕЖУТОЧНОМУ
КОНТРОЛЮ
Контроль за усвоением студентами самостоятельно пройденного материала, проводится
на лабораторных занятиях, а также на лекциях в форме небольших проверочных работ или в
форме тестирования. Текущая успеваемость студентов контролируется фронтальными
опросами, тестированиями, опросами по результатам лабораторных работ. В середине семестра
проводится промежуточная аттестация в форме контрольной работы и в форме тестов по
пройденному материалу на лекциях и лабораторных работах. Текущая успеваемость студентов
определяется зачетом. К зачету допускаются студенты, выполнившие лабораторные и
самостоятельные работы, предусмотренные программой.
Контрольные работы предусматривают выполнение двух заданий – первое, вопрос со
свободным ответом (см. вопросы к зачету), второе – тестовое.
Тестовые задания
1. Кто и когда впервые рассмотрел клетку и дал ей название: 1) М. Мальпиги, Н. Грю в
1675 году. 2) Р. Гук в 1665 году. 3)А. Левенгук в 1695 году. 4) М. Шлейден и Т. Шванн в 1839
году
2. Кто и когда впервые описал ядро клетки как важнейшее образование: Я. Пуркинье в
1839 году. М. Мальпиги, Н. Грю в 1675 году. Р. Броун в 1831 году. А. Левенгук в 1695 году.
3. Кто и когда обобщил все исследования о клетке и сформулировал клеточную
теорию: М. Шлейден и Т. Шванн в 1839 году. Р. Броун в 1831 году. А. Левенгук в 1695 году. Р.
Гук в 1665 году
4. Клетки называются паренхимными, если…. Прозенхимными – если………………
5. Цифры 8, 10, 20 на объективе микроскопа указывают на ….
19
6. Какой из перечисленных органоидов входит в состав прокариотической клетки? 1)
ядро 2) пластиды 3) рибосомы; 4) эндоплазматическая сеть; 5) аппарат Гольджи.
7. Белок откладывается в растительных клетках в виде: 1) капель 2) кристаллов 3)
гранул 4) зерен.
8. Крахмальное зерно, имеющее несколько образовательных центров, называется: а)
сложным б) простым в) полусложным г) структурным.
9. Крахмальное зерно называется эксцентрическим, когда: 1) его образовательный
центр находится в центре. 2) когда у него нет образовательного центра. 3) когда его
образовательный центр смещен в сторону.
10.
Из предложенных примеров выберите растения со сложными алейроновыми
зернами: 1) пшеница, картофель, лен, кукуруза 2) горох, фасоль, рис, рожь 3) клещевина,
тыква, горчица, подсолнечник.
11. Оболочка клетки является продуктом жизнедеятельности:1) протопласта 2)
митохондрий 3) рибосом 4) эндоплазматической сети 5) пластид
12. Рост первичной оболочки растительных клеток происходит путем…
13.
Каково строение биологической мембраны?
1) двойной слой липидов,
покрытый с двух сторон молекулами белков. 2) чередующиеся молекулы липидов, углеводов и
белков. 3) слой липидов, покрытый снаружи тонким слоем углеводов. 4) белки «плавают» в
двойном слое липидов, находясь и на поверхности, и внутри него.
14.
В качестве реактива выявляющего одревеснение оболочки обычно используют
…………, который окрашивает оболочку в …………… цвет
15.
Одревеснение клетки – это процесс отложения в оболочке:1) целлюлозы
2)
гемицеллюлозы 3) лигнина; 4) суберина;
5) кутина;
16.
Вторичная оболочка составляет: 1) сплошной слой на первичной оболочке, 2)
сплошной слой под первичной оболочкой,3) инкрустирована в первичную оболочку, 4)
прерывистый слой на первичной оболочке.
17.
В каком органоиде содержатся тилакоиды? 1) в хлоропластах 2) в ядре 3) в
ЭПС; 4) в аппарате Гольджи 5) в митохондриях.
18.
В результате фотосинтеза на свету: 1) образуется глюкоза и выделяется кислород
2) образуются жиры и выделяется углекислый газ 3) образуются белки и выделяется кислород
4) образуется целлюлоза и выделяется углекислый газ.
19.
Где в клетке образуется АТФ? 1) в ядре 2) в ядрышке 3) в митохондриях 4) в
рибосомах 5) в хлоропластах.
20.
Где в клетки образуется р-РНК 1) в ядрышке; 2) в митохондриях; 3) в
хлоропластах; 4) в рибосомах; 5) в лейкопластах.
21.
Хлорофилл содержится:1) в тилакоидах; 2) в кристах; 3) цитоплазме; 4) в
матриксе; 5) в рибосомах
22.
