ВЕТЕРИНАРНЫЕ НАУКИ Выводы. Представленные результаты исследований свидетельствуют о положительном влиянии олина на гуморальные и клеточные факторы естественной резистентности телят раннего возраста. Т-лимфоцитов в крови телят II опытной группы. Разница составила 8,33–20,69% (табл. 2). Число В-лимфоцитов у телят I и II опытных групп в возрасте 10 дней было больше, чем у контрольных аналогов, на 28,57 (р<0,05) и 26,19% (р<0,05), в 20-дневном возрасте – на 39,18 (р<0,01) и 34,55% (р<0,05) и к концу наблюдений – 49,09 (р<0,01) и 47,27% (р<0,01). Под действием пробиотика у молодняка крупного рогатого скота наблюдалось усиление клеточных факторов естественной резистентности. Фагоцитарная активность нейтрофилов крови у телят опытных групп превысила контрольные уровни в 10-дневном возрасте на 13,19–13,71% (р<0,01), 20-дневном – на 15,96–16,43% (р<0,001), 30-дневном – на 16,67–17,09% (р<0,05). В аналогичные периоды исследований фагоцитарный индекс нейтрофилов увеличился на 21,68–23,08% (р<0,01–0,001), 19,33–28,00% (р<0,01–0,001) и 18,93–19,53% (р<0,01–0,001) соответственно. Литература 1. Антипов В.А. Использование пробиотиков в животноводстве // Ветеринария. 1994. № 4. С. 55–58. 2. Данилевская Н.В. Фармакологические аспекты применения пробиотиков // Ветеринария. 2005. № 11. С. 6–10. 3. Нигматуллин А.И., Петрова Н.В., Титова В.Ю. и др. Применение энтероспорина в ветеринарии // Ветеринария. 2005. № 4. С. 13–16. 4. Стечний Б.Т., Гужвинская С.А. Перспективы использования пробиотиков в животноводстве // Ветеринария. 2005. № 11. С. 10–11. 5. Сидоров М.А., Субботин В.В., Данилевская Н.В. Нормальная микрофлора животных и её коррекция пробиотиками // Ветеринария. 2000. № 11. С. 17–22. 6. Спасская Т.А., Клименко Е.В. Пробиотики и биологически активные вещества в практике животноводства // Доклады Тимирязевской сельскохозяйственной академии. Вып. 273. Часть 2. М., 2001. С. 46–50. 7. Тараканов Б.В. Механизмы действия пробиотиков на микрофлору пищеварительного тракта и организм животных // Ветеринария. 2000. № 1. С. 47–54. Гистология мочевого пузыря при синдроме недержания мочи у соболей В. Е. Соболев, к.в.н., НИИ гигиены, профпатологии и экологии человека; С. И. Жданов, аспирант, СанктПетербургская ГАВМ ласти в соответствии с технологическим циклом зверохозяйства в период убоя животных проведено патологоанатомическое вскрытие 76 голов молодняка соболей (64 – самцы; 12 – самки) с диагнозом синдром недержания мочи. При этом признаки воспалительного процесса в мочевом пузыре выявлены в 28,1% случаев у самцов и в 41,6% случаев – у самок. В 26,5% случаев у самцов и в 33,3% случаев у самок больных животных патологические изменения в мочевом пузыре отсутствовали. Для гистологического исследования отбирали по пять мочевых пузырей от больных животных с признаками цистита, без признаков цистита и от здоровых животных (всего 15 шт.). Мочевые пузыри животных фиксировали в 10-процентном нейтральном формалине или жидкости Карнуа. Гистологические срезы мочевого пузыря толщиной 5–7 мкм получали на роторном микротоме Slee Cut 5062. Срезы окрашивали гематоксилин – эозином, альциановым синим и по методу Хейла для выявления мукополисахаридов. Гистологические срезы изучали с помощью микроскопа Zeiss Axio Observer A1, микрофотографии получали при помощи устройства захвата изображения Pixera Penguin 150 CL. Морфометрические измерения в срезах мочевого пузыря проводили с помощью программы «Видеотест-размер 5.0». Статистическая обработка полученных данных выполнена в программе GraphPad Prizm 5.0 для Windows XP. Нормальность распределения В настоящее время основной этиологический фактор синдрома недержания мочи, поражающего молодняк норок и соболей (преимущественно самцов) и связанного с непроизвольным мочеиспусканием и повреждением меха и кожи животных в области живота, неизвестен. Ранее используемые в отечественной и англоязычной литературе термины «подмокание» и «wet belly» [1, 2] не отвечают современным требованиям ветеринарной нозологии, в которых необходимо учитывать не только область патологического процесса, но и основные этиологические или патогенетические факторы. В связи с этим авторы предлагают новую