ВЛИЯНИЕ КОНЦЕНТРАЦИИ РН-ИОНОВ НА ЗАЖИВЛЕНИЕ РАН

УДК 614.23
ВЛИЯНИЕ КОНЦЕНТРАЦИИ РН-ИОНОВ НА ЗАЖИВЛЕНИЕ РАН У БОЛЬНЫХ
САХАРНЫМ ДИАБЕТОМ
С.Л. Петросян, В.С. Сливкина
В статье рассматривается метод оценки динамики раневого процесса. Предложен наиболее эффективный и
достоверный способ- определение концентрации Н-ионов в раневом содержимом. Получены результаты,
подтверждающие оптимальность данного метода при выборе тактики лечения ран
Ключевые слова: раневая инфекция, концентрация Н-ионов
Проблема лечения ран и раневой
инфекции, особенно на фоне сахарного
диабета, на сегодняшний день не теряет своей
актуальности, так как не смотря на широкое
использование
современных
антибактериальных и антисептических средств
сохраняется
тенденция
к
возрастанию
количества
длительно
текущих
и
рецидивирующих процессов. Целью наших
исследований
явилось
определение
концентрации Н ионов в раневом содержимом,
как эффективного и достоверного метода
оценки динамики раневого процесса.
Нами было обследовано 70 человек с
гнойно-воспалительными
заболеваниями
нижних конечностей на фоне сахарного
диабета второго типа. Основную группу
составили 40 человек. Контрольную - 30. В
обеих группах пациентов проводилось
комплексное
лечение,
включающее
ежедневную обработку ран антисептическими
растворами (перекись водорода, плевасепт,
хлоргексидин). В основной группе обработка
проводилась гидропрессивно. В контрольной
группе - обычным способом. В качестве
объективных критериев оценки использовали:
измерение
концентрации
Н
ионов,
цитологическое (соскоб из раны по Камаеву )
и бактериологическое исследования с учетом
динамики раневого процесса. рН - метрию
отделяемого гнойных ран осуществляли при
помощи иономера универсального ЭВ-74.
На 1-е сутки в основной группе
показатели рН - метрии отделяемого гнойных
ран
до
обработки
антисептиками
составили:5,6 в зоне гнойного участка; 5,9 в
зоне чистого участка. После обработки 5,9 в
___________________________
Петросян Сергей Львович – ВГТУ, д-р мед. наук,
профессор, тел. (4732) 52-16-81
Сливкина Виктория Сергеевна – ВГТУ, аспирант, тел.
(4732) 73-46-52
зоне гнойного участка; 6,1 в зоне чистого
участка,
что
соответствовало
при
цитологическом
исследовании
96,2%
нейтрофильных лейкоцитов (находящихся в
стадии распада) до обработки. После
обработки 92%. Макрофаги 4% до обработки
и 5% после. Бактериологический метод
выявил 1О 8 -1О 10 микробных тел в 1 мл
раневого содержимого. При измерении
концентрации Н ионов у пациентов
контрольной
группы
были
получены
следующие результаты: до обработки рН
гнойного участка составила 5,7; чистого 5,9.
После обработки - гнойного участка 6,1;
чистого участка 6,2. В цитологическом мазке
до
обработки
обнаружено
95%
сегментоядерных нейтрофилов. А после
обработки
93%
сегментоядерных
нейтрофилов. Макрофагов 4% до обработки и
5% после обработки.
На 14-е сутки в основной группе размеры
ран уменьшились, они стали очищаться от
гнойно-некротического
содержимого,
на
стенках
раны
появились
единичные
грануляции. рН до обработки составила 6,0 в
гнойном участке и 6,3 в чистом. После
обработки в гнойном участке 6,3; в чистом
участке
6,5.
При
цитологическом
исследовании до обработки количество
нейтрофилов составило 91 %; а после
обработки 87%. Процентное содержание
гистиоцитов до обработки
1%; после
обработки 2%. Фибробласты до обработки 1
%; после 2%; макрофаги 4% до и 3% после
обработки.
Бактериологическая
обсемененность 1О 7 микробных тел.
Состояние ран в контрольной группе
клинически оставалось без изменений,
раневое отделяемое имело кислую среду( рН до
обработки на гнойном участке 5,6; на чистом
участке 6,4 ). После обработки 5,8 в гнойном
участке и 6,5 в чистом участке. Клеточные
элементы нейтрофилов до обработки 95% и 91
%
нейтрофилов
после.
Содержание
гистиоцитов до обработки 1%; после работки
1 %. Фибробласты после обработки 1 %
макрофаги 6% до обработки и 5% после.