В каком органоиде образуются кристы? 1) в митохондриях; 2) в хлоропластах; 3)
в ядре; 4) в рибосомах
23.
Какой органоид участвует в процессе фотосинтеза? 1) митохондрии; 2)
хлоропласты; 3) рибосомы; 4) ядро; 5)ядрышко
24.
Рибосомы участвуют в образовании:1) АТФ 2) белка 3) глюкозы 4) жира 5)
целлюлозы.
25.
Функцию взаимосвязи всех органоидов клетки осуществляет: 1) митохондрии
2) эндоплазматическая сеть 3) рибосомы 4) аппарат Гольджи.
26.
Цвет корнеплода моркови обусловлен наличием пигмента: 1) каротина
ксантофилла 2) антоциана 3) хлорофилла 4) лейкоцита.
27.
Мацерация – это: 1) разрушение клеточной оболочки. 2) разрушение
межклеточного вещества 3) разрушение вторичной оболочки 4) разрушение покровной ткани.
28.
Давление воды на постенный протопласт, а через него и на оболочку клетки,
называется: 1) плазмолизом 2) тургором 3) анабиозом 4) диффузией.
20
29.
Митоз – это… В результате действия колхицина в течение одного
митотического чикла получены клетки растения с 36 хромосомами. Каково гаплоидное
число хромосом?
30.
После какой стадии мейоза в клетке образуется гаплоидный набор хромосом?
1) анафаза I 2) телофаза I 3) анафаза II 4) телофаза II.
31.
Какие две стадии митоза взаимно противоположны по протекающим в них
процессам?1) профаза и метафаза 2) анафаза и телофаза 3)профаза и телофаза 4) анафазы и
метафаза.
32.
В каком состоянии находятся хромосомы в неделящейся клетке? 1) в
спирализованном. 3) в деспирализованном. 2) в виде хроматина.
4) в виде нитей ДНК.
33.
Растительная клетка отличается от животной наличием: 1) ядра; 2) пластид 3)
эндоплазматической сети; 4) рибосом; 5) митохондрий.
34. Где в клетке содержится хроматин? 1) в митохондриях 2) в хлоропластах 3) в ядре 4)
в рибосомах 5) в мембране.
35. Первичная оболочка, как правило, характерна для… Рост первичной оболочки
растительных клеток происходит путем…
36. Наличие в оболочке целлюлозы определяется цветной реакцией с: 1) хлор-цинкйодом 2) гематоксилином 3) фуксином 4) глицирином
37.
Опробковение клетки – это процесс отложения в оболочке 1) суберина 2)
лигнина 3) целлюлозы 4) кутина 5) гемицеллюлозы.
38.
Какое явление происходит при погружении клетки в гипертонический
раствор солей? 1) ничего не происходит 2) пиноцитоз 3) деплазмолиз 4) плазмолиз.
39.
Какие органоиды имеют одномембранное строение? 1) митохондрии 3)
пластиды 5) клеточный центр 7) комплекс Гольджи 2) лизосомы 4) вакуоли. 6) рибосомы 8)
жгутик 9) ЭПС 10) микротрубочки.
40.
Мембрана, отграничивающая вакуолю, называется: 1) плазмодесмой 2)
тонопластом 3) плазмалеммой 4) гликокаликсом.
41.
Избирательная проницаемость мембран означает: а) свободное прохождение
воды б) невозможность диффузии ряда растворимых в воде соединений в) проведение веществ,
соединенных с транспортными ферментами г) ни один из ответов не верен.
42.
Плазмолиз – это: 1) свойство живой клетки 2) реакция на изменение концентрации
веществ за пределами клетки 3) доказательство избирательной проницаемости клетки 4) верны
все ответы.
43.
Каротиноиды присуствуют: 1) только в хлоропластах 2) только в хромопластах 3)
во всех типах пластид 4) ни один из ответов не верен.
44.
Где в клетки образуется белок? 1) в ядре 2) в хлоропластах 3) в митохондриях 4)
в рибосомах 5) в ядрышке.
45.
Митохондрии выполняют следующую функцию:1) синтез АТФ 2) синтез р-РНК;
3) синтез глюкозы 4) синтез белка 5) синтез жира.
46.
Какое строение имеют рибосомы? 1) две одинаковые субъединицы, образованные
белком и РНК 2) две одинаковые субъединицы, образованные белком и ДНК 3) две разные
субъединицы, образованные белком и РНК 4) две разные субъединицы, образованные белком
47.
Что расположено на наружной поверхности мембран гранулярной ЭПС? 1)
вакуоли 2) рибосомы 3) лизосомы 4) фагосомы.
48.