терминологическую единицу – «синдром недержания мочи» (СНМ) у пушных зверей. Известны результаты зарубежных исследований, посвящённых изучению влияния зоогигиенических параметров, условий кормления и содержания зверей, на развитие заболевания у норок [3–8]. Однако практически отсутствуют работы, посвящённые изучению морфологических изменений в мочевом пузыре у больных животных. Целью настоящей работы является изучение гистологической картины в мочевом пузыре у соболей, больных синдромом недержания мочи. Материалы и методы. В течение 2009–2011 гг. в звероводческом хозяйстве Ленинградской об91 ВЕТЕРИНАРНЫЕ НАУКИ выборки проверяли с помощью теста ШапироУилка. Полученные данные оценивали методами описательной статистики, с определением средних значений и стандартного отклонения в формате М±s. Статистическую значимость различий показателей сравниваемых групп определяли методом однофакторного дисперсионного анализа (one way ANOVA). Для сравнения парных выборок, не отвечающих критериям нормальности, использовали U-критерий Манна-Уитни. Различия сравниваемых показателей считали статистически значимыми при уровне р<0,05. Результаты и обсуждение. Для сравнительного анализа гистологических изменений в мочевом пузыре были сформированы три группы животных, от которых отбирали секционный материал. У зверей I гр. (контрольной) клинические признаки заболевания и патологические изменения в мочевом пузыре отсутствовали. Во II и III гр. включили соболей с клиническими признаками недержания мочи и воспалительного процесса в мочевом пузыре соответственно. У соболей II гр. при патологоанатомическом вскрытии диагностировали катаральный цистит. Материал от животных III гр. – мочевые пузыри с признаками очагового геморрагического цистита (рис. 1). Рис. 1 – Геморрагический цистит: 1 – мочевой пузырь; 2 – геморрагический участок В отличие от здоровых животных, мочевые пузыри соболей II и III гр. содержали большее количество остаточной мочи. У животных III гр. наблюдались признаки устойчивой дилатации мочевого пузыря (рис. 1). При изучении гистологических срезов мочевого пузыря у больных животных III гр. выявлено наличие геморрагических участков с дегенеративными изменениями структуры соединительной ткани подслизистой основы и мышечных волокон в мышечной оболочке органа. При окрашивании срезов методом Хейла и альциановым синим отмечается интенсивное окрашивание собственной пластинки слизистой оболочки (рис. 2). Этот факт, вероятно, указывает на накопление гликозаминогликанов, защищающих, как известно, слизистую оболочку мочевого пузыря от воздействия повреждающих факторов [9]. Методами количественной морфометрии у здоровых и больных животных выявлены статистически значимые отличия по ряду линейных и объёмных характеристик тканей и клеток в срезах мочевого пузыря. Результаты представлены в таблице. Из данных таблицы можно увидеть некоторые закономерности в сравниваемых показателях. Рис. 2 – Мочевой пузырь соболя, группа III. Геморрагический цистит Х 10; окраска по методу Хейла: 1 – слизистая оболочка; 2 – геморрагические участки Результаты количественной морфометрии мочевого пузыря соболей Группы животных I II гистометрические Толщина слизистой, мкм: 130,7±33,4 47,9±6,2** Толщина собственной пластинки, мкм: 71,0± 6,9 123,3± 24,6** Толщина подслизистой основы, мкм: 141,9± 19,1 84,3± 9,1* Толщина мышечной оболочки, мкм: 1276± 340,3 834,9± 101,2* цитометрические Площадь эпителиоцита, мкм2: 252,1± 110,6 601,9± 165,0** Объём ядра эпителиоцита, мкм3: 719,8±468,7 909,1±520,0 Объём эпителиоцита, мкм3: 2098±1514 9763±3734** ЯЦО 0,61±0,15 0,87±0,07** Примечания: ЯЦО – ядерно-цитоплазматическое отношение; * – р<0,05; ** – р<0,01 Показатели 92 III 48,7±7,2** 55,0± 5,9* 53,78± 7,2** 340,3± 50,2** 677,9± 173,1** 2297±1076** 11526±4661** 0,72±0,09 ВЕТЕРИНАРНЫЕ НАУКИ Рис. 3 – Срез стенки мочевого пузыря соболя, группа III Х10; альциановый синий: Рис. 4 – Срез стенки мочевого пузыря соболя, группа I Х10; альциановый синий: 1 – слизистая оболочка; 2 – собственная пластинка слизистой оболочки; 3 – продольный слой мышечной оболочки 1 – слизистая оболочка; 2 – собственная пластинка; 3 – подслизистая основа; 4 – мышечная