Количественный состав микрофлоры остался
на прежнем уровне (l0 8 микробных тел).
На 21-е сутки в основной группе больных
размеры раны уменьшились, наблюдался рост
грануляционных очагов на стенках и дне раны,
отделяемое ран было скудным; имело рН до
обработки в гнойном участке 6,4; в чистом
участке 6,8. После обработки в гнойном
участке 6,8; в чистом участке 7,0. Нейтрофилы
до обработки составили 87%, а после
обработки 84%. Макрофаги составили 1 % до
обработки
и 2%
после.
Содержание
микробных тел 106в 1мл. Размеры ран у
больных в контрольной группе уменьшились
незначительно,
появились
единичные
грануляции. pH-метрия в контрольной группе
демонстрировала
кислую
реакцию.
На
гнойном участке до обработки 5,9; на чистом
участке 6,3. После обработки на гнойном
участке 6,2; на чистом 6,7. В исследованном
цитологическом материале сегментоядерные
нейтрофилы составили до обработки 90% и
86% после обработки. Гистиоциты 1 % до
обработки
и
2,5%
после
обработки.
Макрофаги 3% до и 4% после обработки.
Бактериологическое исследование выявило
некоторое снижение микробиологической
обсемененности (l О 7 микробных тел в 1 мл.)
На 28-е сутки в основной группе
наблюдалась
стойкая
положительная
динамика в течение раневого процесса.
Размеры раны уменьшились, полость раны
очистилась, наблюдался активный рост
грануляций.
Отделяемое
ран
имело
нейтральную реакцию (рН до обработки в
гнойном участке 6,9; в чистом участке 7,3.
После обработки в гнойном участке 7,3; в
чистом 7,6). В цитологическом мазке до
обработки количество сегментоядерных
нейтрофилов снизилось до 81 % до
обработки и 79% после. Содержание
гистиоцитов 2% до обработки и 3% после
обработки.
Бактероологическое
исследование 1 О 4 микробных тел в 1 мл. В
контрольной группе отмечалось уменьшение
размеров
раны,
рост
островковых
грануляций по стенкам и дну раны, скудное
гнойное отделяемое, имеющее слабокислую
реакцию (рН гнойного участка до обработки
6,4; чистого участка 7,0.После обработки рН
гнойного участка 6,8; чистого участка 7,1). В
соскобе из раны до обработки 85%
сегментоядерных
нейтрофилов;
после
обработки 80%. Количество гистиоцитов 2%
до обработки и 3% после обработки.
Бактериологическое
исследование
106
микробных тел в 1мл.
Таким образом опытная группа дала
положительные результаты за более короткий
срок. Благодаря гидропрессивной обработки
происходит более глубокое очищение раны,
удаление некротизированных тканей из
полости, проникновение в глубоко лежащие
слои
раны
антисептических
средств.
Механическое
воздействие
оказывает
положительное
влияние,
активизируя
репаративные процессы в тканях. Наиболее
эффективным и достоверным методом оценки
динамики
раневого
процесса
является
наблюдение за концентрацией Н ионов в
раневом
отделяемом
и
ацидоз
ран,
наблюдающийся при гнойно-некротических
процессах
препятствует
репаративным
процессам,
появлению
грануляций
и
заживлению тканей. Лечебное воздействие в
условиях стационара направлено на очищение
раны и способствует восстановлению уровня
рН до нейтрального. У группы исследуемых
больных при среде 6,0-6,3 отмечалось
преобладание
макрофагов,
молодых
фибробластов, т.е. были четкие признаки
репарации. Контроль за уровнем рН позволяет
корректировать
лечение
и
служит
прогностическим критерием течения раневого
процесса коррелируя со скоростью заживления
ран.
Литература
1. Балаболкин М.И., Креминская В.М., Клебанова
Е.М.Современная тактика лечения сахарного диабета
типа 2. //Consilium medicum.-2001.-Т.3.-№11.-С.535-538.
2. Старостина Е.Г.,Древаль А.В. Бигуаниды в
лечении сахарного диабета.- М.: «Мед.практика», 2000.
Воронежский государственный технический университет
INFLUENCE OF CONCENTRATION OF PH-IONS ON REPAIR WOUNDS AT PATIENTS WITH
DIABETES MELLITUS
S.L. Petrosjan, V.S. Slivkina
In article is devoted method of an estimation of dynamics bacillosis process is considered. The most effective and authentic
way - definition of concentration of Н - ions in bacillosis contents is offered. The results confirming an optimality of the given
method at a choice of tactics of treatment of wounds are received
Key
words:
infection
bacillosis,
concentration
of
H-ion