В метафазе происходит: 1) хромосомы располагаются в экваториальной плоскости
клеток 2) ядро увеличивается в размерах 3) удвоение ДНК 4) хроматиды каждой хромосомы
разъединяются и синхронно начинают удаляться друг от друга к разным полюсам
49.
Что такое интеркинез? 1) деление ядра 2) расхождение хромосом во втором
делении мейоза 3) прекращение деления клетки и ее выход из митотического цикла
4) промежуток между первым и вторым делением мейоза.
50.
В каком состоянии находятся хромосомы в неделящейся клетке? 1) в
спирализованном. 3) в деспирализованном. 2) в виде хроматина 4) в виде нитей ДНК.
21
51.
В какой стадии митоза происходит расхождение хромосом: 1) в профазе 2) в
метафазе 3) в анафазе 4) телофазе 5) интерфазе.
52.
К первичным меристемам относятся: 1) верхушечные меристемы. 2) вставочные
меристемы 3) протодерма 4) основная меристема 5) прокамбий.
53.
К вторичным меристемам относятся: 1) камбий 2) прокамбий 3) феллоген 4)
протодерма 5) основная меристема.
54.
К какой меристеме по происхождению и расположению относится камбий: 1)
первичной апикальной 2) первичной латеральной 3) вторичной латеральной.
55.
К покровным тканям НЕ относятся: 1) эпидерма 2) лубяные волокна 3) пробка
4) камбий.
56.
Клеточные стенки одревесневают у клеток: 1) меристем 2) пробки 3) лубяных
волокон
57.
Нисходящий ток органических веществ идет: 1) по ксилеме 2) флоэме 3)
сердцевине 4) по камбию.
58.
К наружным выделительным тканям относятся: 1) железистые волоски,
нектарники, гидатоды 2) корневые волоски 3) млечники.
59.
Смоляные ходы относятся: 1) к проводящим тканям 2) выделительным тканям 3)
запасающим тканям 4) механическим.
60.
Механические ткани выполняют опорную функцию: 1) в живом состоянии
2) в мертвом состоянии 3) колленхима в живом, склеренхима в мертвом состоянии 4)
колленхима в мертвом, склеренхима в живом состоянии.
61.
Интеркалярные меристемы: 1) обеспечивают дополнительный рост растений,
могут формировать все ткани стебля, дают начало вторичным меристемам 2) обеспечивают
ростовые движения растений и вставочный рост органов, определяют их расположение в
пространстве, могут формировать любые первичные ткани, кроме покровных, 3) отвечают за
рост органов в длину и толщину, могут формировать дополнительно любые ткани в этих
органах, обеспечивают ростовые движения.
62.
Выделительными тканями называют: 1) образования, активно выделяющие
наружу продукты метаболизма и капельно-жидкую воду 2) образования, способные активно
выделять из растения или активно изолировать в его тканях продукты метаболизма и капельножидкую воду 3) образования, накапливающие продукты метаболизма и перерабатывающие их.
63.
Вторичные меристемы образуются: 1) из первичных меристем 2) из первичных
основных тканей 3) из основных тканей, и иногда из первичных меристем.
64.
Пробка - это: 1) вторичная покровная однородная ткань, состоящая из мертвых
клеток, стенки которых пропитаны суберином 2) наружный, мертвый слой перидермы,
состоящий из клеток, стенки которых пропитаны суберином 3) многослойная вторичная
покровная ткань, состоящая из слоев мертвых клеток, стенки которых пропитаны суберином, и
слоев отмерших клеток других тканей.
65.
Проводящими элементами флоэмы являются: 1) сосуды 2) трахеиды 3)
древесинные волокна 4) ситовидные клетки.
66.
В клетках первичных меристем: 1) вакуоли отсутствуют, эргастических веществ
мало, ядро крупное 2) вакуоли мелкие, эргастических веществ нет, ядро маленькое 3) вакуоли
мелкие, эргастических веществ нет, ядро крупное.
67.
Флоэма покрытосеменных растений состоит из: 1) ситовидных трубок с
клетками-спутницами и ситовидных клеток 2) ситовидных трубок с клетками-спутницами,
лубяной паренхимы и, иногда, лубяных волокон 3) ситовидных трубок с клетками-спутницами,
лубяной паренхимы.
68.
В образовании проводящих пучков могут принимать участие: 1) апикальные
меристемы
2) перицикл 3) прокамбий 4) камбий 5) феллоген.
69.
Закрытые проводящие пучки по происхождению: 1) только первичны
2) только вторичны 3) могут быть и первичными и вторичными.
22
70.
Устьица в основном располагаются: 1) на верхней стороне листа 2) равномерно
по всей поверхности листа 3) на нижней стороне листа.