оболочка Так, у животных II и III гр. слизистая оболочка и подслизистая основа, представленная элементами рыхлой соединительной ткани, значительно тоньше, чем в контрольной группе. Истончение слизистой оболочки объясняется усилением эксфолиации эпителиоцитов под влиянием воспалительного процесса в мочевом пузыре. У животных II гр. наблюдается утолщение и отёк собственной пластинки слизистой оболочки, характерные для катарального воспалительного процесса. Уменьшение толщины мышечной оболочки мочевого пузыря у соболей II и III гр. отражает состояние функциональной неполноценности мочевого пузыря, в частности его атонию и последующую дилатацию. На рисунке видно растяжение мышечных волокон продольного слоя мышечной оболочки по сравнению с мочевым пузырём здоровых животных (рис. 4). Значительный объём остаточной мочи в мочевом пузыре у животных II и III гр. является вероятным резервуаром для развития инфекции и повреждения слизистой оболочки. Цитометрические и кариометрические показатели эпителиоцитов мочевого пузыря соболей II и III гр. отличаются от показателей контрольной группы с высоким уровнем статистической значимости. Клетки эпителия у больных животных имеют большую площадь и объём. Ядерно-цитоплазматическое отношение клеток эпителия мочевого пузыря, представляющее собой объёмную долю цитоплазмы в эпителиальных клетках, существенно выше в эпителиоцитах соболей II гр. Увеличение ЯЦО в эпителиоцитах соболей II гр. косвенно свидетельствует о повреждении эпителиальных клеток, в то время как у животных III гр. этот показатель отличается от группы сравнения незначительно. Это различие, по-видимому, объясняется воздействием повреждающих факторов. Если у животных II гр. развитие катарального воспалительного процесса связано с повреждением слизистой оболочки, то у соболей III гр. очаговый геморрагический цистит связан с повреждением подслизистой основы и мышечного слоя мочевого пузыря, которые, как известно, хорошо снабжены системой кровеносных сосудов. Нарушение проницаемости сосудистой стенки является в данном случае одним из звеньев патогенеза геморрагического циститы. Выводы. В результате проведённых исследований впервые получена информация о гистологических изменениях в тканях мочевого пузыря соболей, больных синдромом недержания мочи. В проведённых нами исследованиях у 28,1% самцов и 41,6% самок выявлен катаральный или геморрагический цистит. В зарубежных публикациях, посвящённых гистологии мочевого пузыря у норок, больных wet belly, информация о воспалительном процессе в мочевом пузыре отсутствует [10, 11]. С помощью методов гистохимического исследования выявлены признаки накопления гликозаминогликанов в собственной пластинке мочевого пузыря у больных животных. В настоящее время клинически доказана защитная роль гликозаминогликанов, присутствующих в слизистой оболочке мочевого пузыря [5]. Для доказательства повышения содержания кислых мукополисахаридов в слизистой оболочке мочевого пузыря у больных синдромом недержания мочи зверей требуется проведение дальнейших исследований с использованием методов биохимического определения содержания этих соединений в крови и моче. Методами количественной морфометрии выявлены статистически значимые отличия в морфологии мочевого пузыря соболей, больных синдромом недержания мочи. Основными отличиями являются уменьшение толщины слизистой оболочки, подслизистой основы и мышечной 93 ВЕТЕРИНАРНЫЕ НАУКИ оболочки у больных животных, что может быть обусловлено повышением уровня эксфолиации эпителиальных клеток и явлениями атонии и дилатации мочевого пузыря больных животных. Таким образом, полученные результаты исследований подтверждают гипотезу о наличии воспалительного процесса в мочевом пузыре у животных, больных синдромом недержания мочи. 4. 5. 6. 7. 8. 9. Литература 1. Данилевский В.М., Забалуев Г.И. Словарь ветеринарных терапевтических терминов. М.: Росагропромиздат, 1989. С. 88. 2. Saunders comprehensive veterinary dictionary – 2nd ed. / Blood D.C; Studdert K.P.: WB Saunders, 1999. P. 1226. 3. Aulerich R., Shelts G., Schaibie P.J. Influence of the dietary calcium level on the incidence of urinary incontinence and «wet 10. 