71.
Эпидерма листа выполняет следующие функции: 1) защитную 2) механическую
3) выделительную 4) газообмена 5) фотосинтеза 6) транспирации 8) запасания питательных
веществ 9) проведения пластических веществ.
72.
Ксилема покрытосеменных состоит: 1) сосудов и трахеид 2) сосудов, трахеид,
древесинной паренхимы 4) сосудов, трахеид, древесинной паренхимы и древесинных волокон.
73.
Воздухоносная паренхима встречается: 1) у болотных и околоводных растений
2) у лесных растений 3) у пустынных растений 4) у всех высших растений.
74.
Корка образуется: 1) за счет деятельности камбия 2) за счет деятельности
феллогена 3) за счет деятельности перицикла и прокамбия.
75.
Ситовидные клетки не имеют клеток спутниц потому что: 1) они сами
являются клетками спутницами 2) они имеют вакуоли и свое ядро, которое управляет всеми
процессами жизнедеятельности 3) они являются эволюционно более продвинутыми
проводящими элементами флоэмы и поэтому клетки спутницы им не нужны 4) у них в процессе
эволюции клетки спутницы редуцировались 5) у них в процессе эволюции клетки спутницы
слились с клетками ситовидных трубок.
76.
Колленхима выполняет функцию: 1) защитную 2) образовательную 3)
механическую 4) запасающую 5) проводящую.
77.
Механическая ткань в растущих органах: 1) склеренхима 2) колленхима 3)
склереиды 4) сосуды 5) трахеиды.
78.
В состав перидермы входят: 1) феллема, феллоген, феллодерма 2) колленхима и
склеренхима 3) эпидерма и корка 4) ризодерма и эпидерма 5) камбий и прокамбий.
79.
К механическим тканям относятся? 1) колленхима и склеренхима 2) эпидерма и
перидерма 3) камбий и прокамбий 4) ксилема и флоэма 5) ризодерма и флоэма.
80.
Какие вещества проводит флоэма? 1) воду 2) органические вещества 3)
минеральные вещества 4) кислород 5) углекислый газ.
81.
В состав флоэмы входят: 1) ситовидные элементы 2) трахеиды 3) сосуды 4)
древесные волокна 5) перицикл.
82.
К проводящим тканям относятся: 1) колленхима и склеренхима 2) камбий и
прокамбий 3) ксилема и флоэма 4) эпидерма и перидерма 5) кора и сердцевина.
83.
Из какой ткани образуется ксилема и флоэма? 1) камбия 2) перидермы 3)
ризодермы 4) феллогена 5) эпидермы.
84.
В состав хвоинки сосны входит: 1) столбчатый мезофилл; 2) губчатый мезофилл;
3) складчатый мезофилл; 4) сложный мезофилл; 5) двойной мезофилл
85.
Корневой волосок – это: 1) придаточный корень 2) боковой корень 3) часть
покровной ткани 4) часть клетки.
86.
Зоны корня названы в правильном порядке: 1) зона деления, зона роста, зона
проведения, зона всасывания 2) зона всасывания, зона деления, зона роста, зона проведения 3)
зона всасывания, зона проведения, зона деления, зона роста 4) зона деления, зона роста, зона
всасывания, зона проведения.
87.
За счет какой ткани стебель кукурузы растет в длину: 1) камбий 2)
верхушечная образовательная ткань 3) вставочная образовательная ткань 4) луб.
88.
Трихомы – это: 1) корневые волоски 2) волоски эпидермиса 3) образования для
газообмена и транспирации.
89.
Склереиды образуют: 1) кору деревьев 2) косточки плодов 3) древесину деревьев.
90.
Млечники относятся к системе: 1) выделительных тканей 2) покровных тканей.
3) основных тканей 4) проводящих.
91.
Какие названия носят бесполое и половое поколения, чередующиеся в
жизненном цикле высших растений: 1) спорофит и гаметофит 2) спорофит и гетерогамофит
3) изогамофит и гаметофит 4) спорофит.
92.
В архегониях формируется……
23
93.
В антеридиях формируются…..
94.
В результате слияния яйцеклетки и сперматозоида образуется: 1) зооспора 2)
зигота 3) спора 4) заросток 5) протонема.
95.
Какой набор хромосом имеет половое поколение (гаметофит): 1) диплоидный
набор хромосом 2) триплоидный набор хромосом 3) гаплоидный набор хромосом 4)
триждыплоидный набор хромосом 5) полиплоидный набор хромосом.
96.
Поколение, на котором образуются органы бесполого размножения, с
развивающимися в них спорами, называется: 1) коньюгацие 2) бесполым, или спорофитом
3) брожением 4) почкованием 5) половым.
5. УЧЕБНО-МЕТОДИЧЕСКОЕ И ИНФОРМАЦИОННОЕ
ОБЕСПЕЧЕНИЕ ДИСЦИПЛИНЫ
Вопросы к зачету
1.
Строение растительной клетки. Основные органоиды.
2.
Черты сходства и отличия растительной и животной клетки.
3.
Особенности строения клетки эукариотических и прокариотических
организмов.
4.
Ядро. Митоз. Мейоз.
5.
Митохондрии: их строение, функции.
6.
Процесс клеточного дыхания.
7.
Пластиды: их стоение, функции
8.
Процесс фотосинтеза. Световая и темновая стадии.
9.
Особенности развития клеточной оболочки: первичной и вторичной.
10.
Строение клеточной мембраны.
11.
Химический состав клетки: неорганические и органические вещества.
12.
Продукты жизнедеятельности протопласта. Первичный и запасной крахмал.
Запасные белки и жиры.
13.
Вакуоли, их функции. Тургор и плазмолиз. Кристаллы.
14.
Ткани. Определение. Классификация.
15.
Образовательные ткани (меристемы): верхушечные (апикальные), боковые
(латеральные), вставочные (интеркалярные). Цитологические особенности клеток.
16.
Первичные покровные ткани (эпидермис).
17.
Покровные ткани: пробка и корка.
18.
Ассимиляционные ткани.
19.
Запасающая ткани.
20.
Ткани поглощения веществ: эпиблема (ризодерма), веламен.
21.
Механические ткани: колленхима и склеренхима.
22.
Проводящие ткани: ксилема (древесина) и флоэма (луб). Проводящие элементы
ксилемы и флоэмы.
23.
Эволюция проводящих элементов.
24.
Дифференциация первичных и вторичных проводящих тканей.
25.
Типы проводящих пучков.
26.
Система проветривания растений: аэренхима, устьица, чечевички.
27.
Устьица: их строение и функционирование.
28.
Чечевички: их образование и функционирование.
29.
Конус нарастания побега. Понятие о тунике и корпусе. Зоны конуса нарастания
и их участие в образовании органов и тканей.
30.
Анатомическое строение листа.
31.
Морфолого-анатомические особенности листьев гигрофитов и ксерофитов.
32.
Особенности строения световых и теневых листьев.
24
33.
34.
растений.
35.
стеллы.
36.
37.
38.
39.
40.
41.
42.
43.
Анатомическое строение однолетнего стебля двудольных растений.
Анатомическое строение многолетнего стебля травянистых двудольных
Типы заложения камбия: пучковый и межпучковый камбий. Классификация
Анатомическое строение многолетнего стебля древесных двудольных.
Анатомическое строение стебля древесных голосеменных.
Анатомическое строение стебля однодольных растений.
Анатомическое строение клубня и корневища.
Корень. Апикальная меристема и зоны корня.
Первичное анатомическое строения корня.
Вторичное анатомическое строение корня.
Анатомическое строение корнеплодов.
Глоссарий
Ботаника (от греч. botane – трава, зелень) – комплекс наук о растениях. Разделы
ботаники:
− морфология растений (от греч. morphe – форма + logos – наука) – наука о внешнем
строении растений;
− анатомия растений (от греч. anatomia – искусство рассекать) – наука о внутреннем
строении растений;
− систематика растений – изучает их классификацию и филогению;
− эмбриология растений – изучает растения на стадии эмбриона (зародыша);
− палеоботаника – изучает ископаемые растения;
− палинология (от греч. paline – тонкая пыль + logos – наука) – раздел ботаники,
изучающий пыльцу и споры растений, их форму, строение, развитие, закономерности
рассеивания;
− физиология растений – изучает процессы жизнедеятельности в растениях;
− биохимия растений – изучает химический состав растений и биохимические процессы,
протекающие в растениях;
− экология растений – изучает взаимоотношения растений со средой и другими
организмами;
− география растений – изучает географическое распространение таксонов;
− геоботаника, или фитоценология – изучает растительные сообщества;
− цитология растений – изучает растительную клетку;
− гистология растений – изучает растительные ткани.
Отдельные систематические группы растений изучают: альгология – водоросли; бриология
– мхи; птеридология – папоротники.
Цитология растений
Алейроновые зерна – зерна запасного белка в клетках запасающих тканей.
Антохлор – пигмент клеточного сока цветков, окрашивающий их в желтый цвет.
Антоцианы – пигменты клеточного сока цветков, плодов, листьев растений, окрашивающие их
в розовый, красный, голубой, фиолетовый цвета и их различные сочетания.
Апертура поры – выход порового канала в цитоплазму.