11. belly» in mink // Michigan Quarterly bull., 1963. Vol. 45. № 3. P. 444–449. Aulerich R., Ringer R.K., Schaibie P.J. Mink pelts affected with «wet belly» // Michigan Quarterly bull. 1962. Vol. 44. № 3. P. 484–491. Aulerich R., Schaibie P.J. The use of spent chickens for mink feeding // Michigan Quarterly bull. 1965. Vol. 47. № 3. P. 451–458. Experiments in Mink nutrition: progress report 1963/Agricult. Exp. St. Oregon St. University, 1964. 32 p. Nutrient Requirements of Mink and Foxes – 2nd ed., 1982. P.19. Mink research: progress report 1970/ Agricult. Exp. St. Oregon St. University, 1972. 34 p. Bhavanandan V.P. Glycosaminoglycans and Glycoproteins of Animal Bladder. // Journal Connect Tissue 2001. Vol. 33. № 3. P. 245–252. Bostrom R.E., Aulerich R.J., Schaibie P.J. Hystologic observation on the urinary system of male mink affected with «wet belly» // Michigan Quaterly bull. 1967. Vol. 50. № 1. P. 100–105. Bostrom R.E., Aulerich R.J., Schaibie P.J. Hystologic features of inguinal skin of «wet belly» and normal mink (Mustella vision) // Am. J Vet. Res. 1967. Vol. 28. № 126. P. 1549–1554. Возрастные морфологические особенности языка кошки домашней К.В. Садчикова, аспирантка, Оренбургский ГАУ слизистой оболочкой, которая, переходя на слизистую оболочку дна ротовой полости, образует уздечку. На языке различают следующие отделы: верхушку, тело и корень (рис. 1). Возрастные изменения параметра ширины различных отделов языка в постнатальном онтогенезе у кошек имеют ряд особенностей (рис. 2). Анализ полученных морфометрических данных показал, что тело является самым широким отделом языка на протяжении всей жизни животного. Второй по ширине является верхушка, а затем корень языка. Увеличение всех отделов языка в ширину происходит до периода расцвета функциональной деятельности, при этом максимальный рост отмечается до двухмесячного возраста. Период инволюционной атрофии характеризуется незначительным снижением показателя ширины верхушки, тела и корня языка кошки домашней. Сравнительный анализ показал, что по длине верхушка языка превосходит остальные отделы языка (рис. 3). Длина в изучаемых отделах языка увеличивается пропорционально возрасту животных до периода расцвета функциональной деятельности. Более интенсивный рост языка в длину приходится на период половой зрелости. У животных периода инволюционной атрофии отмечается уменьшение показателя длины всех отделов языка и соответственно языка в целом. На дорсальной поверхности языка располагаются нитевидные, грибовидные, листочковидные, конические и валиковидные сосочки (рис. 4). В зависимости от функции они делятся на механосенсорные (механические) и хемосенсорные (вкусовые) [4]. Кошка – один из распространённых домашних питомцев. В связи с этим ветеринарные врачи должны в полной мере владеть знаниями по анатомии и физиологии, чтобы как можно лучше разбираться в вопросах этологии, этиологии, патогенеза различных нарушений у животных этого вида. Это обеспечит эффективное лечение и профилактику заболеваний у кошек. Анализ литературных данных показывает, что орган вкуса у кошек в возрастном аспекте не изучен. Работы, касающиеся этой проблемы, освещают данные о морфологических особенностях языка животных других видов и человека [1–3, 5, 6]. Вследствие этого была поставлена цель – установить морфологические особенности языка кошки домашней в возрастном аспекте. Материалы и методы. Объектом исследования служили головы кошек. Животных классифицировали на шесть возрастных групп: новорождённые (до двух (четырёх) недель); молочного периода (1,5–2 мес.); периода половой зрелости (5–9 мес.); периода физиологической зрелости (10–18 мес.); периода расцвета функциональной деятельности (2–5 лет); периода инволюционной атрофии (более 7 лет). Экспериментальный материал брали из ветеринарных клиник г. Оренбурга. Учёт морфометрических показателей проводили с помощью штангенциркуля, микроскопа МБС-9 с разрешающей способностью до 0,01 мм. Результаты исследований. Язык кошки располагается на дне ротовой полости и удерживается с помощью подъязычной кости. При смыкании челюстей заполняет собственно полость рта и принимает её форму. Его поверхность покрыта 94