Друзы – сросшиеся кристаллы оксалата кальция, образующиеся в клетках многих
растений.
Замыкающая пленка поры – перегородка между парой пор, состоящая из двух
первичных клеточных стенок соседних клеток и срединной пластинки между ними.
Клеточный сок – содержимое вакуоли. В к.с. содержатся соли, сахара (прежде всею
сахароза, глюкоза, фруктоза), органические кислоты(яблочная, лимонная, щавелевая, уксусная
и др.),аминокислоты, белки.
Кутикула (от лат. cuticula – кожица) – тонкий слой на поверхности клеток эпидермы,
25
образованный жироподобным веществом кутином и растительным воском.
Лигнин (от лат. lignum – древесина) – полимер, образованный ароматическими спиртами,
откладывается в матрикс кле-точной стенки. Его отложение – лигнификация, или одревеснение,
приводит к изменению свойств оболочек клеток – снижению эластичности, повышению
твердости и прочности.
Мацерация – процесс разрушения срединной пластинки, приводящий к разъединению
клеток.
Пластиды – органоиды высших растений. Подразделяются на:
− лейкопласты (от греч. leukos – белый + plastes – фигура) – бесцветные пластиды,
выполняющие функцию синтеза и за-паса белков, жиров и углеводов;
− хлоропласты (от греч. chloros – зеленый + plastes – фигура) – зеленые пластиды
растительных клеток, содержат пигмент хлорофилл;
− хромопласты (от греч. chroma – цвет + plastes – фигура) – пластиды, содержащие
желтый пигмент (ксантофилл) и оранжевый (каротин).
Пора – перерыв во вторичной клеточной стенке; бывают простые, окаймленные. У
простых пор диаметр порового канала приблизительно одинаков на всем протяжении от
полости клетки до первичной оболочки, а канал имеет форму цилиндра. У окаймленных пор
поровый канал резко суживается в процессе отложения вторичной оболочки, поэтому
внутреннее отверстие поры, входящее в полость клетки, гораздо уже, чем наружное,
упирающееся в первичную оболочку.
Поровый канал – протяженность поры во вторичной клеточной стенке.
Протопласт – живое содержимое клетки; клетка без клеточной стенки, имеющая лишь
периферическую мембрану (плазмолемму), которая ограничивает цитоплазму с органоидами.
Рафиды (от греч. rhaphis – игла) – игольчатые кристаллы оксалата кальция, часто собраны
в пучки.
Суберин (от лат. suber – пробка) – образован жироподобным веществом, которое
откладывается сплошным слоем на внутренней поверхности клеточной стенки; процесс
отложения суберина называется суберинизация, или опробковение, он приводит к прекращению
транспорта через стенку газов, воды и растворенных в ней веществ, что приводит к гибели
клетки.
Сфериты – кристаллы оксалата кальция, имеющие сферическую форму.
Таннины – группа фенольных соединений растений, имеют коричневый цвет, способны
свертывать белки, что лежит в основе их дубящего действия (франц. tanner – дубить кожу,
отсюда название дубильные вещества).
Тилакоиды (ламеллы) (от греч. thylacos – мешок + oides – подобный) – мембранная
структура в хлоропластах, напоминающая по форме мешочек; в хлоропластах стопки
тилакоидов образуют граны.
Тонопласт – мембрана вакуоли. Благодаря т. вакуоли способны накапливать продукты
метаболизма и участвовать в биохимических кругообороте веществ в клетке.
Торус (от лат. torus – ложе) – дискообразное утолщение срединной пластинки у хвойных.
Форма растительных клеток: − паренхимная, когда длина и ширина клетки примерно
одинаковые или длина не превышает ширину более чем в 1,5 раза;
− прозенхимная – длина превышает ширину более чем в 1,5 раза.
Хроматофоры (от греч. chromatos – цвет + phoros – несущий) – органоиды водорослей,
которые содержат все пигменты.
Цитоплазма – обязательная часть клетки, заключенная между плазмолеммой и ядром;
состоит из коллоидной системы гиалоплазмы с находящимися в ней органоидами.
Гистология растений
Ткань – закономерно повторяющиеся группы клеток, имеющие общее происхождение,
строение и выполняющие одну или несколько функций.
Апекс (от лат. apex – верхушка) – конус нарастания, вер-хушечная часть побега или корня
растений, состоящая из меристемы, дающая начало всем тканям осевых органов и опреде26
ляющая их рост в длину.
Апикальный – верхушечный.
Гидатоды (водяные устьица) (от греч. hydatos – вода + hodos – путь, дорога) – комплекс
клеток в листе растения, обеспечивающий выделение из растения капельно-жидкой воды.
Идиобласты (от греч. idios – особый + blastos – росток) – одиночные клетки, включенные
в какую-либо ткань и отличаю-щиеся от клеток этой ткани размером, формой, функцией.
Интеркалярный (от лат. intercalare – вставлять) – вставочный.
Каллюс (мозолистое тело) – крупные отложения каллозы. Камбий – вторичная боковая
меристема стебля и корня.
Корка (ритидом) – многослойная мертвая ткань, образо-ванная перидермой и слоями
отмерших клеток.
Конус нарастания – дистальная зона апекса корня и побега, сложенная инициалями
верхушечных меристем.
Корневой чехлик – многослойный конусовидный колпачок из живых паренхимных
клеток с ослизняющимися стенками, выполняет защитную функцию для нежных клеток конуса
на-растания корня.
Ксилема, или древесина (от греч. xylon – дерево), – водопро-водящая ткань цветковых
растений, вместе с флоэмой образует проводящую ткань.
Латеральный (от лат. lateralis) – боковой.
Меристема (от греч. meristos – делитель) – образовательная ткань растений, долго
сохраняющая способность к делению и возникновению новых клеток.
Либриформ (древесное волокно) – специализированный ме-ханический элемент
древесины.
Лизигенные вместилища выделений (от греч. lysis – рас-творение, распад) – каналы
внутренней выделительной ткани, образовавшиеся в результате растворения клеток.
Межклетники – межклеточные пространства, которые возникают в органах растений в
процессе гистогенеза.
Млечники – клетки некоторых цветковых растений, содержащие в вакуолях млечный
сок, бывают членистые и нечленистые млечники:
− нечленистые – представляют собой одну гигантскую клетку, которая, возникнув у
зародыша, растет и ветвится, пронизывая все органы растения;
− членистые млечники – образуются из многих отдельных клеток, которые сливаются в
сплошную разветвленную систему.
Млечный сок – содержимое вакуолей млечников; обычно молочно-белого цвета, но
иногда яркий, например, ярко-оранжевый у чистотела.
Паренхима – основная ткань любого органа, образована живыми клетками.
Перидерма (от греч. peri – вокруг + derma – кожица, кожа) – вторичная покровная ткань
высших растений, заменяющая эпидерму.
Перицикл (от греч. peri – вокруг + kyklos – круг) – первичная боковая меристема корня,
самый наружный слой центрального цилиндра; за счет его происходят образование боковых
корней и замыкание кольца камбия при переходе корня ко вторичному строению
Перфорации (от лат. perforatio – продырявливать) – сквозные отверстия в поперечных
клеточных стенках сосудов и сито-видных трубок растений.
Проводящий пучок – совокупность проводящих, механических, паренхимных тканей,
сконцентрированных в одном пучке. Типы проводящих пучков:
− коллатеральный (бокобочный) (лат. lateralis – боковой) – ксилемная и флоэмная части
примыкают друг к другу одной стороной (боком), самый распространенный тип, встречается у
большинства семенных растений;
− биколлатеральный (двубокобочный) (лат. bis – дважды + lateralis – боковой) – ксилемная
часть пучка располагается между двумя фрагментами флоэмы; встречается в семействе
тыквенных, пасленовых;
− радиальный пучок – ксилема и флоэма располагаются по своим радиусам, имеются в
27
корнях первичного строения;
− концентрический – или ксилема окружает флоэму (амфива-зальные пучки как у
однодольных), или флоэма окружает ксилему (амфикрибральные пучки, как у папоротников);
− открытые – между ксилемой и флоэмой имеется камбий;
− закрытые – между ксилемой и флоэмой нет камбия;
− полные – есть ксилема и флоэма;
− неполные – состоят только из флоэмы или ксилемы.
Ризодерма (от греч. rhiza – корень + derma – кожа), или эпи-блема (от греч. epiblema –
покров), – первичная покровная ткань корня.
Ситовидная пластинка – часть стенки членика ситовидной трубки с одним или
несколькими ситовидными полями.
Ситовидное поле – группы перфораций на клеточной стенке членика ситовидной трубки.
Ситовидные трубки – проводящие элементы флоэмы цветковых растений, образуют
непрерывные вертикальные столбики, у которых в месте контакта соседних клеток-члеников
имеются ситовидные пластинки (ситовидные поля), пронизанные перфорациями.
Сосуд – трубчатые элементы ксилемы, состоящие из расположенных встык вертикальных
рядов удлиненных клеток (члеников сосудов), между которыми имеются перфорации.
Стела – совокупность первичных проводящих тканей корня и окружающих их клеток
перицикла, это понятие распространяется и на стебель
Схизогенные вместилища выделений (от греч. shizen – расходиться) – вместилища,
образованные в результате расхождения клеток
Трихомы (от греч. trichos – волос) – волоски эпидермы, выполняющие разнообразные
функции.
Тилы (от греч. tylos – вздутие, утолщение) – выросты клеток паренхимы, заполняющие
полости сосудов и трахеид, что приводит к прекращению передвижения по ним веществ.
Трахеиды – входят в состав ксилемы (за исключением некоторых покрытосеменных) и
выполняют водопроводящую и опорную функции.
Устьице – высокоспециализированное образование эпидермы, состоящее из двух
замыкающих клеток и устьичной щели между ними, служащее для газообмена и транспирации.
Феллоген (от греч. fellos – пробка + genos – род, происхождение) – пробковый камбий,
вторичная латеральная меристема, образующая перидерму, откладывает наружу феллему, а
внутрь – феллодерму.
Феллема (от греч. fellos – пробка) – образованная феллогеном внешняя часть перидермы.
Фелодерма (от греч. fellos – пробка + derma – кожица, кожа) – внутренняя часть
перидермы, образованная феллогеном.
Флоэма, или луб, кора (от греч. phloios – кора), – часть проводящей ткани, по которой
идет транспорт продуктов фотосин-теза от листьев к местам потребления и отложения на запас.
Чечевичка – участок перидермы с рыхло расположенными клетками, через которую у
растений осуществляется газообмен.
Эмергенцы (от греч. omargene – выдаваться) – более мощные, чем трихомы, выросты на
поверхности растений, в образовании которых участвует не только эпидерма, но и клетки
нижележащих тканей.
Эндодерма (от греч. endon – внутри + derma – кожа) – внут-ренний слой клеток в
первичной коре корней и стеблей, выпол-няющий запасающую функцию, а в корне
осуществляющий связь между первичной корой и центральным цилиндром.
Экзодерма (от греч. exo – снаружи + derma – кожа) – на-ружный слой клеток первичной
коры корня.
Эпидерма (эпидермис) (от греч. epi – на + derma – кожица, кожа) – первичная покровная
ткань высших растений.
28
6.
БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЙ СПИСОК
Основная учебная литература
1. Еленевский, А. Г. Ботаника. Систематика высших, или наземных, растений [Текст] :
учеб. для студ. педвузов, обучающихся по спец. "Биология" / А. Г. Еленевский, М. П.
Соловьева, В. Н. Тихомиров. – 4-е изд., испр. – Москва : Академия, 2006. – 464 с. – (Высшее
профессиональное образование).
Дополнительная учебная, учебно-методическая литература
1. Ботаника [Текст] : сб. описаний лаб. работ для подготовки дипломированного спец. по
направлению 656200 "Лесное хозяйство и ландшафтное строительство" спец. 260400 "Лесное
хозяйство" / Федеральное агентство по образованию, Сыкт. лесн. ин-т – фил. ГОУ ВПО "С.Петерб. гос. лесотехн. акад. им. С. М. Кирова", Каф. воспроизводства лесн. ресурсов ; сост. Г. С.
Шушпанникова. – Сыктывкар : СЛИ, 2007. – 44 с.
2. Ботаника. Самостоятельная работа [Текст] : метод. указ. для подготовки
дипломированного специалиста по направлению 656200 "Лесное хозяйство и ландшафтное
строительство" спец. 250201 "Лесное хозяйство" / Федеральное агентство по образованию,
Сыкт. лесн. ин-т – фил. ГОУ ВПО "С.-Петерб. гос. лесотехн. акад. им. С. М. Кирова", Каф.
воспроизводства лесн. ресурсов ; сост. Г. С. Шушпанникова. – Сыктывкар : СЛИ, 2007. – 52 с.
3. Попова, О. С. Древесные растения лесных, защитных и зеленых насаждений [Текст] :
учеб. пособие для студ. вузов, обучающихся по спец.: 310900 – Землеустройство, 311000 –
Земельный кадастр, 311100 – Городской кадастр / О. С. Попова, В. П. Попов, Г. У. Харахонова.
– Санкт-Петербург : Лань, 2010. – 192 с. – (Учебники для вузов. Специальная литература).
Дополнительная литература
1. Ботанический журнал [Текст]. – Выходит ежемесячно.
2010 № 1-6;
2. Вестник Института биологии Коми НЦ УрО РАН [Текст]. – Выходит ежемесячно.
2006 № 1–12;
2007 № 1–7, 9-12;
2008 № 1–12;
2009 № 1–12;
2010 № 1–9, специальный выпуск, 11–12;
2011 № 1/2, 3, 4/5, 6, 7/8, 9,1 0/11, 12;
2012 № 1, 2, 4.
29